花椰菜幼苗下胚轴诱导再生植株

植物名称:花椰菜(Brassica oleracea varbotrytis)80天结球栽培品种。材料类别:无菌苗下胚轴。无菌苗培养:种子经70％酒精浸泡30秒钟后,转移到0.1％昇汞溶液灭菌20分钟,再用无菌水冲洗三次,接种于MS培养基上。培养温度为25—28℃;光强为散射光,约100 lux;每天照光12小时。培养8—10天时幼苗高约3—4厘米,子叶绿色,于无菌条件下先切除胚根、子叶和茎生长点。再把下胚轴切成约1厘米左右长的切段作为外植体进行诱导培养。     

枳椇的组织培养与植株再生

植物名称:枳椇,又名拐枣(Hevenia dulcis)。材料类别:三周龄无菌苗的子叶,下胚轴、茎段和叶片。培养条件:种子经70％酒精和0.1％HgCl_2表面消毒后,轧破高度角质化的坚硬种皮,接种于无激素添加的MS培养基,以培育无菌苗。无菌苗长至3周龄左右,真叶抽生后分别切取茎段、子叶、下     

西洋参的组织培养

植物名称:西洋参(Panax quinquefolium)。材料类别:生理裂口种子内的胚在培养基上长成无菌苗后,将无菌苗的子叶和胚轴切成3mm见方的小块作培养材料。培养条件:培养种胚无菌苗是用1/2 MS培养基(MS的大量元素减半,其它成份不变)。诱导子叶,胚轴出胚状体用MS作基本培养基,每升附加NAA     

大别山五针松子叶和下胚轴离体培养成苗

植物名称:大别山五针松(Pinus dabeshanensis) 材料类别:子叶和下胚轴。种子冷水浸种24小时,剥去种壳,经0.1％升汞(8分钟)和70％酒精(0.5分钟)表面灭菌后,用无菌水冲洗5遍,接种到MS培养基上发芽。2周后,根长至0.5～1cm,剥去胚乳,切取子叶和下胚轴培养。培养条件:基本培养基为改良的MS(MS无机成分中NH_4NO_3浓度减低到1/4,KNO_3为1/2;有机成分改为VitB_1 0.4mg/L、甘氨酸2mg/L)和     

影响决明无菌苗子叶原生质体分离和培养因素的研究

以决明(Cassia obtusi folia)无菌苗子叶为材料,对酶组合、无菌苗日龄,植物激素组合和培养方法对其原生质体的分离和培养的影响进行了研究。结果表明:用3％的纤维素酶和0.2％Pectinase Y-23的酶组合处理决明无菌苗子叶块8小时可以高效分离出有活力的原生质体;约14日龄的决明无菌苗子叶比较适合于原生质体的分离;适当浓度的2,4-D 有利于原生质体的分离。促进原生质体分裂的理想的植物激素组合为0.4 mg/L 2,4-D,1.0 mg/L NAA and 0.1 mg/L KT;漂浮培养法最有利于原生质体的分裂和发育。找出了适合于决明无菌苗子叶原生质体的分离和培养的酶组合、植物激索组合、有效培养方法和决明无菌苗子叶日龄。这为有效地从决明无菌苗子叶原生质体再生植株奠定了基础。     

甘兰叶片、下胚轴直接分化试管苗的试验

利用结球甘兰(F Brassica oleracsa var.capitata it)幼苗的叶片和无菌苗下胚轴进行组织培养,诱导分化出试管苗,效果良好。叶片培养:将取来的叶片外植体用自来水充分冲洗而后在无菌条件下将叶片浸在0.1%的升汞溶液里(含三滴吐温)处理10分钟,进行杀菌,再用无菌水冲洗4—5次,用滤纸吸去叶片表面水分,切成0.5×0.5cm 的小方块,投入培养基。下胚轴培养基:无菌条件下,取     

绿豆上胚轴培养与植株再生

植物名称:绿豆(Phaseolus aureus)黄褐色种子品种。材料类别:上胚轴。种子用70％酒精和 0.1％ HgCl_9表面灭菌后,在MS基本培养基上萌发。取8～10日龄的绿豆无菌苗上胚轴,切成0.8cm左右长的小段作为培养材料。培养条件:上胚轴切段培养在以MS(1/2MS     

甘草的组织培养

植物名称:甘草(Glycyrrhiza uralensis) 材料类别:下胚轴和子叶。种子经常规消毒后接种于MS附加GA1mg/l(单位下同)的培养基进行无菌萌发,然后将无菌苗的下胚轴切成5毫米左右的小段,每片子叶则纵切成二块。培养条件:以MS为基本培养基,诱导愈伤组织和芽的分化附加(1)ZT2;(2)BA2;(3)KT2,ZT2,NAA0.2;(4)BA0.2,NAA2。生根培养基为MS改半加NAA0.05。培养温度为26～28℃,每天光照12小时,光照度1500～2000lx。     

