如何清除器皿上的龙胆紫及亚甲基蓝

在高中《生物》观察植物细胞的有丝分裂这个实验中要用l％龙胆紫对根尖进行染色,在观察报对矿质离于交换吸附现象的实验中要用O．01％亚甲基蓝溶液进行染色,这2种染色剂都能对盛放它的器皿造成沾污。怎样清除它们呢？可将实验中的10％HCI溶液倒入盛有l％龙胆紫溶液的器皿中,由于龙胆紫为碱性物质而IO％HCI为酸性物质,两者可发生中和反应,此时可用试管刷洗,然后用清水冲洗即可。做完观察报对矿质元素离子的交换吸附现象实验后,将亚甲基蓝溶液倒掉后,可将CaCI。溶液倒人盛亚甲基蓝溶液的器皿中,然后用粉笔在器皿中来回磨擦,用…     

龙胆紫染色剂有哪些优点?

在遗传实验和植物实验教学中,龙胆紫是染色体的一种优良的染色剂,它的酒精溶液就是医用的紫药水,它具有其它染色剂所不及的优点。总结其优点如下: 1.作核及染色体的染色剂既经济又容易得到(一般的医疗卫生部门都有售);2.配制和保存简便,且比较稳定,不象其它染色剂那样因受光照和氧气的影响而发生     

浅析高中生物学教材中有关染色剂的几个问题

高中生物学教材中有多个章节涉及到染色剂的使用,根据染料中助色基团电离后所带电荷的正负,将染色剂分为碱性或酸性染色剂.在对生物活体染色时使用的染色剂称活体染色剂,它对活的组织细胞无毒或毒性很小.苏丹红是一种人造染色荆,有一定的致癌作用,主要包括Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ4种类型.亚甲基蓝又可称美蓝,它既是一种染料又是一种氧化还原指示剂.     

一种新的花粉压片染色法

在发育生物学研究中 ,常常需要搞清雌、雄器官的发育进程。采用压片技术一般可以观察到雄花不同发育时期的花粉形态。花粉压片染色多采用醋酸———洋红法[2 ] 。但是 ,我们在观察黄瓜雄花发育过程中发现醋酸———洋红法染四分体之前的花粉染色很淡 ,无法进行显微摄影。在制片过程中 ,我们尝试了多种对染处理法 ,结果发现醋酸———洋红与固绿对染能非常清晰地观察到花粉母细胞和四分体时期的花粉。现将这一方法予以介绍 ,以期为植物制片研究提供一种新的方法。1　染色剂的配制参照李正理的方法[1] 配制醋酸———洋红与固绿溶液。1 1　醋…     

伦敦白胶和茶：一种既快又安全的用于透射电子显微镜的细菌样品制备方法

【目的】检测乌龙茶提取物是否可作为电子染色剂取代醋酸双氧铀用于细菌细胞染色,使其能在透射电子显微镜下进行观察。【方法】利用伦敦白胶对细菌样品(大肠杆菌和金黄色葡萄球菌)进行胶块的制备,再在复染铅与不复染铅这两种情况下对超薄切片样品进行3种不同染色剂的电子染色,之后在透射电子显微镜下观察比较其不同之处。这3种不同的染色剂分别是醋酸双氧铀、0.05%乌龙茶提取物以及0.1%乌龙茶提取物。首先将带有超薄切片样品的铜网悬浮于不同的待比较染液中10?15 min,若需进一步用柠檬酸铅复染,则将经3次蒸馏水冲洗过后的铜网再次悬浮于柠檬酸铅染液中8?10 min。【结果】复染铅的情况下,在透射电子显微镜下无论是大肠杆菌还是金黄色葡萄球菌,利用3种电子染色剂进行染色的结果均非常相似。【结论】实验结果表明,在观察细菌结构中,乌龙茶提取物可以替代醋酸双氧铀进行透射电子显微镜样品的电子染色。     

草履虫和其他纤毛虫的临时染色剂

一种由10.5份醋酸洋红,4.5份45％醋酸,2份1N的盐酸,1份1％的快綠(FCF)溶于95％酒精溶液所组成的混合剂,作为当草履虫和其它原生动物的纤毛虫在无性生殖和成熟分裂时的一种新的临时染色剂。这种染色剂代替通常所使用的醋酸洋紅和酸化甲墓綠核染色剂,有下列好处:(1)它使核和原生质同时分化(核成为红棕色,原生貭由綠到灰綠色);(2)它使新发生的大核分化为(均匀的淡绿色),发生分裂的老大核为紅棕色,食泡为粒状,亮蓝綠色;(3)由于染色剂的精密性和透明性,使细胞內部結构更清楚。对某个特別的动物,为了达到更适宜的結果,可稍改变它成分的比例,在一些由于固定而容易引起发生变形的实例里,在使用时我們可将酸的浓度稀释一下。     

