何首乌愈伤组织的诱导

研究了外植体、光暗条件、植物激素等因子对何首乌愈伤组织诱导的影响 ,以及 6 -BA和何首乌组织提取液对愈伤组织增殖的影响。结果表明 :茎段的愈伤组织诱导优于带侧芽茎段和叶片 ;光照有利于愈伤组织的诱导 ;4因子 4水平的正交实验表明 ,对何首乌茎段愈伤组织诱导的影响 2 ,4 -D >6 -BA >IBA >IAA ,最佳激素搭配是 :MS +2 ,4 -D 2mg L +6 -BA 1mg L +IBA1mg L或MS +2 ,4 -D 2mg L +6 -BA 2mg L +IAA 1mg L ;MS培养基中附加 6 -BA或组织提取液均促进愈伤组织的增殖。     

龙眼的组织培养

植物名称:龙眼(Dimocar pus longana)。材料类别:十天龄无菌实生苗的上、下胚轴,子叶、根、叶、顶芽和茎段以及自然环境条件下生长的植株的茎段、顶芽和侧芽。培养条件:基本培养基为MS。(1)愈伤组织的诱导和分化培养基附加6-BA1.0mg/1(单位下同)。(2)愈伤组织直接分化幼芽培养基附加6-BA2.5、IBA2.5。(3)芽增殖培养基附加6-BA5.0、IBA5.0、KT2.0。(4)促根培养基附加IBA0.1。诱导愈伤组织是在黑暗条件下进行,愈伤组织直接分化芽在弱光下进行较佳。培养温度25～28℃,     

郁金香的组织培养

植物名称:郁金香(Tulipa gesneriana) 材料类别:鳞茎及鳞片切块(鳞茎切块指带有鳞茎底盘的切块)。培养条件:以MS为基本培养基,诱导愈伤组织每升附加NAA3—4mg,BA2—3mg;诱导芽分化每升附加NAA0.5mg,BA1—2mg;诱导生根用1/2MS(MS大量元素减半)培养基,每升附加NAA0.5—1mg,蔗糖减至2％。温度16—24℃,光照10小时,光强1000—1500lx。生长与分化情况:材料经低温处理(5℃处理一个月)后接种,在黑暗条件下培养一个月后,鳞茎切     

不同生长调节剂对狗肝菜愈伤组织诱导和离体快繁的影响

目的 :研究不同生长调节剂对狗肝菜愈伤组织诱导和离体快繁的影响。方法 :狗肝菜不同外植体在附加不同生长调节剂的培养基上诱导愈伤组织 ,比较愈伤组织的诱导率 ;用 3因子 5水平的正交实验 ,比较不同生长调节剂对丛生芽诱导的影响 ;在附加不同生长调节剂的培养基上比较芽增殖倍数 ;附加不同浓度NAA的培养基上比较生根效果。结果 :愈伤组织诱导率相对以叶片最高 ,茎段次之 ,最后为叶柄 ;愈伤组织诱导的最佳培养基为MS 6-BA0 .5 NAA1 .5 ;不同激素对茎段芽诱导的影响次序为 6-BA>KT >NAA ,芽诱导的最佳培养基为MS 6-BA2mg/L KT1mg/L NAA0 .5mg/L ;芽继代增殖的最佳激素组合是MS 6-BA2mg/L NAA2mg/L ,增殖倍数达 3.0 0 ,影响芽继代增殖的因素次序为 6-BA >NAANAA0 .5mg/L的生根效果较好。结论 :附加一定的生长调节剂能提高狗肝菜愈伤组织的诱导率和离体快繁的效率。     

激素对樱桃番茄两种外植体诱导再生植株的影响

以 MS为基本培养基 ,附加不同浓度的 6-BA、IAA和 NAA培养樱桃番茄两种外植体以诱导再生植株。结果表明 :含 NAA的 MS+6-BA2 mg/L(单位下同 ) +NAA0 .2培养基诱导的叶片愈伤组织 ,经继续培养无芽的分化 ,含 IAA的 MS+6-BA2 +IAA0 .2培养基诱导的愈伤组织 ,经继续培养诱导芽的分化 ;含 NAA或IAA的 MS+6-BA2 +NAA0 .2和 MS+6-BA2 +IAA0 .2培养基利于下胚轴愈伤组织的诱导 ,而不含生长素的 MS+6-BA1 .0培养基可直接诱导芽的分化。     

