结核分枝杆菌ESXB-ESXA融合蛋白的表达及其作为检测抗原的初步应用

目的:探索一种大量表达结核分枝杆菌ESXB-ESXA融合蛋白的方法,分析其抗原性,评价其在结核抗体检测中的初步应用。方法:采用PCR方法从结核分枝杆菌基因组中分别扩增esxB和esxA基因,用Linker(G4S)3连接2条目的片段,连接pET-32a(+)载体,构建ESXB-ESXA融合蛋白表达载体;重组表达载体转化宿主细胞大肠杆菌BL21(DE3),IPTG诱导表达、纯化,Western印迹分析重组蛋白的抗原性;建立以融合重组蛋白为抗原的ELISA和胶体金检测方法,分析其在结核病抗体检测中的应用。结果:构建了ESXB-ESXA融合蛋白的表达载体,重组ESXB-ESXA在大肠杆菌中得以高效表达,表达量占菌体总蛋白的70%以上;Western印迹分析表明该重组蛋白具有较好的抗原性;ELISA和胶体金检测结果显示,用重组ESXB-ESXA抗原检测临床结核病患者有较好的特异性。结论:重组ESXB-ESXA融合蛋白表达量高并具有较好的抗原性,可作为结核病抗体检测的备选抗原。     

重组蓖麻毒素A链蛋白的可溶性表达、纯化与抗原性分析

用PCR方法从克隆质粒pUC19-RTA中扩增出蓖麻毒素A(RTA)链基因,序列分析正确后,亚克隆到原核表达质粒pET-His中,构建重组表达质粒pET-HisRTA,再转化到E.coliBL21(DE3)plysS中获得表达工程菌株BL21/pET-HisRTA。该工程菌在30℃经0.4mmol／LIPTG诱导4h后获得可溶性表达的目的蛋白,约占菌体总蛋白的18.45％,SDS-PAGE分析显示表达的蛋白区带与RTA相对分子量相符,约32kDa左右。表达产物经Ni-NTA亲和层析法一步纯化,蛋白纯度约达97.53％,并可得到约18mg/L重组RTA蛋白。Western印迹和间接ELISA结果证明,重组RTA蛋白与抗天然蓖麻毒素多抗可发生特异性的抗原抗体反应,具有良好的抗原性,这为制备RT特异性抗体及建立RT的检测方法奠定了基础。     

人纤溶酶原kringle 5在大肠杆菌中克隆和分泌表达

构建能够表达分泌性的人纤溶酶原kringle 5（简称hPK-5）的大肠杆菌工程菌。用PCR方法扩增获得hPK-5基因,构建原核表达载体pET-22b（＋）/hPK-5,转化大肠杆菌BL21（DE3）,经IPTG诱导表达并鉴定其免疫学活性。成功表达14kD的重组hPK-5,且约占菌体分泌性蛋白20%以上,经Western Blot分析表明其具有hPK-5的免疫抗原活性。人纤溶酶原kringle 5在大肠杆菌中BL21（DE3）获得可分泌表达。     

α-乙酰乳酸脱羧酶在大肠杆菌中的克隆表达

根据已知的α-乙酰乳酸脱羧酶（ALDC）的基因序列,通过PCR获得了枯草芽孢杆菌168的ALDC基因,将该基因克隆到克隆载体pUC18和表达载体pQE60中,构建了pUC18-ALDC和pQE60-ALDC,经DNA测序证明序列正确。重组大肠杆菌DH5a／pQE60-ALDC经IPTG诱导能够高表达ALDC。对该酶进行了活力测定,结果显示工程菌产酶活力为0．11U／mL。     

人甲状旁腺激素-血清白蛋白融合蛋白的构建及在毕赤酵母中的表达

利用重叠PCR技术拼接PTH和HSA基因,并将构建好的融合基因插入到载体pUC19测序后插入表达载体pPIC9K中,在启动子AOXⅠ和α交配因子信号肽的作用下,分泌表达融合蛋白PTH-HSA。重组质粒pPIC9K/PTH-HSA经SalⅠ线性化后,电击转化毕赤酵母KM71,经G418筛选得到的转化子。PCR鉴定后,用甲醇诱导表达,蛋白电泳分析表明融合基因得到表达; Western blot分析表明发酵液上清中表达的融合蛋白PTH-HSA具有HSA的抗原性:用酶标法测定发酵上清中融合蛋白的甲状旁腺激素活性为318IU/ml     

