红花草莓的组织培养与快繁技术研究

以红花草莓叶片为外植体,通过筛选诱导愈伤组织、不定芽及壮苗、生根的培养基,建立一套实用且易推广的红花草莓组培快繁技术体系。结果表明:在愈伤组织的诱导过程中TDZ的诱导效果优于6-BA,TDZ与NAA配合使用效果优于与IBA的组合。6-BA浓度为0.5 mg·L~(-1)时不定芽诱导率高达86.6%。低浓度的6-BA和8 g·L~(-1)的琼脂更有利于壮苗培养,NAA比IBA更有利诱导生根。综上述,最适红花草莓愈伤组织的诱导培养基为MS+1.0 mg·L~(-1)TDZ+0.5 mg·L~(-1)NAA+30 g·L~(-1)蔗糖+7 g·L~(-1)琼脂;最适不定芽分化的培养基为MS+0.5 mg·L~(-1)6-BA+0.1 mg·L~(-1)NAA+30 g·L~(-1)蔗糖+7 g·L~(-1)琼脂;最适壮苗培养基为MS+0.1 mg·L~(-1)6-BA+0.1 mg·L~(-1)NAA+30 g·L~(-1)蔗糖+8g·L~(-1)琼脂;最适生根培养基为MS+0.5mg·L~(-1)NAA+30 g·L~(-1)蔗糖+8 g·L~(-1)琼脂。试管苗移栽生长20 d后,成活率高达93%,且后期草莓苗生长壮健。此体系的建立为优质红花草莓种苗大规模生产提供了科学依据和技术支持。     

观赏用的红肉苹果的组织培养

1植物名称红肉苹果[Malus pumila var.niedzwet- zkyana(Dieck)Schneid]。2材料类别春梢幼嫩茎段。3培养条件MS为基本培养基,(1)芽诱导培养基:MS 6-BA 0.2mg·L~(-1)(单位下同) NAA 0.2;(2)芽增殖培养基:MS 6-BA 0.5 NAA 0.5:(3)生根培养基:1/2MS IBA 0.1 NAA 0.1。以上培养基中均加入5.5 g·L~(-1)琼脂粉和30g·L~(-1)蔗糖,pH 5.8;     

大花蕙兰高频再生体系的研究

以大花蕙兰无菌苗假球茎为材料诱导丛生芽。适宜诱导的培养基为MS 6.4g·L~(-1)琼脂 0.5%活性炭 2.0mg·L~(-1)6- BA 0.1mg·L~(-1)NAA 30g·L~(-1)蔗糖。其芽长至2～3cm时,转入生根培养基,适宜的生根培养基为MS 6.4g·L~(-1)琼脂 0.2mg·L~(-1)6-BA 0.5mg·L~(-1)NAA 0.5mg·L~(-1)生根粉(ABT),生根率为100%。根长2～4cm时炼苗移栽,成活率可达95%。     

叶下珠组培快繁体系研究

以叶下珠Phyllanthus urinaria带节茎段为外植体,研究生长调节剂浓度、培养基对茎段诱导芽的影响,再以叶下珠无菌芽为材料,开展丛生芽增殖培养、生根培养和炼苗移栽技术研究。结果表明,适合叶下珠茎段诱导芽的培养基为1/2MS+6-BA 2.0 mg·L~(-1)+IBA 0.2 mg·L~(-1)+琼脂7.5 g·L~(-1)+蔗糖30 g·L~(-1)+活性炭0.5 g·L~(-1)(pH 5.8~6.0),诱导率达100%;适合叶下珠芽增殖的培养基为1/2MS+6-BA 1.0 mg·L~(-1)+IBA 0.2 mg·L~(-1)+琼脂7.5 g·L~(-1)+蔗糖30 g·L~(-1)(pH 5.8~6.0),平均增殖倍数为3.8;生根适宜培养基为1/2MS+IBA 0.5 mg·L~(-1)+琼脂7.5 g·L~(-1)+蔗糖20 g·L~(-1)(pH 5.8~6.0),生根率达100%;最佳炼苗时间为闭盖2 d后开盖3 d,移栽成活率86.6%。     

