CS3菌毛抗原和霍乱毒素B亚基在人伤寒菌中的表达

通过体内外重组的方法,构建了人伤寒菌流行株Ｔｙ２的△ａｒｏＡ,△ａｒｏＣ和ａｓｄ＾－基因缺失突变体（ＲＳ４１７）作为抗原载体菌：同时,构建包含ａｓｄ基因的表达质粒ｐＹＸ１０２,与ＲＳ４１７一起,构成宿主－载全平衡致死系统,用于在没有抗生素条件选择的情况下,稳定表达克隆在表达质粒上的外源抗原基因,将肠毒素性大肠杆菌的菌毛抗原ＩＩＩ（ＣＳ３）基因和霍乱弧菌毒素Ｂ亚基（ＣＴＢ）基因分别克隆至ｐＹＸ１０２     

肠毒素源性定居因子CS6在减毒伤寒沙门氏菌中表达及免疫原性的研究

将编码肠毒素源性大肠杆菌定居因子抗原CS6基因克隆至pXL670,转化asd基因突变的E.coli X6097,获得重组质粒pSS64,再将后者转化至减毒的△aroA、△aroC、△asd伤寒沙门氏菌,构建了无药物抗性且稳定的大肠杆菌和伤寒双价菌苗候选株。小鼠腹腔免疫和攻击实验表明,该菌株对伤寒沙门氏菌毒株的攻击具有良好的保护作用。家兔免疫实验证明,该菌株能产生抗CS6和伤寒菌Vi抗原的血清抗体。     

表达霍乱CT-B和LPS-O抗原的鼠伤寒菌苗株的构建

将编码霍乱ＣＴ－Ｂ和ＬＰＳ－Ｏ抗原的基因与载体质粒ｐＹＡ２４８重组后,转入△ｃｙａ△ｃｒｐ△ａｓｄ减毒鼠伤寒疫苗株ｘ４０７２构建成无药物抗性,带双价抗原的工程菌株ｘ４０７２（ｐＭＧ３０６）。该菌株能分泌表达特异的霍乱ＣＴ－Ｂ抗原,并且在菌体表面同时表达霍乱和鼠伤寒的Ｏ抗原。小鼠腹腔免疫和攻击试验表明该菌株对霍乱毒株的攻击具有良好的保护作用。本研究为新型献计霍乱／鼠伤寒双价口服活疫苗的构建打下了基础     

大肠杆菌SLT—IIvB基因的克隆和表达

采用聚合酶链式反应（ＰＣＲ）,从大肠杆菌Ｏ１３８基因组ＤＮＡ中分别扩增出志贺菌样毒素ＩＩ型变体Ｂ的结构序列和包括信号肽的全序列两段基因,定向克隆进表达载体质粒ｐＹＡ３３３４（ａｓｄ＾＋）的ＥｃｏＲＩ、ＢａｍＨＩ位点之间,构建成重组表达质粒。在大肠杆菌Ｘ６２１２（△ａｓｄ）筛选出重组质粒ｐＢ０和ｐＢ１后,经中间宿主Ｘ３７３０转化过渡,再导入△ａｓｄ△ｃｙａ△ｃｒｐ减毒鼠伤寒沙门氏菌Ｘ４５５０,构建成     

HCV/HBV复合抗原基因的克隆、表达及免疫应答研究

为探讨ＨＣＶ／ＨＢＶ 复合疫苗的可行性,将合成的丙型肝炎病毒（ＨＣＶ）复合多表位抗原基因ＰＣＸ与ＨＢｓＡｇ 基因连接成ＰＣＸＳ基因,与β－半乳糖苷酶（ＧＺ）基因融合后在大肠杆菌及减毒鼠伤寒沙门氏菌中获得表达．目的蛋白ＧＺ－ＰＣＸＳ可被抗－ＨＢｓ 及抗－ＨＣＶ 抗体所特异识别．ＧＺ－ＰＣＸＳ抗原皮下注射免疫ＩＣＲ小鼠后,诱发了较高水平的抗－ＧＺ－ＰＣＸＳＩｇＧ反应．构建的重组减毒鼠伤寒沙门氏菌ＳＬ３２６１（ｐＷＲ／ＰＣＸＳ）口服免疫小鼠后,诱发了高水平的ＣＤ８＋ Ｔ细胞增殖反应及抗ＧＺ－ＰＣＸＳＩｇＧ反应．所有免疫小鼠均未见明显的毒副作用．该研究揭示,ＨＣＶ／ＨＢＶ 复合抗原可诱发特异性体液免疫及细胞免疫应答,而活菌苗口服可能是理想的免疫途径,为ＨＣＶ／ＨＢＶ 双价疫苗研究提供了一定的理论及实验依据．     

