镰羽贯众离体培养成植株

植物名称:镰羽贯众(Cyrtomium balansae)。材料类别:幼叶片、叶柄。培养条件:诱导愈伤组织培养基:N_6+KT0.1～0.4mg/L(单位下同)+2,4-D0.2～0.8,蔗糖4％,pH5.8～6.0;丛生芽诱导培养基:MS+BA 0.1～0.3+NAA 0.3～1.0;生根培养基:1/2MS+IBA 0.4+IAA 0.2。培养温度24～28℃,光照采用四支40W的日光灯,与培养材料相距     

仙人掌果的组织培养

以仙人掌果的植株顶端幼嫩茎段为外植体,在添加NAA 0.5mg/L+6-BA 5.0mg/L的MS培养基中诱导产生丛生芽,在此培养基上继代培养,丛生芽数不断增加。在添加NAA 0.2mg/L+IBA 1.0mg/L的MS培养基上可正常长根。     

玄参组织培养植株再生

材料名称:玄参(Scrphularia mingpoensis) 材料类别:幼叶、芽培养条件:愈伤组织诱导培养基为MS+NAA2(mg/l,下同)+BA0.2,及MS+2,4-D2+KT0.2,分化培养基为N_6+BA2+NAA0.2和MS+BA2+KT1+NAA0.2。生根培养基为简易培养基(1050     

水稻叶和根的愈伤组织诱导及植株再生

植物名称:水稻(Orgza sativa)品种:寒丰一号。材料类别:幼叶、幼根。培养条件:诱导愈伤组织培养基为MS,附加:(1)2,4-D5.0mg/L(单位下同)+BA1.0;(2)2,4-D4.0+NAA2.0+IAA2.0+BA0.5+ZT0.5+KT0.5;(3)NAA5.0+BA1.0;(4)2,4-D1.0+     

人参组织培养成苗

植物名称:人参(Panax schinseng)材料类别:二年生人参嫩叶,消毒后分割接种。培养条件:1.诱导培养基:MS附加2,4-D2mg/L(单位下同)+BA0.5,2,4-D2+BA1,2,4-D2+BA2,2,4-D2+BA3,2,4-D2+BA5.2。分化培养基:MS+BA3+NAA5+IAA1,MS+BA2+NAA3+IAA4。3.生根培养基:1/2MS+NAA1.0,活性炭0.2％;1/2MS+IBA0.8,     

无花果的组织培养

植物名称:无花果(Ficus carica)。材料类别:多年生植株当年萌生的带腋芽嫩茎段。培养条件:基本培养基为MS。长芽培养基附加BA 0.5～1.0mg/L(单位下同)+2,4-D0.5～1.0+NAA 0.1～0.5;丛生芽增殖培养基附加BA 1～2+NAA 0.1～0.2;生根培养基附加NAA 0.2。     

巴西铁树茎段培养与试管繁殖

植物名称:巴西铁树,又叫山德氏龙血树(Dracaena sanderiena)。材料类别:多年生植株基部二年生的侧枝茎段。培养条件:用改良的MS配方为基本培养基。诱导愈伤组织时为 MS+2,4-D1-3mg/l(单位下同)+BA0.5—1.0;分化培养基为MS+BA2—4+NAA0.01—0.2;丛生芽的增殖为MS+BA1—2+NAA0—0.1;生根培养基为0.5MS+NAA0.1—     

蜈蚣草叶片愈伤组织的诱导和植株再生

植物名称:蜈蚣草(Pteris wittata)。材料类别:幼叶、叶柄。培养条件:诱导愈伤组织培养基为N_6+KT0.2～0.4mg/L(单位下同)+2,4-D0.3～0.6,芽分化培养基为MS+BA0.2+NAA0.3+LH500;     

八角莲组织培养研究

以八角莲种子为外植体,MS为基本培养基,通过不同的激素种类和浓度配比,对八角莲进行组织培养研究。结果表明:种子在MS+BA1.0mg/L+IBA0.5mg/L+GA34.0mg/L培养基上容易萌芽,发芽率为72.4 %;培养基MS+BA10.0mg/L+GA30.5 mg/L可诱导种子幼苗形成丛生芽;继代繁殖在MS+BA(8.0～10 .0)mg/L+GA32 .0mg/L与低浓度BA或无BA的培养基上进行循环培养效果较好;MS+NAA1.0 mg/L+AC0.2g/L适宜诱导生根获得再生植株,生根率100%。带叶叶柄在MS+BA1.0mg/L+2-ip(0.5～1.0) mg/L+NAA0.02 mg/L培养基上可诱导愈伤及根,直接形成再生植株。生根苗移栽成活率90 %。     