百合叶片愈伤组织的诱导和植株再生

植物名称:百合(Lilium concolor)。材料类别:实生苗叶片切段。将百合种子(来源于日本TAKII种子公司)用水浸泡1d,经70％乙醇处理30s,0.1％升汞溶液灭菌15min,用无菌水淋洗5次后接种于MS培养基上。培养温度25±2℃,光周期12h光照/12h黑暗,光照度1500～2000lx。培养1月后种子萌发,40d后无菌苗高8～10cm,线形叶片宽度2～3mm,叶片淡绿色,于无菌条件下将叶片     

小金海棠子叶培养和植株再生

植物名称:小金海棠(molus xiaojinensis)材料类别:小金海棠的种子,用冷水浸泡吸胀,经0.1％升汞消毒15分钟后,无菌水冲洗干净,接种子琼脂培养基上,2～3周后发芽(发芽率只有20～30％左右),然后切取子叶进行离体培养。培养条件:每升MS基本培养基,附加6-BAI～2mg/L(单位下同),NAA0.1～0.2,LH100,肌醇100,蔗糖3％,琼脂粉0.5％,培养温度26±2℃,每天光照8～10小时,光照强度2000 lx。生长与分化情况:子叶接种子培养基上4～5周后,子叶长大变厚呈绿色,近轴面诱导出绿色芽点,逐渐分化成丛生芽,每片子叶可得3～10个绿色     

油橄榄下胚轴诱导完整植株

油橄榄离体茎培养出根已有报道,但无诱导完整植株的试验结果。我们以油橄榄下胚轴、子叶、胚根、嫩茎、茎尖和叶片等作为外植体进行了试验,除从茎尖诱导发生小植株外(待发表),在下胚轴上也已诱导出完整植株。从甘蓝下胚轴诱导发生小植株已有报道,本文就油橄榄下胚轴诱导完整植株作简要报道。油橄榄(Olea europaea L.)种子经消毒处理后,通过无菌培养得到无菌苗。在幼苗下胚轴伸长到2—3厘米时,在无菌条件下切除茎尖、子叶     

山野豌豆的快速繁殖

植物名称:山野豌豆(Vicia amoena)。材料类别:2～4叶期无菌苗叶基,上、下胚轴。培养条件:基本培养基为MS。经正交试验:(1)叶基诱导愈伤组织与分化培养基为MS 6-BA1.0～2.0mg/L(单位下同) NAA0～0.2;(2)上、下胚轴诱导愈伤组织和分化培养基为MS 6-BA0.5～1.0 NAA0-0.1;(3)生根培养基均为1/MS NAA0.5。全部培养基均加蔗糖3％,琼脂粉0.5％,pH5.8,培养温度25±1℃,光照度2000     

槐树器官、胚胎发生及细胞学观察

槐树(Sophora japonica)是多年生木本豆科植物,常作行道树,并为优良的蜜源及药用植物。陈维伦等曾以胚轴和子叶进行槐树的组织培养,获得了无根苗,我们曾简要的报道了其子叶、胚轴和幼叶的培养及植株再生。本文着重报道槐树子叶培养中器官、胚胎发生及细胞学观察结果。8月上旬采取15年龄槐树的肉质果荚,70%酒精浸泡30秒,0.2%HgCl_2常规灭菌10分钟,无菌水冲洗3次,在无菌条件下剥去果荚及种皮,切下子叶,并一分为二,接种在 MS     

沙达旺上、下胚轴切段培养成再生植株

植物名称:沙达旺(Astragus adsurgenss)。材料类别:上胚轴及下胚轴。种子相继经0.1％昇汞溶液浸泡10分钟,自来水冲洗10分钟、漂粉精溶液(2g有效氯/100ml)浸泡20分钟进行表面消毒,以无菌水洗涤后在MS培养基上萌发。取初展真叶的幼苗,截取上、下胚轴,切成约5mm的切段作为培养材料。培养条件:外植体培养在附加不同的细胞分裂素(ZT或BA)或再加不同生长素(IAA或NAA)的     

连翘试管植株的诱导

植物名称:连翘(Forsythia Suspensa)。材料类别:子叶、苗端、下胚轴。取成熟的连翘种子,进行常规消毒后,接种于不加激素的MS培养基上。当苗高1.5—2cm时,在无菌条件下切取子叶、苗端、下胚轴分别接种。培养条件:以MS培养基为基本培养基,添加不同的激素,组成不同激素水平的培养基进行试验。在室温(17—23℃)黑暗条件下诱导愈伤组织,在26℃左右,每日光照10—12小时(光强为2000     