人精子膜蛋白片段在沙门氏菌中的表达——一种制备抗生育疫苗的途径

合成编码一种人精子膜蛋白ＹＷＫ－Ⅱ胞外区的一段多肽片段的双链寡核苷酸链,ＨＳＤ－２ａ。用平端连接的方法将其插入到沙门氏菌鞭毛基因ｆｌｉＣ（ｄ）的抗原表位ＩＶ高变区ＥｃｏＲＶ位点,构建了重组质粒ｐＬＳ４０８－Ｈ１。重组基因在鞭毛负性ａｒｏＡ基因缺失的无致病性沙门氏菌Ｓ．ｄｕｂｌｉｎ ＳＬ５９２８疫苗菌株中表达。经ＥＬＩＳＡ、电镜免疫胶体金法检测,表明ＨＳＤ－２ａ编码的多肽片段成功地在沙门氏菌鞭毛表面     

人乳头瘤病毒HPV16 E7蛋白基因在沙门氏菌疫苗菌株X4072中的表达

采用ＰＣＲ方法,从ＨＰＶ１６型质粒中分离出ＨＰＶ１６Ｅ７基因片段,用ＥｃｏＲＩ和Ｓａｌｌ双酶解后,定向插入到表达质粒ｐＹＡ３３３２（ａｓｄ＋）的Ｐｔｒｃ启动子下游,构建成ｐＹＡ３３３２－ＨＰＶ１６－Ｅ７重组表达质粒。在大肠杆菌Ｘ６２１２上筛选出重组质粒后,通过中间菌株Ｘ３７３０的转化过渡,将重组质粒导入鼠伤寒沙门氏减毒疫苗菌株Ｘ４０７２（ａｓｄ－）,构建成宿主和载体之间具有平衡致死结构的ＨＰＶ１６     

菌株死活及抗原量对减毒沙门氏菌疫苗载体的影响

菌株死活及抗原量对减毒沙门氏菌疫苗载体的影响众所周知，口服灭活的伤寒疫苗对伤寒感染没有任何保护，而口服灭活的沙门氏菌疫苗载体对其所表达的外源蛋白免疫效果是否有影响还未知，作者进行了如下验证试验。质粒ｐＪＣ２１７可表达大肠杆菌热不稳定肠毒素一个亚单位Ｌ...     

鼠伤寒沙门氏菌外膜蛋白诱导BALB／C小鼠免疫保护的实验研究

本实验采用超声破碎、ＴｒｉｔｏｎＸ－１００处理和超速离心技术提取了鼠伤寒沙门氏菌（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａｔｙｈｉｍｕｒｉｕｍ,ＳＴＭ）的外膜蛋白（Ｏｕｔｅｒｍｅｍｂｒａｎｅｐｒｏｔｅｉｎｓ,ＯＭＰｓ）,其中脂多糖（ＬＰＳ）的含量约为５％。ＯＭＰｓ经ＳＤＳ—ＰＡＧＥ显示１０余条蛋白带。对ＯＭＰｓ诱发ＢＡＬＢ／Ｃ小鼠产生典型的迟发型变态反应（ＤＴＨ）进行了检测。经腹腔免疫的ＢＡＬＢ／Ｃ小鼠用５００ＬＤ５０鼠伤寒沙门氏菌（５０１１５）攻击,１００％可得到保护;用５００ＬＤ５０伤寒杆菌（Ｅ６８６）攻击     

