艾比湖沙拐枣花蜜腺的发育解剖学研究

艾比湖沙拐枣植物的花蜜腺位于花丝基部并延续到花托,属于花托/雄蕊蜜腺,蜜腺由分泌表皮、产蜜组织和维管束组成。在花的发育过程中,蜜腺由本身的原始细胞分裂、分化而来;其花蜜腺在发育过程中液泡化动态明显,PAS反应测试细胞具阳性物质。泌蜜方式为:蜜汁由特化的表皮毛分泌到植物体外;其可能的泌蜜机理为:前蜜汁由产蜜组织合成,经特化的分泌表皮毛泌出。     

垂花青兰花蜜腺的发育解剖学研究

垂花青兰（Dracocephalum nutans Linn.）花蜜腺分布于子房基部的花托上,盘状蜜腺的上部裂成三小一大的四枚裂片,基部在膨大的花托外环绕一圈。蜜腺组织由分泌表皮、产蜜组织和维管束三部分组成,是典型的结构蜜腺;组织化学染色显示淀粉粒动态明显,因此又属淀粉蜜腺。在发育的过程中细胞液泡化动态明显,且淀粉粒和蛋白质具有明显的消长变化,蜜汁通过气孔器和表皮细胞的角质层泌出。     

新疆鼠尾草花蜜腺的发育解剖学研究

新疆鼠尾草（Salvia deserta Schang）花蜜腺位于子房基部的花托上,为盘状的花托蜜腺,其顶部裂成4片,其裂片大小不等,比例悬殊。蜜腺由产蜜组织和分泌表皮构成,又为结构蜜腺。组织化学染色显示淀粉粒动态明显,因此又属淀粉蜜腺。在发育的过程中细胞液泡化动态明显,且淀粉粒和蛋白质具有明显的消长变化,但PAS反应和苏木精脂类染色无明显变化。其泌蜜过程可能为：原蜜汁由邻近的韧皮部提供,经薄壁细胞运送至产蜜组织,在产蜜组织中进一步积聚、合成后,最终蜜汁通过变态气孔和分泌表皮细胞的角质层泌出。     

异株百里香花蜜腺的发育解剖学研究

异株百里香（Thymus marschallianus Willd）花蜜腺分布于子房基部的花托上,结构蜜腺盘状,成熟时膨大,环绕在花托外。蜜腺组织由分泌表皮、产蜜组织和维管束三部分组成;组织化学染色显示淀粉粒的积累是在蜜腺细胞发育的最初和最后,因此将其归为非淀粉型蜜腺。在发育的过程中细胞液泡化动态明显,而淀粉粒和多糖均不具有明显的消长变化;蜜汁是由韧皮部运转到泌蜜组织中的,再由表皮细胞的角质层渗到细胞外。     

黄杨花蜜腺的形态解剖学研究

黄杨花单性,雌雄同株,雄花花蜜腺４枚,乳头状,着生于退化雌蕊子房顶部;雌花花蜜腺３枚,短柱状,位于３枚花柱之间。雌、雄花蜜腺均由分泌表皮、产蜜组织和维管束构成,在发育过程中产蜜组织细胞的液泡都发生有规律的变化。雌花蜜腺大,属非淀粉型蜜腺,泌蜜量大,蜜汁含糖分多,维管束中仅含韧皮部;雄花蜜腺小,属淀粉型蜜腺,泌蜜量小．蜜汁含糖量小,维管束由木质部和韧皮部构成。     

龙眼花蜜腺的发育解剖学研究

对龙眼(Dimocarpus longan Lour.)花蜜腺的形态结构、发育过程以及蜜腺的组织化学变化进行了较为系统的研究;对花蜜腺结构与泌蜜的关系、泌蜜方式、起源和系统演化等作了初步的探讨。结果表明：龙眼的花盘蜜腺位于花托上,呈环状环绕在雌雄蕊基部外围,花芽分化约30d,在雄蕊和花被之间的花托表面,蜜腺原基也开始形成,由花托表面2～3层细胞脱分化形成居间分生组织发育而来;龙眼花蜜腺由分泌表皮和产蜜组织构成,属结构蜜腺;分泌表皮角质层极薄,密布单细胞绒毛,未发现有气孔;产蜜组织由亚腺细胞、产蜜细胞、油细胞和维管束组成;在蜜腺发育过程中,产蜜细胞的液泡和多糖物质发生有规律的变化;蜜腺的原蜜汁来源于韧皮部,蜜汁经表皮角质层渗出。     

牛至花蜜腺的发育解剖学研究

牛至花蜜腺位于子房基部的花盘上,属于盘状蜜腺。蜜腺组织由分泌表皮和产蜜组织组成。分泌表皮液泡化明显,并分布有气孔器。在子房发育成熟后,由花盘表面细胞恢复分裂能力形成蜜腺原基。产蜜组织在发育过程中,液泡、淀粉粒都呈现出一定的消长规律,此种规律与蜜汁的合成和分泌有关。原蜜汁由蜜腺周围的韧皮部提供,经产蜜组织积聚合成,然后通过气孔器泌出。本文还对霜冻条件下蜜腺的结构和功能进行了初步分析。     

