玉竹的组织培养与快速繁殖

以玉竹[Polygonatum odoratum (Mill.) Druce]根状茎、叶片和茎段为外植体,于附加不同激素配比的MS培养基中诱导愈伤组织、不定芽和不定根,探讨增殖培养和植株再生的条件.结果表明,叶片和茎段外植体诱导愈伤组织和芽的分化率很低;而根状茎外植体易于培养,有较高的诱导率和增殖倍数,其愈伤组织、不定芽和不定根的诱导率分别可达87%、90%和99%以上.适宜根状茎外植体愈伤组织诱导的培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA,有利于增殖和丛生芽分化的培养基为MS+2.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L IBA和MS+3.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA,而1/2MS+3.0～5.0 mg/L NAA适宜诱导试管苗生根培养.试管苗的移栽成活率可达85%以上.     

三倍体毛白杨组织脱分化培养与植株体再生

采用毛白杨三倍体幼叶作为外植体进行组织培养,以MS为基本培养基获得了再生植株。从NAA和IAA与6-BA间进行的18个正交试验中,选择出适宜脱分化培养基MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.1mg/L,对三倍体毛白杨愈伤组织诱导率为87.6%。5种生长素与6-BA配比的再分化培养基中,12MS+IAA 0.1mg/L+6-BA 0.1mg/L对不定芽的分化诱导率可达到68.5%;MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.01mg/L的培养基可使单芽直接增殖出7.4个芽。在MS+IBA 1.0mg/L的生根培养基上,试管苗的生根率可达85.7%。     

如意皇后粗肋草的离体培养

本研究以粗肋草‘Red Valentine’带侧芽的根茎为外植体,研究不同消毒时间、不同种类外源激素对其根茎侧芽萌发诱导、愈伤组织诱导、丛生芽诱导、丛生芽增殖和生根的影响。结果表明:最佳灭菌时间为18 min,污染率为20.0%。MS+6-BA 2.0 mg/L+IBA 0.2 mg/L为最佳侧芽萌发诱导培养基,MS+TDZ 0.5 mg/L+2,4-D 2.0 mg/L为最优愈伤诱导培养基,1/2MS+TDZ 0.5 mg/L为最佳丛生芽诱导培养基,最佳丛生芽增殖培养基为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L或MS+KT 4.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,最佳生根培养基为1/2MS+NAA 0.2 mg/L。本研究通过对粗肋草‘Red Valentine’进行离体培养,初步得出了适合外植体各时期生长的最佳培养基配方,为粗肋草试管苗的商业化、工厂化及规模化生产提供理论和技术指导。     

南川百合的组织培养和快速繁殖（简报）

以南川百合鳞片为外植体进行离体培养,获得再生植株,并初步建立其快繁体系.结果表明:南川百合鳞片适宜诱导芽和愈伤组织的培养基为MS NAA0.01mg/L 6-BA2.0mg/L;增殖培养基为Ms 6-BA2.0mg/L NAA 0.1mg/L;生根培养基为1/2MS IBA 0.5mg/L 活性炭1g/L.培养基均添加0.8%琼脂和4%蔗糖.     

淡黄花百合的组织培养与快速繁殖

以淡黄花百合的鳞片为外植体进行试管培养,筛选出各培养阶段适宜的培养基分别为:(1)丛生芽诱导,MS 6-BA 2.0 mg/L NAA 0.2 mg/L 蔗糖3%;(2)继代增殖,MS 6-BA 1.5 mg/L NAA 0.1 mg/L 蔗糖3%;(3)生根及小鳞茎生长,1/2 MS NAA 0.5～1.0 mg/L 蔗糖3% 活性碳0.1%,1/2 MS NAA 0.5 mg/L 蔗糖6% 活性碳0.1%.     

红掌茎段侧芽离体快繁技术研究

以红掌嫩茎为外植体,诱导侧芽萌发,并进行增殖和生根培养,研究不同生长调节剂浓度配比对茎段侧芽萌发、增殖、无菌苗生根的影响以及增殖培养过程中愈伤组织的抑制等因素。结果表明,侧芽诱导的适宜培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L,萌发率达87.5%;最适增殖培养基为MS+6-BA 0.8 mg/L+NAA 0.2 mg/L+VB2 8.0 mg/L,增殖系数3.8;最适生根培养基为1/2MS+NAA 0.5 mg/L,生根率98%;在增殖培养基中添加适量VB2能较好地抑制愈伤组织的生成,防止愈伤组分织分化形成芽,从而达到以芽繁芽的目的。     