葡萄糖脱氢酶高产工程菌的构建及融合蛋白的一步纯化

PCR扩增葡萄糖脱氢酶基因(glucose dehydrogenase, gdh),连接到测序载体pUC19,转化大肠杆菌JM109,测序(GenBank登录号:EF626962)后,亚克隆到表达载体,转化大肠杆菌M15,筛选得到GDH高产工程菌M15/pQE31-gdh8.工程菌经IPTG诱导表达,超声波破碎,粗酶液比活力高达15 U/mg.镍凝胶柱亲和层析纯化表达蛋白,超滤、冻干后,比活力达360 U/mg.重组质粒pQE31-gdh8在E .coli M15中稳定程度高达99.8%.工程菌M15/pQE31-gdh8诱导表达的重组酶活力高,易纯化,重组质粒稳定程度高,具有良好的工业应用前景.     

人A组轮状病毒地方株外壳蛋白VP4的原核表达

目的：制备轮状病毒外壳蛋白VP4。方法：从病人粪便中分离的毒株中提取病毒dsRNA为模板,经RT—PCR获得编码VP4截短蛋白基因片段cDNA(1—1253bp),将VP4基因片段克隆于pGEX-4T-2融合表达载体中,经dot印迹筛出阳性重组子,重组质粒转化大肠杆菌BL21(DE3)。工程菌经IPTG诱导,11％聚丙烯酰胺凝胶电泳。结果：Western印迹分析表明,工程菌能正确表达VP4蛋白片段,且具有良好的抗原性。结论：为研制轮状病毒重组疫苗、亚单组疫苗、转基因植物口服疫苗做了前期准备。     

猪传染性胸膜肺炎放线杆菌flic基因的原核表达与生物学活性分析

以猪传染性胸膜肺炎放线杆菌血清Ⅰ型菌株基因组为模板,根据其鞭毛区与其它细菌高度同源性设计引物,利用PCR方法扩增鞭毛蛋白基因flic片段,将其亚克隆到pMD-18T载体中并进行PCR和酶切鉴定,再将其亚克隆与载体pGEX-kG分别双酶切和连接,构建重组表达载体pGEX-flic,并将其转化大肠杆菌工程菌BL21进行原核表达.结果表明,目的基因片段长度为528 bp,在大肠杆菌BL21中获得成功表达,且表达蛋白能与猪抗APP血清发生反应.为进一步研究细菌鞭毛的抗原性及其他功能提供参考.     

日本血吸虫Sj Cyclophilin B基因的克隆、表达及免疫保护效果分析

本研究克隆和表达了日本血吸虫Cyclophilin B(Sj CyPB)编码基因的cDNA,分析其在日本血吸虫不同发育阶段虫体的表达情况,评估该重组抗原在小鼠体内诱导的抗血吸虫免疫保护效果。本研究以日本血吸虫童虫cDNA为模板,RT-PCR扩增其基因全长cDNA,提交序列到NCBI,登录号为GQ403665。荧光实时定量PCR分析该基因在日本血吸虫不同发育阶段虫体的表达情况,构建重组表达质粒,表达纯化重组蛋白。利用Western blotting检测重组蛋白的抗原性。以重组抗原免疫小鼠,评估其对小鼠诱导的免疫保护效果。结果表明,RT-PCR获得了Sj CyPB编码基因的全长cDNA,其开放阅读框为672bp。经分析确定其为CyPs家族中的CyPB基因,命名为Sj CyPB。荧光实时定量PCR分析表明,该基因在18d童虫期表达量最高,32d次之。构建了重组表达质粒pGEX-6P-1-SjCyPB,并在大肠杆菌中成功表达,表达产物分子量为49.5kDa。Western blotting试验显示该重组蛋白具有良好的抗原性,在小鼠免疫试验中,与空白对照组比较,免疫组小鼠获得31.5%的减虫率和41.01%的肝脏减卵率。本研究获得了日本血吸虫童虫期高表达的Sj CyPB基因的全长cDNA,成功构建了Sj CyPB原核重组表达质粒,并在大肠杆菌中成功表达,证实该重组抗原在小鼠体内诱导产生了部分免疫保护效果。     