白鹤芋的试管繁殖

植物名称:白鹤芋(Spathiphyllum floribundum),又名白掌、异柄白鹤。材料类别:幼嫩茎基部,按常规方法表面消毒后切取3～5mm的小段。培养条件:诱导丛生芽及增殖培养基(1)MS+BA2mg/L(单位下同)+NAA0.5～1.0;(2)MS+BA 1.0+ZT1.0+IBA0.1;生根培养基1/2MS+     

南美香瓜梨离体培养快速复壮繁殖的研究

南美香瓜梨茎段被移植在ＭＳ基本培养基上,其中添加有ＢＡ６．０（ｍｇ／Ｌ以下单位相同）、ＩＢＡ０．２培养４周后增殖到３．８倍。用其嫩叶切块,在含有２,４—Ｄ０．５,ＢＡ０．２５的ＭＳ培养基上先诱导形成绿色愈伤组织,然后转入含ＢＡ６．０和ＩＢＡ０．２的ＭＳ培养基上,产生丛生不定芽。将２．５～３．０ｃｍ的不定芽切下移入含ＩＢＡ０．５与０．２％活性炭,１／２ＭＳ无机盐的培养基上,２５天后诱导生根,移栽成活率达９０％以上。     

激素对百合植株再生的影响

本研究设计了 1 5种不同配比的激素组合研究 2 ,4 -D和 6 -BA对百合鳞片叶器官发生和体细胞胚胎发生的影响。结果表明 :在 MS培养基上 ,BA可诱导外植体直接分化不定芽 ,其中 1 .0～ 2 .0 mg/L BA诱导不定芽的分化频率最高 ,6 .0 mg/L BA抑制不定芽分化 ;2 ,4 -D可诱导直接体细胞胚胎发生 ,其中 4 .0 mg/L2 ,4 -D诱导体细胞胚胎发生的频率最高 ,而 6 .0 mg/L 2 ,4 -D诱导体细胞胚胎发生的频率降低 ;当培养基中同时含有 BA和 2 ,4 -D时 ,既出现不定芽 ,又出现体细胞胚。当再生苗移入无激素的 MS培养基和含有 1 .0mg/L和 2 .0 mg/L IAA的 MS培养基上时 ,只有无激素的 MS培养基有利于根的形成。此外 ,鳞片叶的大小和外植体的接种方向也影响外植体分化     

鱼腥草体细胞胚胎发生和植株再生

目的:利用鱼腥草的叶片和叶柄为材料,进行体细胞胚胎诱导及植株再生研究。方法:运用正交设计试验,考察在改良的MS固体培养基上添加不同种类、不同浓度的植物生长物质组合及其配比对鱼腥草愈伤组织诱导、体细胞胚胎发生及植株再生的影响。结果:鱼腥草无菌苗叶片在含有2,4-D 1.0 mg/L 6-BA 0.5 mg/L的改良MS培养基上能诱导出胚性愈伤组织;胚性愈伤组织在含有6-BA 1.0 mg/L的改良的MS培养基上诱导体细胞胚的发生;叶柄在含有6-BA 1.0 mg/L改良MS培养基上直接产生体细胞胚。体细胞胚在改良的MS NAA0.1 mg/L 6-BA 1.0 mg/L的培养基上能够快速繁殖,形成大量不定芽,在不加任何激素的MS培养基上就可以萌发出不定根,发育为成完整植株,在MS IBA 1.0 mg/L的固体培养基上能够形成大量的根。结论:建立了鱼腥草体细胞胚胎发生及植株再生的体系。     

红叶石楠离体植株再生频率的影响因素研究

以红叶石楠带芽茎段及叶片为外植体,分析激素和培养条件等因子对愈伤组织诱导及植株再生的影响。结果表明,MS+0.10mg/L 2,4-D+0.50mg/L NAA+0.50mg/L 6-BA+0.50mg/L KT为最佳愈伤组织诱导培养基,暗培养的愈伤组织诱导率高于光培养,其愈伤组织诱导率可达100%(带芽茎段)和98%(叶片)。MS+0.50mg/L IBA+2.00mg/L 6-BA+2.00mg/L KT为最佳分化增殖培养基,分化率91%以上,增殖倍数6.8以上,均达到最高。1/2MS+0.50mg/L IBA+0.01mg/L NAA为最佳生根培养基,生根率92%,生根量4.4根/株,均达到最高。     

长柄双花木愈伤组织诱导及植株再生

以长柄双花木当年生嫩梢上的叶柄、嫩茎、嫩叶为外植体,对影响长柄双花木愈伤组织诱导和继代、分化主要因素进行研究。结果表明:在培养基MS+NAA0.5mg/L+2,4-D2.0mg/L上,三种外植体均可诱导出愈伤组织,其中叶片愈伤组织诱导率最高。该培养基还可作为愈伤组织继代培养基,但继代培养周期不超过2周。愈伤组织接种在MS+BA2mg/L上分化不定芽,根的诱导在1/2MS+IBA0.5mg/L培养基上进行。     