白花泡桐优树组织培养及产业化快繁技术

以自选育的白花泡桐优树茎段为外植体,进行种苗组培快繁技术研究。结果表明:其最佳的外植体灭菌方法是以0.1%升汞处理7 min;合适的初代诱导培养基为MS+6-BA 2.0 mg·L~(-1)+IBA 0.2 mg·L~(-1)+糖30 g·L~(-1)+琼脂3.5 g·L~(-1)(pH 5.8),培养30 d,芽诱导率70%;合适的继代增殖方法为在高浓度植物生长物质培养基MS+6-BA 4.0 mg·L~(-1)+IBA 0.4 mg·L~(-1)+蔗糖30 g·L~(-1)+琼脂3.5 g·L~(-1)(pH 5.8)和低浓度植物生长物质培养基MS+6-BA 0.4 mg·L~(-1)+IBA 0.04 mg·L~(-1)+蔗糖30 g·L~(-1)+琼脂3.5 g·L~(-1)(pH 5.8)中交替培养,获得的丛生芽长势良好,玻璃化率低于5%,增殖系数大于6.0/25 d;最适的生根培养基为1/2MS+NAA0.2 mg·L~(-1)+蔗糖20 g·L~(-1)+卡拉胶3.4 g·L~(-1)(pH 5.8),培养14 d,得到白花泡桐生根苗,每株长根5~10条,根长3~5 cm,生根率98%,根系洁白、根毛少而短,易于清洗。将生根苗按照常规方法炼苗后移栽于温室大棚中,50 d后即可出圃,此时平均苗高1.0 m、地径1.0~2.0 cm,成活率在90%以上。     

蛇莲的组织培养与快速繁殖

1植物名称蛇莲(Hemsleya sphaerocarpa Kuang et A.M.Lu)。2材料类别带腋芽茎段。3培养条件(1)诱导培养基:MS 6-BA 0.5 mg·L~(-1) (单位下同)。(2)增殖及苗诱导培养基:MS 6-BA 0.5-1.0 NAA 0.05。(3)生根培养基:MS NAA 0.1。以上培养基均含30 g·L~(-1)蔗糖、4 g·L~(-1)琼脂,     

新塔花的组织培养与快速繁殖

以新疆特有药用植物新塔花(Ziziphora bungeana Juz.)幼嫩茎段为外植体材料,筛选初代培养、继代增殖与生根培养的条件,建立了新塔花组织培养与快速繁殖体系。结果表明:新塔花种子最适萌发培养基为MS+0.25 mg·L~(-1) NAA,萌发率达57.78%;茎段诱导腋芽最适培养基为MS+0.5 mg·L~(-1) 6-BA+0.1 mg·L~(-1) NAA,诱导率为90.47%;适宜芽增殖培养基为MS+0.5 mg·L~(-1 )6-BA+0.1 mg·L~(-1) NAA+0.3 mg·L~(-1) GA_3+35 g·L~(-1)蔗糖,20 d增殖系数达1.95;最佳诱导根生长培养基为1/2MS+0.5 mg·L~(-1) NAA+0.2%AC,生根率达60%,平均生根数为3.5,20 d株高达4.5 cm。移栽至混合基质(营养土:珍珠岩:蛭石=1:1:1)中,组培苗成活率为80.45%。     

芦竹的组培快繁技术研究

该研究以从匈牙利引进的良种芦竹带腋芽茎段为外植体,以MS为基本培养基,通过设计不同的生长调节剂配比,对芦竹腋芽诱导、继代增殖及生根培养基进行了研究。结果表明:良种芦竹初代诱导最佳培养基为MS+6-BA 4.0 mg·L~(-1)+蔗糖30.0 g·L~(-1)+琼脂3.5 g·L~(-1),萌发率为90.0%;继代增殖最佳培养基为MS+6-BA 8.0 mg·L~(-1)+IBA 0.8 mg·L~(-1)+蔗糖30.0 g·L~(-1)+琼脂3.5 g·L~(-1),芽健壮均匀,增殖系数为4.3/30 d,基部保留3~5个芽作为继代培养物增殖效果最佳;选择高度5.0 cm以上的植株进行生根,最佳生根培养基为1/2MS+NAA 0.2 mg·L~(-1)+蔗糖20.0 g·L~(-1)+活性碳1.0 g·L~(-1),不添加琼脂,培养1周生根率为100.0%,平均生根4条,根长2.0~4.0 cm;将所得生根苗炼苗1周,以河沙、黄泥或腐质土作为栽培基质,移栽于阴蔽度70的大棚中,1个月后移栽成活率≥98.0%;移栽于实验田中,按常规方式进行管理,当年亩产量约为5 500.0 kg。该研究结果为良种芦竹的大规模产业化应用提供了技术支撑。     