StxB／HlyA（CT）融合蛋白的分泌表达和StxB在小鼠内的特异免疫反应

本文将志贺氏毒Ｂ亚单位（ＳｔｘＢ）与大肠杆菌溶血素Ａ的Ｃ末端（ＨｌｙＡ（ＣＴ））相融合,蛋白ＳｔｘＢ／ＨｌｙＡ（ＣＴ）不仅能在大肠杆菌中分泌到胞外,而且也能从ａｒｏＡ突变的减毒鼠伤寒沙门氏菌中分泌出去。当用高拷贝质粒ｐＵＣ１８作载体时,上述融合蛋白对宿主细胞有毒性,但以低拷贝质粒ｐＢＲ３２２取代之后,该融合蛋白不再对窠主细胞产生任何不利影响。融合蛋白ＳｔｘＢ／ＨｌｙＡ（ＣＴ）无论是在ａｅｒｏｂａｃ     

表达大肠杆菌LT-B/ST融合抗原的减毒鼠伤寒沙门氏菌株的构建

编码LT-B/ST融合抗原的基因插入pYA248载体中,构建了重组质粒pXZL66。该重组质粒转入无毒鼠伤寒沙门氏菌SR-11,ΔCya,Δcrp,Δasd菌株X4072。此无抗药性的杂合菌株X4072(pXZL66)表达的LT-B/ST融合抗原具有LT和ST抗原性而没有生物毒性,可望成为预防ETEC腹泻和相应的沙门氏菌病双价口服活疫苗候选株。     

稳定、无抗药的痢疾福氏2a和宋内双价菌苗候选株的构建

通过体内外基因重组,将大肠杆菌粘附因子cs3基因定位整合到痢疾杆菌福氏2a疫苗株T32菌染色体的asd基因内,使asd基因灭活;将来内O抗原基因克隆至无抗药性表达载体pXL378,获得重组质粒pXL390,将其转化asd-的T32受体菌,构建成福氏2a和宋内双价苗苗株FS01。实验表明:重组质粒pXL390在不带任何抗菌素基因的情况下,在asd-的T32受体菌内是稳定的。FS01株遗传稳定,能表达两种痢疾菌的PLS-O抗原,无明显毒性作用。动物试验表明,以FS01株皮下免疫的小鼠对福氏2a和宋内有毒株的腹腔攻击有100％的保护。     

肠毒素性大肠杆菌CS6菌毛抗原与霍乱毒素B亚基在痢疾菌中的表达及其免疫学效果

构建了携带asd、霍乱毒素B亚基(CTB)基因的表达质粒pYX201,与福氏2a痢疾菌T32的△asd突变株FaD构成宿主质粒平衡致死系统,用于在没有抗生素选择压力的情况下,稳定表达CTB抗原基因。以此为基础,构建了单独表达肠毒素性大肠杆菌CS26菌毛抗原基因的重组质粒pYX202,以及同时表达CS6和CTB的共表达质粒pYX203。Western blotting和ELISA检测结果证实CS6及CTB在痢疾菌FaD中可以有效表达。重组菌免疫家兔后可诱生相应的血清抗体,特别是CTB的抗体效价较高,并持续较长时间。本研究为细菌性腹泻疫苗的研究提供了候选株。     

肠毒素性大肠杆菌CS3纤毛抗原在痢疾菌中的表达及其免疫效果研究

首先通过体内外重组的方法,构建了福氏2a痢疾菌T32asd基因缺陷的突变体FaD,作为抗原载体菌;同时,构建包含asd基因的表达质粒pYX102,与FaD一起,构成宿主-载体平衡致死系统,用于在没有抗生素条件选择的情况下,稳定表达克隆在表达质粒上的外源抗原基因.将肠毒素性大肠杆菌的CS3菌毛抗原基因克隆至pYX102,构建成重组表达质粒pYX103,ELISA检测结果证实CS3在痢疾菌中可以很好地表达.免疫小鼠后可诱生相应的抗体,虽然口服免疫和注射免疫产生的CS3抗体效价有一定差别,但对痢疾菌的毒株攻击均可提供较好保护.该结果为细菌性腹泻疫苗的研制提供了候选株.     