剑叶龙血树组织培养与快速繁殖的研究

用剑叶龙血树的腋芽、顶芽或茎段作外植体,构建了剑叶龙血树组织培养再生体系。试验结果如下:剑叶龙血树腋芽、顶芽或茎段诱导愈伤组织的最佳培养基为MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.5mg/L,诱导率达95%;选择MS+6-BA 2.0mg/L+NAA0.2mg/L+30g/L的蔗糖+8g/L琼脂培养基有利于芽的分化和增殖,在1/2MS+NAA 0.2mg/L+IBA0.4mg/L+活性炭的培养基中诱导生根效果最好。     

藏药纤毛婆婆纳的愈伤组织诱导和快速繁殖研究

以纤毛婆婆纳（Veronica ciliateFisch.）无菌苗的顶芽作为外植体,在不同激素和浓度组合的MS培养基上进行愈伤组织诱导和快速繁殖的研究。结果表明,愈伤组织诱导的最佳培养基为：MS＋6-BA 0.5 mg/L＋NAA1.0 mg/L,诱导率达到95%;顶芽在MS＋6-BA 0.5 mg/L＋NAA 0.1 mg/L增殖培养基中增殖效果最佳,增殖系数高达5.4;丛生芽在1/2 MS＋IBA 0.05 mg/L生根培养基生根效果最好,不仅根的质量好,而且生根率也达到95%;此再生苗的移栽成活率也最高,在适宜条件下可达40%。     

海蝇子草组织培养与快速繁殖(简报)

以海蝇子草带芽茎段为外植体进行离体快速繁殖,在MS + 6-BA 0.5 mg/L + NAA 0.1 mg/L培养基上可诱导不定芽,在MS + 6-BA 2.0 mg/L + NAA 0.1 mg/L培养基上进行增殖培养,在1/2 MS + NAA0.5 mg/L培养基上进行生根培养,生根后移栽到泥炭土+少许珍珠岩的基质中,成活率达90%以上。     

甘蓝型油菜高效离体再生体系的建立

以甘蓝型油菜(Brassica napusL.)HC8为材料,从无菌苗苗龄、预培养基激素浓度、预培养天数、6-BA及NAA的浓度等方面对影响油菜组织培养的因素进行了分析研究,建立了甘蓝型油菜品系HC8的离体再生技术体系。结果表明,该油菜组织培养的最佳苗龄为5 d;最佳预培养时间为5 d,最佳2,4-D浓度为1.0 mg/L;子叶最佳诱导培养基为MS+2.0 mg/L 6-BA+0.05 mg/LNAA+3.5 mg/L AgNO3或MS+3.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+3.5 mg/L AgNO3,该条件下子叶愈伤组织诱导率最高可达100%,再生频率及分化频率分别可达88.0%和108.33%;下胚轴最佳诱导培养基为MS+4.0 mg/L 6-BA+0.05 mg/L NAA+3.5 mg/L AgNO3,子叶愈伤组织诱导率最高可达95.24%,再生频率及分化频率分别可达81.82%和104.55%;最佳生根培养基为MS+0.5 mg/L NAA,生根率最高为90.0%。     

药用植物川东獐牙菜的组织培养

针对川东獐牙菜野生资源受到严重破坏的情况 ,系统地探讨了通过组织培养为手段进行人工繁殖的方法 ,旨在为川东獐牙菜的保护提供坚实的理论依据。研究结果表明 :在所有的实验方案中 ,幼茎和老叶是理想的外植体材料。对叶片来说 ,较适宜的诱导愈伤组织的激素组合是 Zt1.0 m g/L +NAA 0 .0 5m g/L +IBA0 .0 5mg/L、BA 0 .5m g/L+2 ,4 - D0 .5mg/L或 BA 0 .2 m g/L+2 ,4 - D0 .2 mg/L+IBA0 .1m g/L ,对茎段来说 ,较适宜的诱导愈伤组织的激素组合是 BA0 .0 5m g/L+kt0 .0 5mg/L+IBA0 .0 5m g/L;诱导不定芽的适宜激素组合是 BA2 .0 mg/L+N AA0 .0 5mg/L或 BA 2 .0 mg/L+IBA 0 .1m g/L ;而根的诱导则是 MS+BA 0 .0 5mg/L+kt1.0 mg/L+N AA0 .1m g/L或 MS+BA1.0 m g/L+kt0 .3mg/L +IA A0 .5mg/L培养基上进行。     

雌雄栝楼的组织培养研究

对雌雄栝楼（Trlctmsanthes kirilowii Maxim）分别进行组织培养的研究结果表明：在雌雄栝楼组织培养过程中,愈伤组织的诱导和分化适宜的培养基均存在性别差异。愈伤组织诱导的适宜培养基分别是,雌性栝楼培养基为MS＋NAA0．5mg／L＋IBA0．5mg／L＋6-BA1．5mg／L;雄性栝楼培养基为MS＋NAA0．1mg/L＋IBA0．5mg／L＋6-BA0．5mg／L和MS＋NAA0．1mg／L＋IBA1．0mg／L＋6-BA1．0mg/L。愈伤组织分化的适宜培养基分别是,雌性栝楼培养基为MS＋NAA0．1mg／L＋IBA0．4mg／L＋6-BA1．2mg／L;雄性栝楼培养基为MS＋NAA0．3ms／L＋IBA0．2mg／L＋6-BA0．8mg／L;雌雄栝楼无根苗生根的适宜培养基均为MS＋NAA0．1mg／L。     