醋酸铜液浸法制作绿色植物标本中几个问题

(1)醋酸铜溶液的配制问题:醋酸铜加入50%醋酸中达到饱和,然后再加4份水即成.但实际上醋酸铜在50%醋酸中溶解度甚小,约为1%,配成的溶液浓度太稀,处理标本所需时间长,标本易泡坏.后来采用100毫升50%醋酸中加入6克的醋酸铜,加4份水配成溶液,一般标本在其中泡制10—20分钟即成.因此我们认为以此比例来配置醋酸铜的溶液比较适宜.(2)泡制时的温度问题:我们认为控制在70—85℃之间较为适宜.如温度过低,则处理标本所需时间长,过高则标本易泡坏.(3)配制福尔马林溶液问题:市售的福尔马林都含有甲醛多聚     

植物细胞有丝分裂实验的染色改进

笔者采用亚甲基蓝作为活体染色剂来培养活体植物,从而省去课本中“装片制作的染色”过程,效果甚佳。一、原理:亚甲基蓝是一种活体碱性染色剂,低浓度的亚甲基蓝溶液对植物细胞基本无毒害作用,不影响植物体细胞的正常生命活动,同时能使活体植物的细胞核或染色体着色。二、方法:在实验前一个星期,取蚕豆种子若干,用水浸泡2～3小时后,将种子放在垫有吸水纸的培养皿中培养,种子放入量以种子间不重叠、不接触为宜,并加入适量的清水(浸湿吸水纸即可),待胚根裸露时,改用0.02%亚甲基蓝溶     

植物维管束透明法

1.选幼嫩蚕豆一株连根拔出,用清水洗净根、茎表面污物备用。 2.将根部浸入碱性洋红溶液(配制:取0.5克碱性洋红溶解于2毫升95%酒精中后,用自来水稀释至150毫升)中染色12小时左右,待细小叶脉染为红色后,取出,用清水漂洗数分钟。     

3 种浓度龙胆紫溶液在充填体微渗漏检测中的性能比较

目的:通过测量3种不同浓度龙胆紫溶液浸入充填体边缘的深度,比较三者在充填体微渗漏检测实验中的性能.方法:将因正畸治疗拔除的人离体前磨牙30颗随机分为A、B、C3组,每组10颗.于离体牙颊面釉牙骨质界冠方1mm处制备4mm×3mm×2mm的标准V类洞型.常规树脂充填并经冷热循环(5℃/55℃,400次)后分别放入浓度为0.5％(A组)、1％(B组)、2％(C组)的龙胆紫溶液中浸泡96h.三用枪冲洗吹干后将离体牙沿颊舌向垂直于充填体表面片切.在根管显微镜下观察离体牙充填体边缘染料浸入情况并摄片.采用Image-Pro Plus 6.0图像分析软件测量龙胆紫溶液浸入深度并记录.结果:A、B、C3组龙胆紫溶液渗入深度分别为(0.59± 0.22)mm、(1.38± 0.32)mm、(1.52± 0.45)mm,3组结果之间有统计学差异(F=21.431,P＜0.05).其中A、B组有统计学差异(t＝5.138,P＜0.05),A、C组有统计学差异(t＝6.082,P＜0.05),B、C组无统计学差异(t=0.944,P＞0.05).结论:2％、1％龙胆紫溶液渗透速度较快,0.5％龙胆紫溶液渗透速度最慢;0.5％龙胆紫溶液组渗透稳定性较好,1％龙胆紫溶液次之,2％龙胆紫溶液渗透稳定性最差.     

香蕉根系丛枝菌根(AM)真菌染色方法比较

AM真菌侵染情况观察是AM真菌研究的重要基础。本研究比较了5种不同染色剂(5%醋酸墨水,酸性品红,苏丹红Ⅳ,台酚蓝,苯胺蓝)对香蕉根系AM真菌的染色效果。研究结果表明:5%醋酸墨水和台酚蓝染色液的染色效果最佳,根皮层细胞内的AM真菌的菌丝、丛枝、泡囊及内含物等结构清晰可见,且能够明确分辨出AM真菌与其他未知真菌。但综合考虑操作难易程度、价格成本和毒性等因素,5%醋酸墨水染色液更适用于香蕉根系AM真菌的染色和制片观察。     

植物细胞有丝分裂实验的染色改进

植物细胞有丝分裂实验的染色改进笔者采用０．０２％亚甲基蓝溶液来培养活体植物,从而省去课本中“装片制作的染色”过程,效果较好。１原理亚甲基蓝是一种活体碱性染色剂,低浓度的亚甲基蓝溶液对植物细胞基本无毒害作用,不影响植物体细胞的正常生命活动,同时能使活体...     