肠毒素大肠杆菌定居因子CFA/Ⅰ和CS6在减毒福氏志贺氏菌中的共表达

定居因子CFA/I和CS6是肠毒素大肠杆菌 (ETEC)中重要的两种优势抗原 ,是ETEC疫苗研制的首选组分。采用基因重组技术将二者构建在以asd基因为选择标记的重组质粒上 ,与asd基因缺失突变型减毒福氏志贺氏菌FWL0 1构成宿主 载体平衡致死系统。实验结果表明 ,重组疫苗候选株能够稳定表达CFA/I和CS6抗原 ,并可在菌体表面形成相应菌毛。重组菌口服免疫BALB/c小鼠后 ,可诱生相应的抗CFA/I和CS6的特异性血清抗体IgG和分泌型抗体sIgA ,说明以志贺氏菌为载体 ,可以构建同时表达多个定居因子抗原的ETEC多价菌苗     

毒素源性大肠杆菌定居因子抗原CS6基因的克隆

通过构建人源毒素源性大肠杆菌野生株E519/66A大质粒的基因文库,成功地筛选出能表达定居因子抗原CS6菌毛的阳性克隆,初步确定了克隆DNA片段的限制性内切酶图谱。CS6抗原的编码和调控基因集中在一大小为4.6kb的DNA区段中,该片段能产生两种分子量大小不同、但抗原反应交叉的菌毛蛋白。本研究获得的CS6抗原阳性的重组菌株可用于人源ETEC多价疫苗的研制,克隆的基因片段亦可作为研究CS6菌毛蛋白基因表达及调控的基础。     

肠毒素大肠杆菌定居因子抗原基因CFA-I在痢疾杆菌中的表达

通过体外重组的方法 ,构建了包含asd基因的重组表达质粒 pZHY2 1,与福氏志贺氏菌Fwl0 1构成了宿主 载体平衡致死系统 ,Western印迹结果表明 ,在没有抗生素条件选择的情况下 ,稳定表达肠毒素大肠杆菌定居因子抗原CFA I。电镜结果显示 ,在重组菌株的菌体表面 ,表达产物能够装配成菌毛。重组菌通过口服和鼻饲免疫小鼠后 ,可以诱生CFA I的抗体 ;同时可以检测到分泌型IgA产生 ,表明重组菌可以诱导相应的粘膜免疫反应     

Construction of a trivalent candidate Shigella vaccine strain with host-vector balanced-lethal system

A trivalent live Shigella vaccine candidate FSD01 against S. flexneri 2a, S. sonnei and S. dysen-teriae I was constructed. This candidate strain was based on the S. flexneri 2a vaccine T32. By homologous recombi-nation exchange, the chromosomal asd gene of T32 was site-specifically inactivated, resulting in the strain unable to grow normally in LB broth, while another asd gene of S. mutans was employed to construct an Asd complementary vector. This combination of asd 'host/ Asd vector formed a balanced-lethal expression system in T32 strain. By use of this system, two important protective antigen genes coding for S. sonnei Form I antigen and Shiga toxin B subunit were cloned and expressed in T32, which led to the construction of trivalent candidate vaccine FSD01. Experimental results showed that this strain was genetically stable, but its recombinant plasmid was non-resistant. Moreover, it was able to effectively express trivalent antigens in one host and induce protective responses in mice against the     

Cloning and characterization of the asd gene of Salmonella typhimurium: use in stable maintenance of recombinant plasmids in Salmonella vaccine strains

The asd mutants of Salmonella typhimurium have an obligate requirement for diaminopimelic acid (DAP) and will undergo lysis in environments deprived of DAP. This has allowed the development of a balanced-lethal system for the expression of heterologous antigens in vaccine strains using vectors containing the wild-type asd gene from Streptococcus mutans and asd mutant Salmonella hosts [Nakayama et al., Biotechnology 6 (1988) 693-697]. We have cloned the asd gene from S. typhimurium, characterized the gene product and used this gene to construct Asd+ expression cloning vectors. In addition we have constructed an asd cassette and a transposon derived from Tn5 that allow the rapid modification of other vectors for use with delta asd vaccine strains of S. typhimurium adding versatility to the Asd+ vector/delta asd host system of plasmid maintenance.