野生蔬菜鸭儿芹组织培养的初步研究

以野生鸭儿芹嫩芽为材料,利用MS培养基为基本培养基,添加不同种类和浓度的外源激素,对鸭儿芹的组织培养进行了初步研究.结果表明,诱导侧芽分化的最佳培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L +NAA 1.0 mg/L;愈伤组织的继代培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,添加抗坏血酸(Vc) 1.0 mg/L可以有效防止愈伤组织的褐化;鸭儿芹生根的最佳培养基为1/2 MS+IAA 1.0 mg/L.     

药用植物红芽大戟的组织培养

针对药用植物红芽大戟结实率和种子萌发率较低的情况,探讨了利用组织培养方法解决生产中繁殖的问题。结果表明,在茎、叶和芽３种外植体中,芽的出愈率最高,愈伤组织褐化率低,生长最好,且易被诱导出不定芽,是较理想的快速繁殖材料;而茎和叶的愈伤组织褐化率高,难以诱导出不定芽。较适宜的诱导愈伤组织的激素组合是６－ＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．４ｍｇ／Ｌ,诱导不定芽的适宜激素组合是６－ＢＡ５．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０５ｍｇ／Ｌ,根的诱导则在１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．２＋庶糖１．５％＋琼脂０．８％培养基上进行     

青叶胆愈伤组织的诱导与液体继代培养

以青叶胆(Swertia mileensis)幼叶为外植体,在添加不同生长调节剂组合的MS培养基上进行愈伤组织诱导。结果表明,最有效的生长调节剂组合为IAA 1.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L+KT 1.0 mg/L和NAA 4.0 mg/L+KT 2.0 mg/L+GA₃ 1.0 mg/L,其诱导率分别为96.6%和96.0%。使用以上两种生长调节剂组合进行愈伤组织的液体继代培养,10 d可使愈伤组织增殖率分别达257.3%和310.2%。     

鱼腥草组织培养的研究

通过对鱼腥草组织培养过程中激素配比、碳源的研究,得出适于鱼腥草侧芽分化生长的最佳培养基为MS 6-BA1.0～2.0mg/L NAA0．1—0．5mg/L。碳源以蔗糖浓度2％-3％最佳。适宜鱼腥草生根的最佳培养基为MS NAA1．0mg,L 6-BA0．25mg/L。     

安菜的组织培养与植株再生

通过对安菜组织培养的培养基种类、激素配比、碳源的研究,得出适于安菜侧芽分化生长的最佳培养基为MS＋6-BA0．5mg／L＋NAA0．2mg／L。诱导愈伤组织以2,4-D浓度在0．2mg／L～0．5mg／L之间最佳。碳源以蔗糖,浓度3％最佳。以IBA0．5mg／L～1．5mg／L浓度诱导生根效果最好。     

白蕊草组织培养和快速繁殖的研究

通过对白蕊草组织培养的培养基种类,激素配比,添加物汁液,碳源的研究,得出适合白蕊草侧芽分化生长的最佳培养基为MS＋6－BA2.0mg/L＋NAA0．5mg/L 狗牙根汁液。诱导愈伤组织以2,4－D浓度在0.5mg/L-2mg/L之间最佳。碳源以蔗糖,浓度3％最佳。生根实验表明：较低浓度的生长素不利于生根,最佳生根培养基为MS＋6－BA0.5mg/L NAA2mg/L 狗牙根汁液或MS＋6－BA0.5mg/L IBA2mg/L 狗牙根汁液。     

Callus Culture and Gentiopicroside Formation in Gentiana manshurica Kitag.

Suitable medium for callus growth and gentiopicroside formation of Gentiana manshurica Kitag. was studied employing orthogonal design and monofactorial experiment. The results showed that combination of NAA 1 mg/L +KT 0.5 mg/L was best for callus growth, while NAA lmg/L, is the suitable phytohormone for gentiopicroside formation. B5 medium was suitable for callus growth while MS medium was suitable for gentiopicroside formation. The experiment of orthogonal design indicates that NH4+/NO3-, K+, Ca2+ and sucrose were the factors significantly affecting fresh weight, dry weight and gentiopicroside content of callus. However, the level of some factors for callus growth was different from that for gentiopicroside formation. In 18 different media, No. 7 was best for callus growth and No.10 medium was best for gentiopicroside formation.