乙烯生成受抑后烟草叶片的脱分化（简报）

2,4—D对烟草叶片外植体脱分化和乙烯产生的诱导作用需要其连续存在,一旦外植体被移到不含2,4—D的培养基上后,脱分化过程即减缓;产生乙烯的能力也降低。AVG显著抑制由 2,4-D诱导的乙烯产生和脱分化。STS对脱分化过程也有抑制作用,且抑制程度随浓度而递增。表明2,4-D诱导的脱分化过程可能与乙烯有关。     

紫背天葵愈伤组织的诱导和器官分化

本文报道了紫背天葵种子、种胚异形苗及试管苗叶片的脱分化和植株再生的三种类型:(1)通过愈伤组织分化形成植株。(2)促使无菌苗叶片产生多生长中心,从而长成小植株。(3)由愈伤组织分化根后再分化出芽而成植株。在以 SH 培养基附加0.5 ppm 2,4-D、2ppmP-CPA、0.1ppmKT 和 MS 培养基附加0.1ppm 2,4-D、2.5ppm NAA、0.25ppm KT 得到愈伤组织。比较了不同浓度的 2,4-D 和不同浓度的蔗糖对愈伤组织发生的效应,得出1ppm2,4-D 效果好,蔗糖以3%为宜。发现愈伤组织来源于 MS 及用 MS 为基础的分化培养基,分别比来源于 SH 及用 SH 为基础的分化培养基的分化效率高。比较试验了 BA 和2ip 的分化效率,在0.25—2ppm 范围内 BA 对紫背天葵愈伤组织分化效率高。细胞学实验表明,叶片长出的小植株起源于表皮细胞。利用试管无菌苗叶片直接诱导植株的方法,可作为快速无性繁殖紫背天葵的手段。     

小麦遗传转化受体系统建立的研究

选用‘小偃22’和‘宁春16’小麦品种的成熟胚和幼胚进行培养,研究不同种类的胚和培养因子对愈伤组织诱导和分化的影响。结果表明,幼胚和成熟胚的愈伤组织诱导率无明显差异,但较高浓度的2,4-D有利于成熟胚的诱导,而幼胚培养时2,4-D浓度的影响效果因品种而异;两种外植体分化率的高低与KT/IAA的配比均有密切关系,但高浓度的激素水平不利于成熟胚的分化;诱导培养基中低浓度的2,4-D有利于所诱导的愈伤组织的分化。同时,在诱导培养基中添加低浓度的KT能显著提高两品种成熟胚愈伤组织的分化率;各种培养基处理与品种间都存在显著的互作效应,‘小偃22’成熟胚培养的最佳培养基组合为MSD 3.0 mg/L 2,4-D和MSD 0.5 mg/LIAA 1.0 mg/L KT,幼胚培养为MSD 4.0 mg/L 2,4-D和MSD 0.5 mg/L IAA 1.0 mg/L KT;‘宁春16’成熟胚培养为MSD 4.0 mg/L 2,4-D和MSD 1.0 mg/L IAA 1.0 mg/L KT,幼胚培养时为MSD 1.0 mg/L 2,4-D和MSD 2.0 mg/L IAA 2.0 mg/L KT。     

大赖草成熟胚愈伤组织诱导及其植株再生

植物名称:大赖草(Leymus racemosus)。材料类别:成熟胚。培养条件:以MS为基本培养基,诱导愈伤组织和分化培养基为:(1)2,4-D 1.0mg/L(单位下同);(2)2,4-D1.0 KT0.2;(3)2,4-D1.0 KT     

‘SK4—316’胡萝卜体胚的诱导和培养

以'SK4-316'胡萝卜无菌苗的下胚轴为外植体,研究不同培养基配方和培养条件对愈伤组织诱导、体细胞胚间接发生及其同步化培养的影响,以及不同脱分化时间、脱分化培养基及外植体续存时间对体细胞胚直接发生的诱导及其培养的影响.结果表明:含3%蔗糖、0.8%琼脂的1/2MS + 2,4-D 2.5 mg/L + 6-BA(或KT)0.5 mg/L + CH 300 mg/L是诱导愈伤组织的良好培养基;1/2MS + 2,4-D 1.25 mg/L + KT 0.25 mg/L + 6-BA 0.25 mg/L(含3%蔗糖)适于愈伤组织分化并诱导体胚发生,0.02% ABA对体胚的诱导有促进作用,0.06% ABA或15% PEG能促进体胚成熟;外植体在MS + 2,4-D 1.0 mg/L固体培养基上脱分化培养48 h,再转入MS + CH 300 g/L液体培养基中可诱导体胚直接发生,但随着外植体续存于诱导培养基中时间的延长,体胚发生变异的几率也渐增.     