牛角瓜离体快繁技术

该文选用牛角瓜茎段为外植体,通过组织培养方法探索牛角瓜组织培养和种苗快繁技术。结果表明:最佳外植体表面消毒方法是以0.1%HgCl_2处理7 min,外植体存活率为32.3%;初代培养基为MS+蔗糖30 g·L~(-1)+琼脂3.5 g·L~(-1),培养20 d后形成3～4 cm高的再生芽。增殖培养前期筛选的较为适宜的增殖培养基为MS+6-BA 1.5 mg·L~(-1)+NAA 0.05 mg·L~(-1)+蔗糖30 g·L~(-1)+琼脂3.5 g·L~(-1),增殖系数4.6。但在后续的培养过程中发现,牛角瓜组培苗易玻璃化,且随着世代更迭,玻璃化程度加重,到了第四代几乎全部玻璃化。因此在上述增殖培养的基础上,以AgNO_3作为玻璃化抑制剂,筛选出最终的增殖培养基为MS+6-BA1.5 mg·L~(-1)+NAA 0.05 mg·L~(-1)+AgNO_31.0 g·L~(-1)+蔗糖30 g·L~(-1)+琼脂3.5 g·L~(-1)。用此增殖培养基,培养25 d,苗高5～8 cm,增殖系数5.8,玻璃化率低于10%,且连续培养多代,玻璃化率维持在10%以下。生根壮苗培养基为1/2MS+NAA 1.0 mg·L~(-1)+蔗糖20 g·L~(-1)+琼脂3.6 g·L~(-1),培养14 d,生根率98%;将生根苗移栽于70%遮阴度的大棚中,30 d后,苗高20 cm左右,成活率85%。利用该方法可对牛角瓜优良种苗进行规模化生产。     

速生白榆的组织培养与快速繁殖

该文以速生白榆半木质化枝条为外植体,使用75%的酒精和0.1%HgCl_2消毒处理,外植体经过启动培养后,在增殖培养基中进行丛生芽诱导,将丛生芽切成单株进行生根诱导,最终建立起成熟的速生白榆组培快繁体系。结果表明:外植体最佳消毒处理组合为75%的酒精处理50 s+0.1%HgCl_2处理8 min,外植体污染率为17.3%,成活率为78%;将消毒处理过的外植体接种到启动培养基中,培养25 d,最终筛选出最适白榆外植体启动的培养基为MS+1.0 mg·L~(-1)6-BA+0.1 mg·L~(-1)IBA+30 g·L~(-1)蔗糖+6.5 g·L~(-1)琼脂,启动率高达87.5%;将经过启动培养后的外植体腋芽切下,接种到增殖培养基中进行丛生芽诱导,最终筛选出最佳增殖培养基为MS+0.5 mg·L~(-1)6-BA+0.1 mg·L~(-1)KT+0.1 mg·L~(-1)IBA+30 g·L~(-1)蔗糖+6.5 g·L~(-1)琼脂,继代周期25 d,增殖系数达6.2;将丛生芽切成单株,接种到生根诱导培养基中,筛选出最佳生根培养基为1/2 MS+0.1 mg·L~(-1)IBA+0.1 mg·L~(-1)IAA+30 g·L~(-1)蔗糖+6.5 g·L~(-1)琼脂,生根诱导30 d,生根率达97%。将生根苗在室外炼苗后,移栽到珍珠岩∶蛭石∶泥炭土体积比为1∶1∶1的混合基质中,成活率在90%以上。较高的增殖系数、生根率和移栽成活率可以降低生产成本,进而实现工厂化育苗。     

金花竹芋的离体培养与植株再生

1 植物名称金花竹芋(Calathea crocata Morr.et Joriss),别名金花冬叶、金苞肖竹芋. 2 材料类别新生侧苗的根状茎. 3 培养条件以MS为基本培养基.(1)芽诱导及继代增殖培养基:MS+6-BA 4.0 mg·L-1(单位下同)+NAA 0.5;(2)壮苗培养基:MS+6-BA 2.0+NAA 0.2;(3)生根培养基:1/2MS+NAA 0.5.上述培养基均添加30 g·L-1蔗糖、6 g·L-1琼脂,pH 5.8.     