山茱英的组织培养与植株再生

目的：建立山茱萸的组织培养及植株再生体系。方法：分别以山茱萸的叶片、花柄和花托为材料,进行山茱萸不同外植体的离体培养研究,筛选最佳培养基组成。结果：适宜山茱萸叶片愈伤组织诱导的培养基组合为1／2MS,附加BA2．0mg/L、IBA0,5—1．0mg／L;适宜山茱萸花柄、花托愈伤组织诱导的培养基组合为1／2MS,附加BA1．0mg／L、2,4-D0．5mg／L;在1／2MS附加BA2．0mg／L、IBA0．05mg／L的培养基上,可诱导不定芽的产生;1／2MS附加IBA2．0mg／L的培养基有利于山茱萸试管苗生根。讨论：山茱萸的花托是进行组织培养的最适外植体,白色或翠绿色、结构致密的愈伤组织较易分化产生不定芽。     

荞麦组织培养及高频植株再生体系的建立

通过对荞麦(Fagopyrum esculentum Moench)不同外植体、不同激素配比的比较研究,建立了荞麦离体培养高效植株再生体系。荞麦子叶切段在含2．0 mg/L 2,4-D和1．0 mg/L 6-BA的MS培养基上愈伤组织诱导率为89．6％,而下胚轴切段在含2．0 mg/L 2,4-D和1．0-2．0 mg/L 6-BA MS培养基上愈伤组织诱导率高达100％。在2．0 mg／L 6-BA、0．1 mg,L IAA和1 mg／L KT的MS培养基上通过愈伤组织间接分化或外植体直接分化形成不定芽。来自子叶和下胚轴的愈伤组织的分化率分别为42．5％和73．6％,下胚轴的分化率明显高于子叶。将生长状态良好的不定芽转至含1．0 mg/L IBA和0．5mg/L NAA的1/2 MS培养基上生根,生根率达到100％。再生植株移栽到盆土中,成活率达91．6％,并且生长状态和特征均表现正常。     

虎杖愈伤组织的诱导及高产白藜芦醇材料的筛选

将虎杖(Polygonum cuspidatum)不同外植体经不同消毒时间处理后,接种在添加不同激素种类和水平的相同基本培养基上或相同激素种类和水平基本培养基上进行诱导实验,同时对根、根茎芽、叶、韧皮诱导的愈伤组织进行白藜芦醇的含量测定实验,其结果表明:基本培养基以MS较好,外植体叶对激素种类较为敏感,其中适当浓度的NAA诱导愈伤组织比2,4-D的效果要好,KT比BA要好,在有KT存在的培养基上诱导愈伤组织比较紧密,有利于分化;在MS NAA2m g/L KT0.1mg/L培养基上诱导愈伤组织较好,根茎芽的诱导率最高,为73%.愈伤组织的生长趋势从接种的第3d开始生长,到21d时生长达到最高峰,干重为0.461g,以后生长速度减慢.不同材料诱导的愈伤组织中白藜芦醇的含量以根茎部芽的愈伤组织含白藜芦醇最高,其次是叶和根,最低的为韧皮.     

枸杞下胚轴原生质体培养再生植株(简报)

枸杞是我国常用的一种滋补中药,具有较高的经济价值。以枸杞茎尖、叶片、花药、胚乳为材料的组织培养均获得再生小植株。由愈伤组织分离出的原生质体培养形成了愈伤组织。最近,由叶肉原生质体培养获     

Effect of plant growth regulators on regeneration of plantlets from bud cultures ofCymbopogon nardus L. and the detection of essential oils from thein vitro plantlets

Cymbopogon nardus L. could be propagated via tissue culture using axillary buds as explants. The aseptic bud explants obtained using double sterilization methods produced stunted abnormal multiple shoots when they were cultured on Murashige and Skoog medium (MS) supplemented with 1.0 mg L^-1 or 2.0 mg L^-1 benzyladenine (BA). Stunted shoots that cultured on MS + 1.0 mg L^-1 BA + 1.0 mg L^-1 N⁶-isopentenyl-adenine (2iP) could induce elongation of shoots from about 60% of the stunted shoots. Normal multiple shoots could be induced at the highest (19.7 shoots per bud) from the bud explants within six weeks when cultured on proliferation medium consisted of MS supplemented with 0.3 mg L^-1 BA and 0.1 mg L^-1 indole-3-butyric acid (IBA). The separated individual shoot produced roots when transferred to basic MS solid medium. The essential oils that were contained in the mature plants namely citronellal, geraniol and citronellol were also found in thein vitro C. nardus plantlets. Citronellal was the main essential oil component in the matured plants while geraniol was the main component in thein vitro plantlets.