常用的核糖核酸制备条件对牛胰核糖核酸酶活力的影响

(1)RNA的存在与否对牛胰RNase在酚水两相体系中的分配性质有决定性的影响。(2)6%以上的苯酚基本上抑制了RNase的活力,加入鼠肝匀浆,抑制作用不变。但用乙醚将苯酚除去后,RNaso活力可以恢复。(3)水层中的RNase能和RNA、DNA或白蛋白一同为乙醇所沉淀。RNase也能和RNA为1M氯化钠所共沉。(4)比较了几种常用的RNA制备方法对牛胰RNase活力的影响。磺酸十二酯钠和苯酚相似,是RNase的可逆抑制剂,膨润土是除去RNase的良好材料。(5)对文献上RNA样品不稳定的原因进行了分析。     

可溶性核糖核酸的研究 Ⅲ.酵母可溶性核糖核酸中抗碱二核苷酸的分离与鉴定

利用Tomlinson和Tener的DEAE-纤维素柱层析方法,我们从酵母SRNA的碱水解产物分得抗碱二核苷酸的层析峰。将抗碱二核苷酸混合物用大肠杆菌碱性磷酸单酯酶处理后,纸层析分离可得到四个部分,分别称A_1,A_2,A_3及A_4。经鉴定A_1为2′-O-甲基鸟便嘌呤核苷-3′-磷酸-5′-鸟便嘌呤核苷(G'pG),A_2主要为2′-O-甲基胞嘧啶核苷-3′-磷酸-5′-鸟便嘌呤核苷(C'pG,纯度约为87%),A_3则至少合2′-O-甲基胞嘧啶核苷-3′-磷酸-5′-腺嘌呤核苷(C'pA)和2′-O-甲基鸟便嘌呤核苷-3′-磷酸-5′-腺嘌呤核苷(G'pA),A_4较为复杂,未最后鉴定。因此酵母SRNA中至少含有下列四种抗碱二核苷酸:2′-O-甲基鸟便嘌呤核苷-3′-磷酸-5′-鸟便嘌呤核苷酸(G'pGp),2′-O-甲基胞嘧啶核苷-3′-磷酸-5′-鸟便嘌呤核苷酸(C'pGp),2′-O-甲基胞嘧啶核苷-3′-磷酸-5′-腺嘌呤核苷酸(C'pAp)及2′-O-甲基鸟便嘌呤核苷-3′-磷酸-5′-腺嘌呤核苷酸(G'pAp)。除此以外,还得到核苷二磷酸的层析峰,其中主要为鸟便嘌呤核苷-2′(3′),5′-二磷酸,只有少量的腺嘌呤核苷-2′(3′),5′-二磷酸。     

肝癌的生化研究 Ⅰ.3’-甲基-4-二甲基氨基偶氮苯引起大白鼠肝癌癌变过程中核酸嘧啶化合物代谢酶系的变化

肿瘤组织的核酸代谢和正常组织有所不同,已有不少工作证实,Skipper,Bennett等观察到肿瘤组织利用甘氨酸、甲酸等小分子化合物合成核酸嘌呤的能力较正常组织强,而利用嘌呤碱、嘌呤核苷及嘌呤核苷酸的能力则不如正常组织。de Lamirande等发现核酸嘌呤化合物代谢酶系活力在大白鼠Novikoff肝癌组织和正常组织中有明显区别,如黄嘌呤氧化酶和尿酸酶活力在肿瘤组织中完全不能测到。但有关核酸嘧啶化合物在癌组织中代谢的报导则较少,Reichard和Skold曾报告艾氏腹水癌尿嘧啶核苷磷酸     

核糖核酸結构的研究 Ⅲ.利用核糖核酸酶T_1研究絲腺与酵母可溶性核糖核酸的結构

(1) 从高峰淀粉酶制剂(Taka-Diastase)制得RNase T_1,提纯了2800倍,可用于结构研究,从上海四万酿造厂的米麯也分得类似纯度、类似特异性的酶。(2) 用RNase T_1单独或与RNaseⅠ联合作用的结果,均发现啤酒酵母与蓖麻蚕絲腺腺体sRNA的结构有显著差异。例如用RNase T_1单独作用时,由蓖麻蚕蒜腺sRNA所得Gp大于啤酒酵母sRNA,而UpUpGp则小于后者。用两个酶联合作用时,由蓖麻蚕絲腺sRNA所得Cp、(Gp+Gp!)大于啤酒酵母sRNA,且前者较后者多出许多含稀有成份的紫外光吸收点,其电泳层析行为及表现熒光性质较为特殊。(3) 蓖麻蚕蒜腺sRNA合有-Gp(Ap)_4Cp-及-Gp(Ap)_3Cp-等结构。(4) RNase Ⅰ与RNase T_1联合水解sRNA所得Gp!/Gp值大于RNase T_1单独作用时所得Gp!/Gp值。     

枯草杆菌TrpRS的固定化及亲和RNA筛选

为研究 t RNATrp与色氨酰 - t RNA合成酶 ( Trp RS)的相互识别及其结构与功能的关系 ,纯化了枯草杆菌 Trp RS,并用溴化氰活化的 Sepharose4B将 Trp RS固定化 ,固定化 Trp RS的蛋白回收率为 95.5% ,活力回收率为 31 .3% .研究了固定化 Trp RS的酶学性质 ,其热稳定性和贮存稳定性方面均比液相 Trp RS有了较大的提高 ,最适温度、最适 p H均有一定程度的增大 ,工作稳定性良好 .以固定化 Trp RS为亲和层析介质 ,对含有 2 0个核苷酸随机序列 ,长度为 56个核苷酸的单链RNA随机库进行了三轮筛选 .实验结果表明 ,固定化 Trp RS可以作为 SELEX亲和层析介质 ,进行模拟 t RNATrp分子的 RNA随机库的 SELEX筛选 .     