党参的离体培养及植株再生的研究

在附加激素的MS培养基上,培养党参下胚轴和无菌芽切段,诱导产生愈伤组织并且再生植株。经过两年多(15个世代)的继代培养,建立了党参体细胞无性系。实验结果表明:(1)培养基MS 0.4mg/L 2,4-D 0.8mg/L Kt 2.0mg/L IAA对愈伤组织诱导及继代培养,MS 0.2mg/L 6-BA诱导外植体产生丛芽和愈伤组织再分化,MS 0.5mg/L NAA 0.2mg/L 6-BA及MS 0.2mg/L NAA诱导生根效果最好。(2)愈伤组织再分化经过胚状体途径。     

诱导茶树成熟胚培育成幼苗的研究

以茶树品种——农抗早的成熟胚为外植体离体培养,初次研究了2,4-D、6-BA等不同植物激素对茶树成熟胚诱导成幼苗的影响。结果表明,在合适的激素组合条件下,愈伤组织诱导为97%,在附加2.5mg/L 6-BA 0.5mg/L NAA的MS培养基上,愈伤组织的芽分化率为14.2%,附加1.5mg/L NAA的1/2 MS培养基,幼苗的根分化率为5%。     

轮叶党参的组织培养及植株再生研究

以轮叶党参为材料,研究了不同外植体、激素组合、培养基及光照条件对愈伤组织诱导及植株再生的影响.结果表明,叶片是轮叶党参组织培养较为合适的外植体.外植体在添加0.5 mg·L~(-1) 2,4-D+1.0 mg·L~(-1) 6-BA+0.5 mg·L~(-1) KT的MS培养基上愈伤组织诱导率最高可达100%;愈伤组织转移到附加0.75 mg·L~(-1) 6-BA+0.5 mg·L~(-1) NAA的MS培养基进行继代培养,增殖后的愈伤组织转移到附加0.5 mg·L~(-1) 6-BA+0.2 mg·L~(-1) NAA的1/2MS分化培养基进行分化,其分化率达89.4%;将分化出的芽转接到附加0.2 mg·L~(-1) IAA+0.2 mg·L~(-1) NAA的1/2MS培养基,生根率达92.5%.暗培养诱导出愈伤组织后转到16 h·d~(-1)光照条件下,愈伤组织增殖倍数和分化率显著提高,再生苗健壮,长势强.     

无患子愈伤组织诱导的多因子正交试验研究

目的:探寻无患子愈伤组织诱导的最佳外植体、培养基和培养条件。方法:采用5因素混合水平正交设计,用DPS2000统计软件对其结果进行方差分析和多重比较(SSR)。结果:诱导愈伤组织的最佳外植体为当年生枝条水培芽的嫩茎段,用0.2%HgCl2消毒2min,其无菌存活率为98.33%,培养条件为光照或黑暗,最佳培养基配方为:MS(B5) 6-BA 1.5mg.l-1 NAA0.2mg.l-1,其愈伤组织的诱导率为97.78%。结论:激素配比是影响愈伤组织诱导的主要因素。较高的6-BA浓度(1.5~2.5mg.l-1)与较低的NAA浓度(0.2mg.l-1)配比,有利于无患子愈伤组织的诱导。     

油樟悬浮培养及次生代谢产物的诱导

以油樟(Cinnamomum longepaniculatum)叶片为外植体在附加6-BA和NAA不同激素浓度组合的MS培养基上筛选质地疏松、生长旺盛的愈伤组织, 分别接种在MS、B5、WPM三种液体培养基中进行细胞悬浮培养, 并检测诱导产生的次生代谢产物。结果表明: 2 mg.L-1 6-BA+ 0.5 mg.L-1 NAA能诱导质地疏松、生长旺盛的愈伤组织, B5基本培养基中细胞长势最好; 愈伤组织在B5+2 mg.L-1 6-BA+ 0.5 mg.L-1 NAA中悬浮培养, 继代2次后形成均一的单细胞; 从油樟悬浮培养物中检测出50%以上的成分是苯甲醇。     

杜衡离体繁殖的研究

以马兜铃科植物杜衡为研究材料,试图通过茎尖培养来获得愈伤组织,继而诱导愈伤组织分化形成杜衡小植株。试验证明：杜衡茎尖在MS基本培养基附加6-BA 0.6mg/l和NAA0.1mg/;这一激素组合上可诱导茎尖基部形成愈伤组织;将愈伤组织分割转接到附加6-BA0.2mg/l和NAA0.01mg/l 的MS基本幅度基上可使愈伤组织分化形成小芽;分化形成的芽置于1/8-1/4MS(大量元素减少,其余成分不变)附加6-BA0.1mg/l和GA1mg/l的培养基上,可促使芽的正常生长;新生芽转接在1/4MS附加IBA0.5mg/l培养基上促使其生根。     

四棱叶玉树的组织培养

植物名称:四棱叶玉树(Crassula tetragona)。材料类别:剪取嫩茎,常规灭菌后,在无菌条件下,切成1—2mm长的茎段接种。培养条件:(1)诱导愈伤组织用N_6培养基,附加2,4-D1—2mg/l(单位下同),6-BA0.5,蔗糖5％。(2)分化用MS培养基,附加6-BA2,NAA0.5,蔗糖 3％。(3)增殖用 0.5 MS,附加 6-BA0.5,NAA0.05,LH100,蔗糖2％。(4)促根用0.5N_6,附加NAA0.3,IAA0.2,蔗糖1.5％。以     

玉竹的组织培养与快速繁殖

以玉竹[Polygonatum odoratum (Mill.) Druce]根状茎、叶片和茎段为外植体,于附加不同激素配比的MS培养基中诱导愈伤组织、不定芽和不定根,探讨增殖培养和植株再生的条件.结果表明,叶片和茎段外植体诱导愈伤组织和芽的分化率很低;而根状茎外植体易于培养,有较高的诱导率和增殖倍数,其愈伤组织、不定芽和不定根的诱导率分别可达87%、90%和99%以上.适宜根状茎外植体愈伤组织诱导的培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA,有利于增殖和丛生芽分化的培养基为MS+2.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L IBA和MS+3.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA,而1/2MS+3.0～5.0 mg/L NAA适宜诱导试管苗生根培养.试管苗的移栽成活率可达85%以上.     

石蒜愈伤组织的诱导及其继代培养

以石蒜鳞茎为外植体,研究了不同激素组合、鳞茎不同部位和不同生长时期等因素对石蒜愈伤组织诱导的影响及其继代培养。结果表明：MS＋2,4-D 1 mg·L~（-1）＋6-BA 1 mg·L~（-1）激素组合能较好的诱导出石蒜愈伤组织,诱导率达61.13%;外植体的选择是石蒜愈伤组织诱导的关键因素,内层鳞茎诱导愈伤组织的效果最好;在一个生长周期中,9、10月的鳞茎作为外植体诱导愈伤组织最佳;MS＋2,4-D 0.5 mg·L~（-1）＋KT 0.5 mg·L~（-1）是愈伤组织较好的继代培养基,继代周期为24～27 d。     

罗布麻愈伤组织诱导及植株再生

以罗布麻(Apocynum venetum L.)当年的成熟种子和5周龄的幼苗叶片为外植体,研究了不同激素组合、暗培养对愈伤组织及植株再生的影响.结果表明,幼苗作外植体诱导愈伤的最佳培养基为添加1.0 mg/L 6-BA 0.2 mg/L IBA的MS培养基;继代培养中1.0 mg/L 6-BA与0.2 mg/L IBA组合愈伤致密而生长迅速,长时间培养硬化的愈伤组织可用添加0.5 mg/L 6-BA和0.1 mg/L IBA培养基和初期暗培养获得大量质地疏松、增殖迅速的愈伤组织;再生苗诱导以0.5 mg/L 6-BA 0.2 mg/L IBA组合为佳;1/2MS附加NAA 0.6 mg/L为适宜的生根培养基,初步建立了罗布麻离体再生体系.     

番茄子叶原生质体再生植株

从番茄2—3周苗龄的子叶游离原生质体,在 MS 液体培养基中(附加2,4-D 1,6-BA 0.1mg/l)培养;在培养过程中经常不断添加新鲜培养液。6周后将细胞团移到半固体 MS 培养基上(附加成份同上,琼脂0.3%)。然后将肉眼可见的愈伤组织再移入 MS 固体培养基上,愈伤组织长到直径为5 mm 大小时,转到 MS 分化培养基上(附加6-BA 2 mg/1,[AA 0.2 mg/l)诱导分化,得到了再生植株。比较了固体培养、悬浮培养和双层培养三种方法,观察原生质体生长情况,以双层培养为好。     

百合(Lilium spp)的组培快速繁殖技术研究

用百合的鳞茎和根尖作为外植体进行组培快速繁殖实验:选用MS培养基为基本培养基,添加不同浓度的激素,接种后进行对照试验。结果表明:鳞茎在所有的外植体中愈伤组织的诱导率最高;百合鳞茎愈伤组织的最佳培养基为MS 6-BA 1.0mg/L NAA 0.5 mg/L。     

怀山药微型块茎愈伤组织的诱导形成及高频率再生

对怀山药微型块茎愈伤组织的诱导及高频率再生进行了研究。结果表明 :(1)光下诱导铁棍山药脱分化形成愈伤组织 ,6 -BA2 mg/L NAA2 mg/L 为最佳激素组合。KT2 mg/L 2 ,4 - D2 mg/L 有利于铁棍山药愈伤组织的增殖。附加 2 mg/L NAA能缩短 4 7号山药愈伤组织的诱导时间。KT2 mg/L NAA2 m g/L 有利于 4 7号山药愈伤组织增殖 ;(2 )不同光照条件对愈伤组织的诱导和增殖影响不同。光照是缩短 4 7号山药愈伤组织诱导时间的另一因素。暗培养有利于愈伤组织的增殖 ,对 4 7号山药来说 ,暗培养下诱导率也较高 ;(3)基因型不同 ,愈伤组织类型不同 ,诱导率和不定芽分化率也有差异 ,4 7号山药高于铁棍山药 ;(4 )KT对 4 7号山药愈伤组织分化形成不定芽起主要作用 ,2 ,4 - D2 mg/L KT2 mg/L 为最佳激素组合 ;(5 )光培养有利于不定芽的分化     

野牛草幼穗愈伤组织的诱导及植株再生

以野牛草[Buchloe dactyloides(Nutt．)Engelm．]幼穗为外植体,建立了愈伤组织诱导、继代培养和植株再生体系。结果表明,雌穗比雄穗难以脱分化形成愈伤组织;小于8mm雄幼穗在2mg／L2,4-D培养基上的愈伤组织诱导率为80．0％～86．8％;添加10mg／L AgNO3对愈伤组织诱导率影响不明显,但可改善愈伤组织质量。2mg／L 2,4-D结合0．1mg／L 6-BA的培养基有利于愈伤组织的继代培养;继代超过3次、继代间隔超过3周,愈伤组织分化能力明显下降。雄穗愈伤组织在含1．0mg／L 6-BA培养基上,弱光条件下分化出芽的频率较高,达31．8％～35．0％;附加3％麦芽糖既可减轻褐化程度,又利于丛生芽的分化。分化苗在1/2MS 0．3mg／L IBA培养基上的生根率为62．5％。     

蒙古黄芪下胚轴愈伤组织诱导与再生植株

植物名称:蒙古黄芪(Astragalus mongolicus),别名黄芪、绵黄芪。材料类别:野生种经栽培三年所得的种子,经消毒置于培养基表面,发芽后取其下胚轴,切成3～4mm小段为外植体。培养条件:MS为基本培养基:(1)诱导愈伤组织培养基附加6-BA20 mg/L(单位下同)+IAA 0.5;(2)分化培养基附加6-BA1.0+NAA0.5+IAA0.2+CH500或6-BA1.0+NAA1.0;(3)生根培养