薄荷花蜜腺的发育解剖学研究

薄荷的花蜜腺位于花盘上,属花盘蜜腺。蜜腺由分泌表皮、产蜜组织组成,其下分布有通向子房壁的维管束。分泌表皮的角质层薄,具腺细胞特征,气孔发育正常。产蜜组织为２－３层细胞组成,与其内的薄壁组织有明显区别。蜜腺由花盘发育中表皮及其内的细胞分化发育而成。在开花前后,分泌表皮和产蜜组织的细胞内液泡和淀粉粒呈有规律的变化。蜜汁以渗透方式从表皮细胞直接渗出。     

荠的花蜜腺发育解剖学研究

荠(Capsella brsa-pastoris(L.)Medic.)的花蜜腺共4枚,都呈半圆形、绿色。蜜腺由分泌表皮、泌蜜组织和维管束组成,属于结构蜜腺。在花的各部分分化后,由花托表层细胞恢复分裂能力形成蜜腺原基。在蜜腺发育过程中,泌蜜组织的液泡和淀粉粒发生有规律的变化。荠的花蜜腺按其着生位置,属于花托蜜腺;其发生方式属居间生长,4枚蜜腺同步发生;根据其结构和泌蜜前后的多糖物质变化分析,其原蜜汁源于维管束的韧皮部,通过泌蜜组织输送到气孔下腔,然后由变态气孔排出。     

沙枣花蜜腺的发育解剖学研究

沙枣的花蜜腺位于花柱基部的筒状花盘上,属花盘蜜腺,其蜜腺位于花盘外方,由分履表皮和产蜜组织组成。分泌表皮具有角质层和变态的气孔器。产蜜组织在发育过程中,其液泡和淀粉粒都随着蜜腺的发育呈现一定的消长规律,最后形成的蜜汁由盘状蜜腺表面的气孔泌出。     

荔枝花蜜腺发育解剖学研究

荔枝花蜜腺呈盘状,位于子房和花萼之间的花托上。花盘蜜腺由表皮、产蜜组织、维管束组成。蜜腺的原始细胞由花托表面的2~3层细胞脱分化产生。成熟蜜腺产蜜组织细胞含有淀粉粒,为淀粉型蜜腺,表皮细胞内无淀粉粒。产蜜组织出现分化:PAS反应颜色深的细胞成网状分布,与表皮下方的1~2层细胞相连,构成蜜汁的运输通道;颜色浅的细胞分布于网眼处。蜜腺表皮上的角质层波状皱折,有泌蜜孔。表皮毛主要起保护作用,大部分蜜汁通过泌蜜孔排出。     

短果大蒜芥花蜜腺的发育解剖学研究

短果大蒜芥（Sisymbrium loeselii L.var.brevicarpum Z.X.An)花蜜腺位于雄蕊基部花托上,属十字花科环状花蜜腺类型中的侧棱环四圆环亚型。蜜腺由分泌表皮,产蜜组织和维管束组成。分泌表皮上有变态气孔器,蜜腺中部的气孔器呈舟状分布。产蜜组织中的维管束来自于花托中的维管束分支,属较进化的十字花科花蜜腺的亚型类型。蜜腺原基是在花的各部分原基分化后,由雄蕊基部花托表面区域的2－3层细胞,经反分化形成,环状蜜腺发生发育同步,在蜜腺的发育过程中,蜜腺组织中的液泡和淀粉粒都发生了有规律的变化,其原蜜汁由维管束提供,运转至产蜜组织,最后由变态气孔泌出。     

鹅掌柴花蜜腺的发育解剖学研究

对鹅掌柴(Scheffler octophylla Harms．)花蜜腺的发育进行解剖结构观察。鹅掌柴花盘蜜腺位于下位子房上方环绕花柱基部。蜜腺由分泌表皮、产蜜组织组成,心皮维管束与其相邻并发出一些伸入蜜腺基部的短分枝。蜜腺起源于心皮原基基部外侧的几层细胞。鹅掌柴花蜜腺为淀粉型蜜腺,淀粉粒为许多微小颗粒聚集成的复粒。原蜜汁由蜜腺基部维管束的筛管提供,达产蜜组织细胞和表皮细胞后以淀粉粒的形式贮藏。泌出的蜜汁一部分来自淀粉粒的降解,一部分来自泌蜜期输入的原蜜汁。表皮和产蜜组织细胞均具泌蜜功能。泌出的蜜汁大部分通过气孔排出,还有部分由角质层渗出。     