文心兰花梗茎段植株再生培养的影响因子研究

应用正交试验设计法研究基本培养基、植物生长调节剂种类及浓度对文心兰花梗茎段芽再生丛生芽诱导、增殖和生根培养的影响。筛选出最佳基本培养基为1/2 MS;最佳诱导培养基为1/2 MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖20 g/L;最佳增殖培养基为1/2 MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖30 g/L;最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 0.05 mg/L+NAA 0.3 mg/L+香蕉泥100 g/L+蔗糖20 g/L。     

见血封喉的组织培养

1植物名称见血封喉[Antiaris toxicaria(Pers.) Lesch.],又名箭毒木、加独。2材料类型枝条。3培养条件以MS为基本培养基。(1)芽诱导培养基:MS 6-BA 2.5 mg·L~(-1)(单位下同) NAA 0.5 3%蔗糖;(2)增殖培养基:MS 6-BA 3.0 KT 1.0 NAA 0.5 3%蔗糖;(3)生根培养基:I/2MS NAA 1.0 0.2 g·L~(-1)活性炭 3%蔗糖。以上培养基均加入8 mg·L~(-1)卡拉胶,pH 5.8～6.2。培养温度25～28     

大蕉(Musa paradisiaca Linn.)的组织培养和快速繁殖

1植物名称大蕉(Musa paradisiaca Linn.). 2材料类别吸芽. 3培养条件不定芽启动、丛生芽增殖培养基:(1)MS 6-BA 8.0 mg·L-1(单位下同) IBA 0.5;(2)MS 6-BA 6.0 IBA 0.5;(3)MS 6-BA 4.0 IBA 0.2;(4)MS 6-BA 2.0 IBA 0.1.生根培养基:(5)MS IBA 1.0 NAA 0.2;(6)MS IBA 2.0 NAA 0.5;(7)1/2MS IBA 2.0 NAA 0.5.以上培养基均含30 g·L-1蔗糖和琼脂6.7 g·L-1,pH 5.5～5.8.培养温度(29±1)℃,光强30～40 μmol·m-2·s-1,光照时间12 h·d-1.     

速生欧美黑杨愈伤组织诱导及植株再生

1植物名称速生欧美黑杨(Populus euramericana). 2材料类别一年生幼嫩的健壮枝条. 3培养条件基本培养基为MS培养基.愈伤组织诱导及芽分化培养基:(1)MS 6-BA 0.3 mg·L-1(单位下同) NAA 0.01;(2)MS 6-BA 0.5 NAA 0.03;(3)MS 6-BA 1.5 NAA 0.3;(4)MS KT 0.5 NAA0.03;(5)MS KT 1.0 NAA 0.2;(6)MS 6-BA 0.5 2,4-D 0.3;(7)MS 6-BA 0.3 IAA 0.5;(8)MS 6-BA 0.3 IBA 0.5.芽继代增殖培养基:(9)MS 6-BA 1.0 NAA 0.1;(10)MS 6-BA 1.0 NAA0.1 GA32.0.生根培养基:(11)MS IBA 2.0.以上培养基中的蔗糖除生根培养基加30 g·L-1外,均附加40 g·L-1,琼脂6 g·L-1.培养温度(25±2)℃,光照12 h·d-1,光照度1500 lx.     

白花蛇舌草的组织培养和植株再生

1 植物名称白花蛇舌草(Hedyotis diffusa). 2 材料类别带顶芽或腋芽的茎段,取自本校花圃. 3 培养条件诱导培养基:(1)MS+NAA 0.2 mg*L-1(单位下同)+6-BA 2.0;(2)MS+NAA 0.5+6-BA 2.0;(3)MS+NAA 1.0+6-BA 2.0;(4)MS+NAA 2.0+6-BA 2.0;(5)MS+NAA 2.0+6-BA 1.0;(6)MS+NAA 2.0+6-BA 0.5;(7)MS+NAA 2.0+6-BA 0.2.丛生芽增殖培养基:(8)MS+6-BA 3.0+NAA 0.1.壮苗培养基:(9)MS+6-BA 2.0+IBA 0.5.生根培养基(10)1/2MS+NAA 0.5.以上培养基均附加蔗糖30 g*L-1,琼脂7 g *L-1,pH 5.8,培养温度(25±2)℃,光照12 h*d-1,光照度1 500～2 000 lx.     