禿杉组织培养研究

本文详细报道了从秃杉(Taiwania flousiana Gaussen)离体胚诱导不定芽、不定根及从无菌苗茎端培养再生植株的过程。诱导不定芽要求较低的蔗糖浓度(以3％最好);同时BA是必须的,在附加0.1—3 mg/1 BA的White培养基上,从离体胚的子叶或胚轴上诱导了不定芽的发生(以1 mg/1最好);NAA与BA结合使用,对不定芽诱导无促进作用;适当提高光照有利于不定芽的诱导。在诱导不定芽的同时,在子叶表面还观察到有许多无结构的“不定突起”。不定芽起源于子叶表皮下1—2层细胞。IBA对诱导离体胚上产生不定根效果较好。在有或无生长素的培养基上,从生长1月龄的无菌苗茎端培养获得了不定根的产生,在加有细胞分裂索的培养基上,从无菌苗上产生了腋芽。     

唐古特大黄组织培养技术的研究

试验选用唐古特大黄(Rheum tunguticum Maxim．ex Regel．)种了萌发的无菌苗及无菌苗子叶、下胚轴、胚根和幼根作为材料,研究唐古特大黄不同外植体的离体培养技术。结果表明,唐古特大黄的无菌苗和无菌苗子叶、下胚轴、胚根和幼根都可以作为离体培养的良好外植体。唐古特大黄的最适分化培养基足：B5 NAA0．1mg／L 6-BA3mg／L;最适乍根培养素是：1／2MS NAA1mg／L 3%蔗糖或1／2MS NAA0．5mg／L 3％蔗糖;愈伤组织诱导培养基是：MS 2,1-D 1mg／L NAA1mg/L 6BA1mg／L。     

绿豆组织培养物的遗传转化

将绿豆(Phaseolus aureas),蚌埠绿豆,vc27784A,安引5—16号等的种子。消毒处理后,接种于1/2MS 培养基上,获无菌苗。然后取三日龄绿豆子叶、下胚轴;八日龄绿豆上胚轴切段、叶片;十五日龄茎的切段与3850-1103,3850-4农杆菌共培养10分钟,洗净吸干,培养在无抑制剂(头孢霉素)的诱导培养基(BA 0.5 IAA 1.0mg)上预培养4天,然后转入含头孢霉素量1000μg/ml 的诱导培养基上,其中3850-4转化的部分组织块移入不含 BA 的诱导培养     

沙打旺原生质体培养再生植株

用1%半纤维素酶,0.4%纤维素酶,0.1%果胶离析酶,CPW9M酶液分离沙打旺无菌苗下胚轴和子叶原生质体。K8P原生质体培养基悬滴培养。下胚轴原生质体形成小细胞团后用琼脂糖包埋培养,形成小块愈伤组织后转入增殖培养基M1、M2(改良MS培养基)上形成大块愈伤组织。经过两次诱导分化,在分化培养基M3(MS 0.7mg/L BA 0.2mg/L NAA),M4(MS 0.5mg/L BA 0.5mg/L KT 0.5mg/L ZT 0.2mg/L NAA)和M6(MS 3mg/L ZT 0.2mg/L IAA)上分化出苗,再生植株。由子叶分离的原生质体未能形成愈伤组织。     

桂竹香的愈伤组织诱导和植株再生1

植物名称桂竹香(Cheiranthus cheiri)。2 材料类别下胚轴,子叶。3 培养条件桂竹香种子用自来水洗净后,以70％酒精进行表面消毒30 s,再以0.1％升汞溶液消毒12 min,然后用无菌水洗4次。将种子接种在MS基本培养基上,1周后切下子叶和下胚轴,分别接种在MS+2,4-D 1mg·L-1(单位下同)+NAA 1+6-BA 1和MS+2,4-D 3+6-BA0.2～0.5上诱导形成愈伤组织。分化和生长培养基为MS+6-BA3.0+NAA0.2;生根培养基为MS+IBA 0.5。蔗糖浓度为3％,琼脂浓度为0.7％,培养温度为(25±2)℃。每天光照10 h,光照度1 500～2 000 lx。4 生长与分化情况子叶和下胚轴接种到诱导培养基上,20 d左右开始形成愈伤组织。愈伤组织接种到分化培养基以后,经20 d左右的培养,开始出现许多绿点,继而出现绿芽。将单个绿芽切下接种在生长培养基上,2 周后形成丛生芽。 将芽切下接种在生根培养基上,25 d以后开始生根,生根率100％。当根的数量达到2～4条,长度在0.5 cm以上时即可移栽。移栽前先打开瓶塞,在室温下炼苗2～3 d,取出小苗,洗去根部培养基,移植于土中,每天用小喷雾器喷水一次,成活率可达90％以上。5 意义与进展桂竹香是十字花科桂竹香属草本花卉。据我们观察,它的抗油菜菌核病性较好,其组织培养尚未见报道。本文中桂竹香子叶和下胚轴的愈伤组织诱导和植株再生技术的建立,对通过体细胞杂交将桂竹香的抗菌核病性导入油菜,可能有一定的参考价值,同时也为桂竹香的保纯提供了一条值得考虑的途径。