四种植物花蜜腺的解剖学研究

通过对石竹、庐山小檗、活血丹和紫云英四种植物花蜜腺的外部形态、显微切片和扫描电镜观察,了解到石竹花蜜腺是雄蕊类型,蜜汁通过角质层间小孔分泌;庐山小檗花蜜腺是花被类型,其每个分泌表皮细胞的外切向壁中央向内凹陷与角质层之间形成角质层下空隙,蜜汁由表皮细胞分泌后贮存于角质层下空隙中,在蜜汁积累过程中不断增加对角质层的压力,最后冲破角质层分泌到体外;活血丹和紫云英花蜜腺属于花托类型,前者蜜汁从分泌表皮细胞通过角质层直接渗出,后者蜜汁通过变态气孔分泌。本试验的四种植物花蜜腺中维管组织有三种不同类型。     

烟草花蜜腺发育的解剖学研究

烟草的花蜜腺位于子房基部 ,围绕子房 ,属于子房蜜腺。蜜腺由分泌表皮和泌蜜组织组成 ,分泌表皮角质膜厚薄不匀 ,表皮上分布少量气孔器 ,气孔凹陷 ,孔下室不明显 ,泌蜜组织细胞多层。蜜腺邻接子房壁维管束 ,本身没有维管组织。蜜腺由子房基部的外壁表皮及其相邻的内侧细胞经分裂、生长、分化而来 ,在发育过程中 ,细胞中的液泡和淀粉粒都呈现一定的消长规律。原蜜汁由子房壁维管束提供 ,经过泌蜜组织细胞加工后 ,蜜汁通过气孔和薄的角质膜处泌出。     

Anatomical and ultrastructural changes of the floral nectary ofPisum sativum L. during flower development

Summary The floral nectary ofPisum sativum L. is situated on the receptacle at the base of the gynoecium. The gland receives phloem alone which departed the vascular bundles supplying the staminal column. Throughout the nectary, only the companion cells of the phloem exhibited wall ingrowths typical of transfer cells. Modified stomata on the nectary surface served as exits for nectar, but stomatal pores developed well before the commencement of secretion. Furthermore, stomatal pores on the nectary usually closed by occlusion, not by guard-cell movements. Pore occlusion was detected most frequently in post-secretory and secretory glands, and less commonly in pre-secretory nectaries. A quantitative stereological study revealed few changes in nectary fine structure between buds, flowers secreting nectar, and post-secretory flowers. Dissolution of abundant starch grains in plastids of subepidermal secretory cells when secretion commenced suggests that starch is a precursor of nectar carbohydrate production. Throughout nectary development, mitochondria were consistently the most plentiful organelle in both epidermal and subepidermal cells, and in addition to the relative paucity of dictyosomes, endoplasmic reticulum, and their associated vesicles, the evidence suggests that floral nectar secretion inP. sativum is an energy-requiring (eccrine) process, rather that granulocrine.Abbreviations ER endoplasmic reticulum - GA glutaraldehyde - SEM scanning electron microscopy     

Comparative studies on petals structure,micromorphology and ultrastructure in two species of <Emphasis Type="Italic">Stephania</Emphasis> (Menispermaceae)

Petals in Ranunculales are nectariferous organs referred to as “nectary leaves” and show diversity in shape, color and structure due to various positions and structure of nectary tissue. Menispermaceae are in the core Ranunculales and have green and short nectary leaves, but the knowledge on structure and functions of the nectary leaves is limited. We use scanning electron microscopy, light microscopy and transmission electron microscopy to investigate nectary leaves structure, micro-morphology and ultrastructure in two species of Stephania in Menispermaceae. Our results show that secretory tissues present in the upper part of abaxial side of the nectary leaves and the specialized secretory epidermal cells are distinguished from other cells. In Stephania cepharantha, clusters of secreting epidermal cells are raised slightly above other cells to form some “bulges” (8–25 cells arranged in a cluster) and connected to distinct huge sieve tube elements. In contrast, in Stephania japonica, secretory epidermal cells are lower than non-secreting cells and result in many “well-like” structures (comprising 6–20 cells per “well”), and have no sieve tube element connection. Secretory epidermal cells have dense cytoplasm, large nucleus and abundant organelles. Nectar secretions are exuded via micro-channels or pores of cuticle on outer walls. The type of secretory tissue in Stephania is the variant of nectarioles.     

荆条花蜜腺发育解剖学研究

荆条（Ｖｉｔｅｘ ｃｈｉｎｅｎｓｉｓ Ｍｉｌｌ．）花蜜腺属于淀粉型子房蜜腺,呈圆筒状环绕于子房的基部。蜜腺外观上无特殊结构,表面有。由分泌表皮和泌蜜组织组成,包括分泌表皮、气孔器、泌蜜薄壁组织和维管束。密腺和子房壁起源相同。花蕾膨大期,泌蜜组织细胞中产生大液泡;露冠期,泌蜜组织中形成维管束;花蕾初放期,分泌表皮细胞分化形成气孔器,无气孔下室,淀粉粒的积累在此期达到高峰;盛花期,蜜腺中已无淀粉粒,密