万寿菊杂交亲本的离体培养

以万寿菊‘钻石’雄性不育株的幼嫩叶片和子房为外植体进行离体快繁,结果表明:培养基MS+0.8 mg·L-1 IAA+0.6 mg·L-1 6-BA+30 g·L-1蔗糖既有利于叶片愈伤组织的诱导也有利于不定芽的分化,愈伤组织诱导率达97.9％,不定芽诱导率达45.8％;培养基MS+0.5 mg·L12,4-D+0.5 mg·L-16-BA+ 30 g·L-1蔗糖为诱导子房愈伤组织的最佳培养基,出愈率为77.8％;培养基MS+0.05 mg·L -1 NAA+0.5 mg·L-1 6-BA+ 30g·L-1蔗糖为诱导子房愈伤组织不定芽分化的最佳培养基;将不定芽接至MS培养基上,7d后即可生出不定根,生根率可达98％,移栽成活率达90％以上.     

喜树不定芽的诱导及植株再生

1植物名称喜树(Camptotheca acuminate),别名旱莲木. 2材料类别一年生喜树带芽茎段. 3培养条件芽诱导培养基:(1)MS NAA 0.05mg·L-1(单位下同) 6-BA 1.0.芽增殖培养基:(2)MS NAA 0.1 6-BA 0.5;(3)MS NAA 0.1 6-BA 1.0;(4)MS NAA 0.1 6-BA 2.0;(5)MS NAA0.5 6-BA 0.5;(6)MS NAA 0.5 6-BA 1.0;(7)MS NAA 0.5 6-BA 2.0.壮苗培养基:(8)MS NAA 0.05 6-BA 0.1～0.5.生根培养基:(9)1/2MS NAA 0.1 IBA 1.0;(10)1/2MS NAA 0.5 IBA1.0;(11)1/2MS NAA 1.0 IBA 1.0.以上所有培养基均附加6.5 g·L-1琼脂、30 g·L-1蔗糖,pH值为5.9.培养温度为(25±2)℃,光照度为1000～2000lx,光照时间14 h·d-1.     

小报春的组织培养和植株再生

1植物名称小报春(Primula forbesii Franch.). 2材料类别幼嫩叶片. 3培养条件基本培养基为MS.丛生芽诱导和增殖培养基:(1)MS 6-BA 0.2 mg·L-1(单位下同) NAA 0.05;(2)MS 6-BA 0.5 NAA 0.05;(3)MS 6-BA 1 NAA 0.05;(4)MS 6-BA 2 NAA 0.05;(5)MS 6-BA 0.2 NAA 0.1;(6)MS 6-BA 0.5 NAA 0.1;(7)MS 6-BA 1 NAA 0.1;(8)MS 6-BA2 NAA 0.1;(9)MS 6-BA 0.2 NAA 0.5;(10)MS 6-BA 0.5 NAA 0.5;(11)MS 6-BA 1 NAA 0.5;(12)MS 6-BA 2 NAA 0.5.生根培养基:(13)MS;(14)MS NAA 0.05;(15)MS NAA 0.1;(16)MS NAA 0.2;(17)MS NAA 0.5.上述培养基加30g·L-1蔗糖和4.5 g·L-1琼脂,pH 5.6～5.8.培养温度控制在(24±2)℃,黑暗培养30 d后,置于光强为30～40 μmol·m2·s-1下培养,光照时间10 h·d-1.     

胡杨杂种叶片组培技术研究

目的:优化胡杨杂种叶片组培技术进而为其遗传转化研究奠定基础。方法:以胡杨杂种叶片为外植体,以WPM为基本培养基,研究不同植物生长调节剂对叶片诱导愈伤组织、愈伤组织诱导不定芽、以及不定芽进一步诱导不定根的作用效果。结果:胡杨杂种叶片最佳脱菌方式:0.1%HgCl_2脱菌5 min;叶片诱导愈伤组织的最适培养基为WPM+0.4 mg·L~(-1)6-BA+0.4 mg·L~(-1)NAA,诱导率可达100%;愈伤组织诱导不定芽的最适培养基为WPM+0.5 mg·L~(-1)6-BA+0.2 mg·L~(-1)NAA,诱导率可达100%;诱导不定根的最适培养基为1/2WPM+2.0 mg·L~(-1)IBA+0.02 mg·L~(-1)NAA+0.2 mg·L~(-1)GA_3,生根率可达100%。以上3种培养基均需添加30 g·L~(-1)蔗糖,30 g·L~(-1)琼脂,pH调至5.8。结论:本研究建立了以胡杨杂种叶片为外植体的组培技术,为后序进行胡杨杂种批量化生产及其遗传转化研究提供重要参考。