人线粒体tRNALeu(UUR)及其突变体的基因克隆、表达和纯化

将化学法合成的人线粒体tRNALeu(UUR)及其突变体(tRNALeu(M))基因分别连接到载体pGEM-9zf (-)中, 并转化到大肠杆菌JM109中得到两个转化体分别为Leu-W和Leu-M. 在IPTG的诱导下, tRNALeu(UUR)和tRNALeu(M)的表达量可达总小分子RNA的19.10%和17.76%. 经DEAE-sepherose CL4B柱层析可使它们的纯度提高3倍. 最后用15%的变性聚丙烯酰胺凝胶电泳纯化, 并用大肠杆菌亮氨酰tRNA合成酶(LeuRS)分别测定了它们的氨酰化反应动力学常数. 结果显示, mtRNALeu(M)的Kcat / Km值约为mtRNALeu(UUR) 的1/5, 提示该突变可使mtRNALeu(UUR)的氨基酸接受能力明显下降.     

建议开展核糖体RNA拓扑学与核糖体失活蛋白的研究

(一)核糖体RNA拓扑学研究的重要性核糖体是细胞合成蛋白质的唯一场所。核糖体包括两个亚基,由RNA和蛋白质组成,蛋白质占1/3,而RNA占2/3,即RNA是主要组分。蛋白质生物合成的大多数步骤,包括肽链合成的起始、延伸和终止都是在核糖体上进行的。整个合成过程涉及二百多种生物大分子的协同作用。在蛋白质生物合成中,重要的是肽键的形成。这一化学反应就是在核糖体上进行的。核糖体的任何个别组分或局部组分都不能催化肽键的形成,而必须是完整的核糖体,因此人们认为核糖体本身就是一个包括多种蛋白质和rRNA的复杂酶系(有人把核糖体看作     

编码酵母丙氨酸tRNA两个半分子的DNA的克隆

用DNA合成仪合成寡聚脱氧核苷酸。用T4-DNA连接酶把这些寡聚脱氧核苷酸重组成双链DNA。这两个双链DNA的上游是T7-启动子,下游分别编码酵母丙氨酸tRNA的5′半分子(1-35位核苷酸)和3′半分子(35-76位核苷酸)。再把这两个双链DNA克隆到PUC 12质粒中。经点杂交筛选和DNA顺序测定证明克隆是成功的。     

大鼠甘氨肽酰化单氧酶基因的克隆与表达

本文采用原位杂交及ＰＣＲ方法,从大鼠脑ｃＤＮＡ库中,筛选到３个大鼠甘氨肽酰化单氧酶（ｒＰＡＭ）基因片段。经ＤＮＡ全序列分析表明,它们跨越ｒＰＡＭ－２全部编码区。通过点突变、ＰＣＲ重组技术等,分别拼接出此双功能酶的ｒＰＨＭ（氧化酶）、ｒＰＡＬ（裂解酶）及其ｒＰＡＭ全酶基因,并构建了多种大肠杆菌表达质粒。经温敏诱导。高效表达了ｒＰＡＭ－Ｎ２６０片段,并制各获得阳性抗血清,可用于免疫检测天然或重组的ＰＡＭ。而ＳＤＳ－ＰＡＧＥ和Ｗｅｓｔｅｒｎｂｌｏｔ分析结果显示,ｒＰＨＭ和ｒＰＡＭ在大肠杆菌中均获得了表达,其中ｒＰＨＭ表达量占全菌总蛋白的１０％以上。进一步研究还发现,通过采用低温和加二价铜离子诱导表达,可提高ｒＰＨＭ产物的可溶性及稳定性。     

Biological function of modified nucleotides T_(54) and ψ_(55) of yeast tRNA~(Ala)

The 3' half molecule of yeast tRNAAla (nucleotides 36-75) was hybridized with a DNA fragment (5'GGAATCGAACC 3') and the hybrid was then digested with E. coli RNase H (from Boehringer). The enzyme can specifically cleave the 3' half molecule at the 3' side of nucleotide ψ55, thus a fragment C36-ψ55 was prepared. The 3'-terminal T or Tψ of this fragment was removed by one or two cycles of periodate oxidation and $-elimination. The products were fragments C36-T54 and C36-G53. Three yeast tRNAAla fragments C56-A76, U55-A76 (with ψ55 replaced by U), U54-A76 (with T54ψ55 replaced by UU) were synthesized and ligated with three prepared fragments (C36-ψ55 C36-T54 and C36-G53) respectively by T4 RNA ligase. The products were further ligated with the 5' half molecule (nu-cleotides 1-35). Using this method, one reconstituted yeast tRNAAla (tRNAr) and two yeast tRNAAla analogs: (i) tRNAa with U55 instead of ψ55; (ii) tRNAb with U54U55 instead of T54ψ55 were synthesized. The charging and incorporation activi