单倍体水稻体细胞组织的植株再生及其激素调节

本文报道激素对调节单倍体幼穗组织去分化与分化的方向以及器官形成的影响。发现在试验浓度内(2毫克/升),2,4-D诱导组织去分化,NAA诱导根的大量形成,KT抑制愈伤组织形成和器官分化。KT2毫克/升 NAA2毫克/升使外植体不经过愈伤组织阶段就直接分化大量的苗。当KT/NAA=2:2时,直接分化苗的频率较高,达76％,不同浓度的2,4-D试验表明,2,4-D2毫克/升或4毫克/升时,愈伤组织诱导率高达94％以上。固体和液体继代培养中,低浓度的2,4-D(0.5—0.1毫克/升)加0.1毫克/升的KT,对愈伤组织保持旺盛的生长和后来的分化有良好的作用。发现单倍体体细胞组织再生的植株,白苗很少。讨论了单倍体体细胞愈伤组织无性系用于诱发突变和体细胞遗传研究的可能性。对于愈伤组织的再分化,不仅需要细胞分裂素,而且诱导培养基中生长素浓度的影响也是显著的。     

小麦成熟胚愈伤组织诱导及分化研究

以2个小麦品种成熟胚为外植体进行离体培养,研究了不同预处理、不同2,4-D浓度及与KT组合、不同蔗糖浓度等因素对愈伤组织诱导及分化的影响。结果表明:4℃低温预处理可提高愈伤组织的出愈率及再生苗率,2个材料的出愈率及再生苗率均达到90%和30%以上;在不同预处理条件下,2,4-D浓度对出愈率及再生苗率的影响与基因型有关,2,4-D浓度为1~2 mg/L更有利于愈伤组织诱导及分化;附加KT能缓解高浓度2,4-D对再生苗率的抑制作用,而对于在1、2 mg/L 2,4-D的培养基中附加KT则不表现这种作用;蔗糖浓度则在30 g/L条件下更有利于愈伤组织诱导。因此通过4℃低温预处理,在MS基本培养基中附加1~2mg/L 2,4-D及30 g/L蔗糖亦可促进小麦成熟胚愈伤组织的诱导和分化。     

2,4-D浓度对花生体细胞胚发生的影响

选用丰花2号、鲁花11和农大818三个花生品种的胚小叶为外植体,在MSB培养基中分别添加不同浓度的2,4-D(1、5、10、15、20ms／L)作为诱导培养基,以MSB为继代培养基,研究2,4-D浓度对花生体细胞胚胎发生的影响。结果表明：2,4-D浓度对花生胚小叶脱分化及再分化有显著影响,低浓度的2,4-D对外植体脱分化有利,而较高浓度对再分化有利,诱导体细胞胚的最适2,4-D浓度为15mg／L。不同品种的体细胞胚诱导频率存在差异,丰花2号和农大818比鲁花11的体细胞胚诱导频率高;且丰花2号的成苗能力较强,在MSB培养基上即可成苗,鲁花11及农大818成苗能力较差。     

生长调节物质对石刁柏愈伤组织诱导及根芽分化的影响

石刁柏幼茎在0.1～20mg/L 2,4-D和0.1～80mg/LNAA条件下,均能形成愈伤组织,2,4-D和6-BA,NAA和KT配合使用,愈伤组织诱导率能大幅度提高,高速100％。几种生长调节物质中以IAA对促进根的分化最有利。6-BA或KT中芽分化率以0～1mg/L的浓度为佳。     