几种染色剂对桔小实蝇产卵孔的染色效果

为寻找水果上桔小实蝇产卵情况的快速检测方法,本文测定了甲基蓝、龙胆紫、品红、曙红、藏红和刚果红等6种染色剂对水果上桔小实蝇Bactrocera dorsalis（Hendel）产卵孔的染色效果。结果表明染色剂对可疑水果进行染色,若有产卵孔,产卵孔可迅速被染色,染色率最高可达100％。筛选出甲基蓝、藏红和刚果红作为芒果、番石榴和夏橙的最适染色剂,各种染色剂在浓度为0．5％时染色效果较佳,同时对持续冷藏保存后的水果上的产卵孔仍然具有较高的染色率。     

聚丙烯酸分离纯化苦瓜种仁碱性蛋白的方法及影响因素

以苦瓜籽为材料,研究了聚丙烯酸分离纯化苦瓜种仁碱性蛋白的方法及影响因素。等电点沉淀试验表明,柠檬酸、盐酸分别调节苦瓜种仁粗提液pH至6.0、4.0时,各有14.62%和32.49%的苦瓜种仁蛋白被沉淀。醋酸的等电点沉淀作用呈现阶段性特点,pH6.0和4.0时分别有26.17%和38.72%的苦瓜种仁蛋白被沉淀。醋酸、盐酸和柠檬酸处理的1mL苦瓜种仁粗提液(pH4.0),1%PAA选择性沉淀碱性蛋白(等电点pI为8.65~9.30)的最佳用量分别为100μL、120μL和100μL。醋酸调节苦瓜种仁粗提液pH分别至5.0、4.0和3.0,等电点沉淀后的上清液用PAA沉淀碱性蛋白,当PAA(1%)用量为160μL/mL提取液时,pH5.0和3.0样液分别有33.77%和43.56%蛋白质被沉淀;当PAA用量为120μL/mL提取液时,pH4.0样液中30.83%蛋白质被沉淀。PAA-蛋白质复合物溶解于碱性溶液(pH>9.0),当溶液NaCl浓度为3.0%时,溶液蛋白质浓度最高。PAA选择性沉淀的苦瓜种仁碱性蛋白经SephadexG-75柱层析分离,分别在175min和300min出现主峰Ⅰ和Ⅱ。SDS-PAGE和IEF分析表明主峰Ⅰ的分子量约为30kD,pI值约为9.5,主峰Ⅱ的分子量约为10kD,pI值约为9.3。     

聚丙烯酸分离纯化苦瓜种仁碱性蛋白的方法及影响因素

以苦瓜籽为材料,研究了聚丙烯酸分离纯化苦瓜种仁碱性蛋白的方法及影响因素。等电点沉淀试验表明,柠檬酸、盐酸分别调节苦瓜种仁粗提液pH至6.0、4.0时,各有14.62%和32.49%的苦瓜种仁蛋白被沉淀。醋酸的等电点沉淀作用呈现阶段性特点,pH 6.0和4.0时分别有26.17%和38.72%的苦瓜种仁蛋白被沉淀。醋酸、盐酸和柠檬酸处理的1mL苦瓜种仁粗提液（pH 4.0）,1%PAA选择性沉淀碱性蛋白（等电点pI为8.65～9.30）的最佳用量分别为100μL、120μL和100μL。醋酸调节苦瓜种仁粗提液pH分别至5.0、4.0和3.0,等电点沉淀后的上清液用PAA沉淀碱性蛋白,当PAA（1%）用量为160μL/mL提取液时,pH5.0和3.0样液分别有33.77%和43.56%蛋白质被沉淀;当PAA用量为120μL/mL提取液时,pH 4.0样液中30.83%蛋白质被沉淀。PAA-蛋白质复合物溶解于碱性溶液（pH＞9.0）,当溶液NaCl浓度为3.0%时,溶液蛋白质浓度最高。PAA选择性沉淀的苦瓜种仁碱性蛋白经Sephadex G-75柱层析分离,分别在175min和300min出现主峰Ⅰ和Ⅱ。SDS-PAGE和IEF分析表明主峰Ⅰ的分子量约为30kD,pI值约为9.5,主峰Ⅱ的分子量约为10kD,pI值约为9.3。     