微紫青霉CBHI酶的CBD蛋白编码区在大肠杆菌中的亚克隆及表达

对插入质粒pUC18－181上的微紫青霉（Penicilliumjanthinellum）CBHI酶的cDNA基因进行一系列DNA体外操作,包括进行序列定向缺失,最后将两末端修饰为平端后进行连接使质粒环化。用得到的产生序列定向缺失的重组质粒转化大肠杆菌JM109。利用CBD能吸附到结晶纤维素上的特性,从随机选取的24个缺失转化子中筛选到一株含CBD编码区的转化子JM109（pUC18C）,所表达的CBD融合蛋白分子量为21kD．JM109（pUC18C）所产生的LacZ-CBD融合蛋白可通过对纤维素的吸附-解吸附过程一步纯化。其IPTG诱导的pNPC酶活力为零,表明该菌已不再具有CBHI酶活力。     

用质粒pUC18在大肠杆菌中表达人蛋白质二硫键异构酶

 用质粒ｐＵＣ１８在大肠杆菌中表达人蛋白质二硫键异构酶高音,王志珍（中国科学院生物物理研究所,生物大分子国家重点实验室,北京１００１０１）蛋白质二硫键异构酶（ｐｒｏｔｅｉｎｄｉｓｕｌｆｉｄｅｉｓｏｍｅｒａｓｅ,ＰＤＩ）催化蛋白质分子内天然二硫键的形成,...     

阴道毛滴虫铁氧还蛋白基因的原核表达

目的在原核细胞中表达阴道毛滴虫铁氧还蛋白(ferredoxin,Fd)基因。方法构建阴道毛滴虫Fd基因的原核表达重组质粒pUC19-Fd,转化大肠埃希菌JM109感受态细胞中,异丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)诱导蛋白质表达。结果经十二烷基磺酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)和免疫印迹(Western blot)分析,重组质粒在大肠埃希菌中表达出Fd。结论在大肠埃希菌中表达出了Fd。     

重组原核表达载体pQE30-HPV58L1的构建及鉴定

目的：构建重组原核表达载体以获得HPV58L1活性蛋白,为进一步研制HPV58基因工程疫苗打下基础。方法：用聚合酶链反应（PCR）扩增HPV58L1完整编码区基因,将PCR扩增产物克隆至pUC19质粒中并测序。利用pQE30质粒载体构建重组原核表达载体pQE30-HPV58L1,并通过酶切电泳验证重组结果的正确性。结果：PCR扩增出1.6Kb特异性片段,经克隆至pUC19后测序表明序列同源性与Gen-Bank报道一致。重组质粒pQE30-HPV58L1酶切后显示其大小约5.1Kb,酶切图谱与预期相同。结论：成功构建了重组原核表达载体pQE30-HPV58L1。     

大肠杆菌ispB基因的克隆及鉴定

ispB基因编码八聚异戊二烯焦磷酸合成酶,是决定大肠杆菌CoQ8生物合成的关键因子。克隆ispB基因是构建产辅酶Q10基因工程菌的前提,本实验从野生型大肠杆菌MC4100出发,以pUC18为载体,构建了大肠杆菌SspI限制性基因文库。筛选得到目的重组子pXF98,其酶切鉴定图谱与实验期望值吻合。测序结果表明,pXF98外源DNA片段包含完整的ispB基因。     

Cloning and expression of genes of the luminescence system in Photobacterium leiognathi

The genes of Photobacterium leiognathi luminescence system were cloned in plasmid pUC18. Escherichia coli cells harboring a recombinant plasmid pPHL1 are luminescent. pPHL1 contains luciferase genes and genes responsible for aldehyde biosynthesis. The luminescence of Escherichia coli is subject to autoinductor regulation similar to the one existing in luminescent bacteria. The 2.7 kb fragment of Photobacterium leiognathi DNA containing the genes for alpha- and beta-luciferase subunits were cloned in pUC19.     