连钱草愈伤组织诱导及增殖研究

对连钱草Glechoma longituba (Nakai) Kupr.愈伤组织培养作了初步的探索,以不同的培养条件,利用连钱草的顶芽、叶、叶柄为外植体,研究了连钱草愈伤组织的培养。结果表明：在以MS培养基和LS培养基为基本培养基附加不同外源激素2,4-D、NAA、KT、BA条件下,连钱草在一个较宽的生长范围内,均可诱导产生连钱草的愈伤组织,但不同外植体、不同类型植物激素及其不同浓度对愈伤组织发生均有一定影响：作为外植体,连钱草叶柄和叶都可顺利诱导出愈伤组织;生长素2,4-D对连钱草外植体的脱分化起促进作用,但NAA却抑制愈伤组织的形成;细胞分裂素KT和BA均能与2,4-D组合促进愈伤组织的诱导。MS+2,4-D在光暗交替条件下和LS+2,4-D在黑暗条件下有利于连钱草愈伤组织的诱导,最佳诱导和增殖条件是MS+2,4-D（1.5 mg·L^-1）+BA（1.0 mg·L^-1）光、暗交替（光照14 h·d^-1）。在此条件下, 30 d后,叶的诱导率达91.38%,叶柄的诱导率达100%;愈伤组织继代培养14 d后,平均增殖率达202.2%。     

植物激素对几种禾本科植物外植体的胚胎发生及形态发生途径的影响(简报)

2,4-D对胚胎发生起着关键的作用;单独使用细胞分裂素时,外植体不能脱分化,与2,4-D配合时,抑制双穗雀稗外植体愈伤组织的诱导,而1～5mg/L的2,4-D对苏丹草有促进影响:马唐对其不敏感。细胞分裂素与2,4-D配合使用,对苏丹草胚状体的分化亦有显著的促进效果。     

不同激素对小麦盾片再生能力的影响

选用10种含不同浓度2,4-D、Dicamba及2,4-D与Dicamba组合的诱导培养基和3种含0.01mg.L-1 2,4-D和不同浓度ZT的分化培养基,研究Dicamba、2,4-D、ZT对愈伤组织诱导和分化的影响。结果表明:2,4-D与Dicamba组合的诱导激素在再生分化上显著优于2,4-D和Dicamba。以添加1.5mg.L-1 2,4-D和0.5mg.L-1Dicamba为诱导培养基,分化培养基添加1mg.L-1 ZT和0.01mg.L-1 2,4-D对愈伤组织分化效果为最佳,绿苗分化率最高可达90%。分化培养基中1mg.L-1 ZT有利于根的分化。该研究结果为建立高效、稳定的新疆主栽小麦品种的遗传转化系统奠定了基础。     

KT和2,4-D对知母愈伤组织再分化的影响

本文探讨KT和2,4-D组合对知母愈伤组织再分化的影响。结果表明：知母愈伤组织再生芽和促进再生苗长高以及愈伤组织增殖的最佳培养基均为MS + KT 4.0 mg/L。单独使用KT或KT与2,4-D组合均可抑制知母愈伤组织生根。     

濒危中药材太白米组织培养及总黄酮含量测定

以太白米(Notholirion bulbuliferum)地下小鳞茎为外植体,通过在MS基本培养基添加不同浓度2,4-D、KT、TDZ和NAA,研究不同植物生长调节剂对太白米愈伤组织诱导的影响.结果显示,4种植物生长调节剂在不同水平上对愈伤组织诱导有显著作用(2,4-D、TDZ,P<0.01;NAA、KT,P<0.05),诱导愈伤组织的最佳激素组合是0.5 mg·L~(-1) 2,4-D+0.5 mg·L~(-1) NAA+0.2 mg·L~(-1) KT+0.1 mg·L~(-1) TDZ,愈伤组织在该培养基上继代培养有不定芽分化,如用相同浓度ZT代替KT则分化的不定芽增多.HPLC分析显示野生小鳞茎、愈伤组织和不定芽中总黄酮含量无显著差异,分别为干重的13.3%、11.4%和11.9%.     