龙胆紫希夫氏液显示DNA染色新方法

应用龙胆紫配制成Schiff(希夫氏)试剂,在微波辐射下进行Feulgen染色,结果使正常及良、恶性肿瘤组织细胞核内DNA着紫红色,并能应用真彩色图像仪进行DNA的定量分析.其方法操作简便,便于临床病理诊断应用.现介绍如下.标本的采集:活检手术切取的肿瘤组织100余例,经甲醛固定,石蜡包埋.切片,厚5μm.染液的配制:①8.3%盐酸水溶液(HCl8.3ml、蒸馏水 91.7ml);②龙胆紫(上海试剂站)希夫氏试剂的配制同PAS方法,以龙胆紫代替碱性品红;③亚硫酸氢盐溶液(10%偏重亚硫酸钠溶液5ml、1mol/L-HCl5ml、蒸馏水90ml).染色步骤;①切片脱蜡至水—蒸馏水;②8.3%盐酸水溶液水解切片1min(微波仪5档),蒸馏水洗;③     

介绍用洋葱进行质壁分离和复原实验的一种方法

做高中生物实验“观察植物细胞的质壁分离和复原”时,如果没有紫色洋葱,可以用白色洋葱做实验材料。白色洋葱表皮细胞在显微镜下显得比较透明,破损的细胞和完整活细胞的颜色差别不大,所以,学生寻找活细胞和辨别质壁分离与复原状态有些困难。实验时,先将撕取的洋葱表皮用碱性活体染色剂进行短时间染色,就能使被撕破而暴露的细胞质和细胞核染成深色,而活细胞则着色不明显。这样,以破损细胞的深色衬托活细胞的淡色就可以弥补上述的不足之处。实验方法：载片中央滴l～2滴1％。亚甲蓝溶液或1％0龙胆紫溶液,盖上盖玻片,染色lmin左右,…     

黑曲霉突变株葡萄糖淀粉酶的化学组成及其光谱学性质

黑曲霉突变株葡萄糖淀粉酶中一型GAI舍糖量为17.6%。氨基酸分析表明,天门冬氨酸和谷氨酸(包括酰胺)占20.3%,苏氨酸和丝氨酸占25.1%,三种碱性氨基酸占6%。紫外光谱在278nm和250nm处分别有最大和最小吸收;其荧光光谱的最大激发波长和发射波长分别为284nm与342nm;远紫外CD谱表现为一双负峰;在溶液中的构象是α-螺旋10.6%,β折叠16.3%和无规卷曲73.1%。     

“观察根尖分生组织细胞的有丝分裂”实验改进综述及思考

"观察根尖分生组织细胞的有丝分裂"在实验教学实践中存在一节课难以完成、效果不佳等问题。综合比较林亮、方春妮等研究者的改进方法,取长补短,通过大量实验总结出一套用1课时就能完成实验且效果较好的改进方法:选择洋葱为实验材料,中午12∶00取根尖,设置对照把握解离时间,在白色点滴板上完成解离、漂洗,将根尖捣碎后用醋酸配制的龙胆紫溶液染色,最后用稍宽于盖玻片的吸水纸包绕3~4圈,用带橡皮的铅笔敲击制成临时装片。     

显示环氧树脂厚切片中多糖,蛋白质和脂类的细胞化学方法

用花生(Arachis hypogaea L.)种子的子叶组织作为模式材料,Epon 812包埋的组织进行厚切片后,按下列三步染色。第一步,PAS 反应:(1)在0.5%高碘酸(0.3%硝酸配制)中10分钟;(2)自来水洗1—2分钟,蒸馏水经过;(3)锡夫试剂中30分钟;(4)偏亚硫酸氢钠溶液三次洗涤,每次2分钟;(5)自来水洗5分钟,蒸馏水经过。第二步,苏丹黑 B 液染色:(1)70%酒精中1—2分钟;(2)新鲜配制的0.3%苏丹黑 B 液(70%酒精配制)中染色,40—60℃,30分钟至1小时;(3)70%酒精中分色1分钟;(4)自来水冼,蒸馏水经过。第三步,考马斯蓝染色:(1)7%醋酸中1—2分钟;(2)1%考马斯蓝(7%醋酸配制)中染色,60℃,20分钟;(3)0.1%醋酸液中分色1分钟;(4)自来水冼5分钟,蒸馏水经过;(5)自然干燥或在40℃电热温箱中烘干。干燥后的切片用甘油胶封固。经这三步染色的切片,细胞内的多糖、脂类和蛋白体同时被显示:淀粉粒及纤维素的细胞壁为樱红色,油滴为黑色,蛋白体为蓝色。制片能长期保存。