Shuttle vectors containing a multiple cloning site and a lacZ alpha gene for conjugal transfer of DNA from Escherichia coli to gram-positive bacteria

The mobilizable shuttle cloning vectors, pAT18 and pAT19, are composed of: (i) the replication origins of pUC and of the broad-host-range enterococcal plasmid pAM beta 1; (ii) an erythromycin-resistance-encoding gene expressed in Gram- and Gram+ bacteria; (iii) the transfer origin of the IncP plasmid RK2; and (iv) the multiple cloning site and the lacZ alpha reporter gene of pUC18 (pAT18) and pUC19 (pAT19). These 6.6-kb plasmids contain ten unique cloning sites that allow screening of derivatives containing DNA inserts by alpha-complementation in Escherichia coli carrying the lacZ delta M15 deletion, and can be efficiently mobilized by self-transferable IncP plasmids co-resident in the E. coli donors. Plasmids pAT18, pAT19 and recombinant derivatives have been successfully transferred by conjugation from E. coli to Bacillus subtilis, Bacillus thuringiensis, Listeria monocytogenes, Enterococcus faecalis, Lactococcus lactis, and Staphylococcus aureus at frequencies ranging from 10(-6) to 10(-9). The presence of a restriction system in the recipient dramatically affects (by three orders of magnitude) the efficiency of conjugal transfer of these vectors from E. coli to Gram+ bacteria.     

嗜麦芽假单胞菌酪氨酸酶基因在大肠杆菌中的克隆与表达

酪氨酸酶基因（ｍｅｌ）编码的酪氨酸酶是合成黑色素的关键酶。用鸟枪法分离嗜麦芽假单胞菌的ｍｅｌ基因：以ｐＵＣ１８为载体,Ｅ．ｃｏｌｉ ＨＢ１０１为受体菌,在加有一定量的Ａｍｐ和Ｌ－ｔｙｒ的酪素平板上筛选到分泌可溶性黑色素的转化子,所含重组质粒ｐＷＳＹ约７００ｂｐ的外源ＤＮＡ片段上携有ｍｅｌ基因,该片段无ＢａｍＨＩ、ＨｉｎｄＩＩＩ、ＥｃｏＲＩ、ＢｃｌＩ等酶的识别位点。Ｓｏｕｔｈｅｒｎ杂交证实此片段确实     

人血清Q型对氧磷酶在大肠杆菌中的表达

目的:应用大肠杆菌原核表达系统高效表达人血清Q型对氧磷酶(PON1)。方法:从pBlueScript-PON1重组质粒中通过PCR扩增得到了人PON1基因,将其亚克隆至原核表达载体pBV220中,构建了重组表达质粒pBV220-PON1,转化大肠杆菌,获得表达菌株。结果:rhPON1重组蛋白以不溶形式存在于包涵体中。凝胶扫描分析表明,重组蛋白表达量约占菌体总蛋白的18%。包涵体经分离、变性、复性等步骤处理后,产物未显示酶活性。结论:原核表达的rhPON1以包涵体形式存在,实现了人PON1在大肠杆菌中的高效表达。     

Cloning of the citrate permease gene of Lactococcus lactis subsp. lactis biovar diacetylactis and expression in Escherichia coli.

The citrate plasmid (Cit+ plasmid) from Lactococcus lactis subsp. lactis biovar diacetylactis was cloned into the EcoRI site of plasmid pUC18. This recombinant plasmid enabled Escherichia coli K-12 to transport and utilize citrate as a source of energy, indicating expression of the citrate permease from L. lactis biovar diacetylactis. The citrate permease was under the control of the lac promoter of pUC18. Genetic expression of the Cit+ plasmid in maxicells revealed that the plasmid encoded two polypeptides of 47 and 32 kilodaltons, determined by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis.     

Cloning of the citrate permease gene of Lactococcus lactis subsp. lactis biovar diacetylactis and expression in Escherichia coli

The citrate plasmid (Cit+ plasmid) from Lactococcus lactis subsp. lactis biovar diacetylactis was cloned into the EcoRI site of plasmid pUC18. This recombinant plasmid enabled Escherichia coli K-12 to transport and utilize citrate as a source of energy, indicating expression of the citrate permease from L. lactis biovar diacetylactis. The citrate permease was under the control of the lac promoter of pUC18. Genetic expression of the Cit+ plasmid in maxicells revealed that the plasmid encoded two polypeptides of 47 and 32 kilodaltons, determined by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis.