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相似文献
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1.
琼脂糖凝胶电泳和聚丙烯酰胺凝胶电泳广泛应用于生物化学及免疫化学等研究方面。人们希望能将电泳凝胶板制成干片,以便进行放射自显影或使电泳结果可以长期保存。国内外已有凝胶真空干燥器生产,可以使凝胶板在加热和真空情况下迅速干燥。但价格昂贵,而且每次只能干燥1—2片,不能适应大量干燥凝胶板的需要。虽然Ginlian和王育东在室温下用简易方法干燥凝胶板,但凝胶板需先用甘油预处理  相似文献   

2.
本文介绍一种简易凝胶快速干燥法,无需抽真空、恒温水浴和电炉等装置。制成的干胶无气泡、无皱褶,图谱清晰,可永久保存。用这种方法制作干胶,成品率高。即使凝胶本已有少许破裂,但在干燥过程中裂缝不会继续加深。如果操作过程中不小心使凝胶和玻璃纸之  相似文献   

3.
聚丙烯酰胺凝胶干板的制备方法,国内外已有许多介绍,但由于条件限制和操作复杂,总不尽如意。本文介绍三种较为简易的凝胶平板干燥制板方法,以供大家参考。  相似文献   

4.
凝胶干胶的实验台制作法   总被引:3,自引:0,他引:3  
目前,制作聚丙烯酰胺凝胶干胶的方法很多,大多数都是将凝胶干燥在玻璃板或凝胶支持膜上制得.下面介绍一种不用玻璃板,只用一张玻璃纸的简单经济、效果也好的凝胶干燥方法.  1将脱色后背景清楚的凝胶浸泡在20%的甘油中,过夜.  2将一张长度约为凝胶长度25倍,宽度比凝胶?..  相似文献   

5.
我们依据组织逐级脱水的原理,经过摸索得到一种经济简单的凝胶干燥方法,特别是解决了浓度较高(10%—15%)凝胶和3%—25%梯度凝胶的干燥,可将聚丙烯酰胺板状凝胶干燥成一张平整、透明的干胶片,可直接照相或用感光胶片直接印制成负片。现将方法介绍如下:  相似文献   

6.
Bio-Rad公司的微量聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳(ModelⅢ Mini IEF Cell),不需要使用电极缓冲液,聚焦电泳时间仅用1.5小时,效果甚佳,但要使用该公司专有的凝胶支持薄膜,难于推广应用,我们经过试验,建立了一种简单、快速的微量凝胶等电聚焦电泳方法,40min完成等电聚焦过程,采用快速染色、脱色和干燥,将电泳图谱制成透明的薄膜,整个过程可以  相似文献   

7.
介绍了一种简易、高效、快速的生物同工酶分析方法——超薄平板微型聚丙烯酰胺凝胶的等电聚焦电泳方法。该方法与目前国内外市场销售的同种用途等电聚焦的产品 (如BIO- RAD公司的 model1 1 1 Mini IEF Cell)相比 ,具有以下优点 :实验操作灵活 ,用途更广 ;谱带清晰 ;每次可实验的样本量大 ;电泳所需时间短 ;实验费用低 ;适用于多种酶系统的同工酶和等位酶分析 ;凝胶干燥不需任何设备且能长期保存 ;样本用量少。  相似文献   

8.
介绍了一种简易、高效、快速的生物同工酶分析方法--超薄平板微型聚丙烯酰胺凝胶的等电聚焦电泳 方法。该方法与目前国内外市场销售的同种用途等电聚焦产品(如BIO-RAD公司的model11Mini IEF Cell)相比,具有以下优点:实验操作灵知,用途更广;谱带清晰;每次可实验的样本量大;电泳所需时间短;实验费用低;适用于多种酶系统的同工酶和等位酶分析;凝胶干燥不需任何设备且能长期保存;样本用量少。  相似文献   

9.
在分析性聚丙烯酰胺凝胶电泳特别是平板等电聚焦电泳中,薄层凝胶越来越被广泛采用,它有节省试剂、加样量少、电泳时间短、分辨率高及冷却效果好等优点。分析者都希望能将电泳染色后的凝胶理想地保存下来,目前所采用的方法均是直接将凝胶干燥在玻璃板或凝胶支持膜上(由于凝胶太薄不能转移),或者使用专用的透明保存膜,有时还要用真空干燥器干燥。  相似文献   

10.
这里我们介绍一种简易聚丙烯酰胺凝胶干燥法,该法无需特殊设备,操作条件可灵活掌握。比已报道的凝胶干燥简易方法更为简便易行。操作如下: 1.用三合板或五合板锯成一个内边长为17厘米,外边长为23厘米的正方形木框。  相似文献   

11.
蛋白质凝胶过滤色谱上样方法的改进   总被引:1,自引:0,他引:1  
凝胶过滤色谱因其操作方法简单,重复性强等特点在生物大分子的分离纯化中被广泛使用。特别在基因工程蛋白质类药物的精细纯化中起着难以替代的作用。但由于蛋白质凝胶过滤色谱要求样品上样体积较小及洗脱流速较小时才能获得理想的分辨率,这使得凝胶过滤色谱经常成为蛋白质大规模纯化工艺中的限速步骤。本介绍一种改进的上样方法,在不降低分辨率的前提下,可将单位时间内凝胶过滤柱的产量提高两倍。  相似文献   

12.
简便实用的琼脂糖凝胶回收DNA片段方法   总被引:8,自引:0,他引:8  
介绍一种简便实用的DNA片段回收方法,与以前所报道的DEAE-纤维素膜电泳法、透析袋电洗脱法、低融点琼脂糖凝胶法、凝胶冻融法等相比,所需器材简单、操作简便、回收率高、成本低。回收的DNA片段在进一步克隆和测序中表现出较好的效果,是一种适合于科研和教学的实验方法。  相似文献   

13.
在我们的实验工作中,将生物大分子与配体分离或除去盐份,改变蛋白的缓冲体系的工作,可以说是每天都离不开。透析和分子筛层析等是常用的好方法。但透析方法的缺点是需要时间较长,对于不够稳定的样品也不适用。用分子筛柱可以较快分离,但普通柱层析方法往往导致样品的稀释而不可避免地造成损失。这里介绍一种快速、回收率高且不稀释样品的凝胶柱分离方法。由于这个方法首先由美国纽约城公共  相似文献   

14.
马建忠 《植物学报》1989,6(3):188-189
本文强调了电泳后凝胶板干燥前预处理的重要作用,并介绍了几种预处理的方法。  相似文献   

15.
本文强调了电泳后凝胶板干燥前预处理的重要作用并介绍了几种预处理的方法。  相似文献   

16.
一种简便的凝胶干燥法   总被引:2,自引:0,他引:2  
SDS-PAGE(聚丙烯酰胺凝胶电泳)已成为分析蛋白质核酸等样品的一种常用方法。为使染色后的凝胶长期保存,需制成干胶。下面介绍一种比已报道的更为简便易行的凝胶干燥方法。取一块如电泳用大小的玻璃扳,将二张略大于玻璃板的玻璃纸浸于脱色液中。先取一张玻璃纸平铺于玻璃板上,从一端向另一端平铺,抚平去气泡,涂一层50%甘油。将凝胶放其上,在凝胶面上也涂一层50%甘油。将另一张玻璃纸覆盖在凝胶上从一端开始慢慢平铺,抚平赶尽气泡,将大于玻璃板的玻璃纸向玻璃板  相似文献   

17.
在薄层凝胶等电聚焦电泳技术中,制胶可谓是关键的一步。如果制胶失败,将造成时间上的浪费和经济上的损失(凝胶中所用的两性电解质载体——安福林的价格较昂贵)。如果制成的凝胶薄厚不匀或无支撑物,将会直接影响实验结果或给实验操作带来麻烦。我们针对这种情况,结合实验教学,摸索出一种快速、简便而效果较好的制胶方法。现简要介绍如下  相似文献   

18.
一种改进的蛋白质超薄凝胶电泳方法   总被引:1,自引:1,他引:0  
介绍了一种将聚丙烯酰胺凝胶固定在电泳夹板上的蛋白质电泳方法.通过此方法蛋白质电泳可以在0.4 mm厚的聚丙烯酰胺凝胶上进行.实验证明,经此方法处理的玻板结合凝胶非常牢固,在电泳后的所有处理步骤中都不会发生凝胶脱落现象.  相似文献   

19.
平板(Slab)聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)与含有十二烷基磺酸钠的聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)是一种重要的生化技术,在蛋白质与多肽的分析鉴定上,应用十分普遍。但电泳后的凝胶脆弱易碎,难长期保存。近年来,国外已有凝胶干燥保存装置的商品,但价格较贵,效果也不很理想。在干燥过程中有时胶片会干裂,尤其是对一些含聚丙烯酰胺浓度较高(20%以上)的胶或较厚的胶片(1.5—2mm)。在工作中,我  相似文献   

20.
平板(Slab)聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)与含有十二烷基磺酸钠的聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)是一种重要的生化技术,在蛋白质与多肽的分析鉴定上,应用十分普遍。但电泳后的凝胶脆弱易碎,难长期保存。近年来,国外已有凝胶干燥保存装置的商品,但价格较贵,效果也不很理想。在干燥过程中有时胶片会干裂,尤其是对一些含聚丙烯酰胺浓度较高(20%以上)的胶或较厚的胶片(1.5—2㎜)。在工作中,我  相似文献   

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