不同浓度激素对野生细叶结缕草愈伤组织的诱导与分化的影响

以野生的细叶结缕草的匍匐茎为外植体,MS为基本培养基,研究2,4-D和BA及2,4-D和IAA不同浓度组合对其愈伤组织诱导与分化的影响。研究表明:(1)5.0mg/L的2,4-D对愈伤组织诱导有很大的促进作用;(2)匍匐茎诱导愈伤组织宜采用MS 2.0mg/L 2,4-D 4.0mg/L IAA,产生的愈伤组织分化情况也较好。     

THIDIAZURON对乌蔹莓(Cayratia japanica)体细胞胚胎发生的影响

乌蔹莓的未授粉子房外植体培养于附加不同浓度2,4-D(0,0.05,1.0,1.5,2.0mg/L单位下同)单独作用或2,4-D 与 TDZ(0.002)或 KT(0.05)结合使用的改良 MS 培养基上,诱导胚性愈伤组织。在附加2.4-D(0.5-1.0)和 TDZ 的培养基上得到最好的结果;愈伤组织诱导频率高可达86—87%。愈伤组织鲜重平均可达100mg/外植体以上。2,4-D 与 KT 结合使用时的诱导效果也较其单独使用时为好;TDZ 或 KT 与生长素结合使用时,尤其在2,4-D     

白头翁花茎离体培养及组织分化的研究

对白头翁(Pulsatilla chinensis)花茎不同部位的切段分别进行了培养,在MS+6-BA1ppm+2,4-D0.1ppm的培养基上,诱导愈伤组织频率最高的可达90.4％,分化芽的频率最高的可达23.8％;花茎不同部位切段的反应基本相同。细胞组织学研究表明,由外植体皮层细胞、韧皮部细胞及维管束周围细胞均可脱分化启动产生愈伤组织。在外植体培养一月后,由愈伤组织表层细胞形成不定芽或由愈伤组织形成类似叶状体的圆柱状结构,再由其表层分化出不定芽。     

羊草与灰色赖草F1代细胞悬浮系的建立及植株再生

本研究以羊草(L eym us ch inensis)与灰色赖草(L eym us cinereus)杂种F1代幼穗为外植体诱导愈伤组织,在3.0 m g/L 2,4-D M S培养基上继代1次后,转入不同浓度激素(2,4-D、IAA、KT)配比和不同浓度蔗糖的M S液体培养基进行振荡培养,建立杂种F1代细胞悬浮系和植株再生体系.结果表明,细胞悬浮培养时,M S 1.0 m g/L2,4-D 0.1 m g/L KT 4%蔗糖的液体培养基最佳;悬浮细胞分化时,1.0 m g/L 2,4-D 0.1 m g/L KT 4%蔗糖 M S和1.0 m g/L 2,4-D 4%蔗糖 M S培养的悬浮细胞在1.0 m g/L NAA 0.5 m g/L KT M S分化培养基上的绿苗分化率分别达到83%和80%.细胞悬浮系及再生体系的建立为杂种F1代育性恢复的研究奠定了基础.     

小麦(Triticum aestivum)幼叶愈伤组织的诱导及器官的形成

小麦发芽四天的第一片幼叶切段在含有2,4-D 并略加修改的 PRL-4培养基上,可以形成愈伤组织,并由愈伤组织生根、出苗形成再生植株。愈伤组织出现频率及生长速度与叶段部位及2,4-D 浓度有关。在2,4-D 浓度4ppm 以内,能诱导产生愈伤组织的部位是从基部至其上1 cm 左右的区域。激动素(KT)和6-苄基腺嘌呤(BA)均明显抑制愈伤组织的形成。解剖学观察表明愈伤组织来源于维管束鞘部位细胞的分裂。最后讨论了小麦叶肉原生质体培养未能成功的原因。     

香瓜梨叶片的快速繁殖及植株再生

植物名称:香瓜梨(Solanum maracatum)。材料类别:叶片。培养条件:基本培养基为MS, 附加激素成分含量如下:(1)诱导愈伤组织培养基:2,4-D 0.3,0.5,1.0mg/L(单位下同);2,4-D0.5 KT(0.25,0.5)。(2)分化培养基:IAA0.1 KT(0.5,1.0,2.0,5.0);IAA0.1 BA(0.5,1.0,2.0,5.0);IAA0.1 2iP(0.5,1.0,2.0,5.0);IAA0.1 ZT