蓝狐发情期及妊娠期血清五种 生殖激素含量变化

为探究发情期及妊娠期雌性蓝狐(Alopex lagopus)生殖激素的变化规律,选取11只繁殖期雌性蓝狐,采用放射免疫法(RIA)测定血清中雌二醇(E2)、促黄体生成素(LH)、促卵泡素(FSH)、孕酮(P)以及催乳素(PRL)的含量。结果表明,促卵泡素和促黄体生成素在发情期及妊娠期血清中浓度一直处于较稳定水平,并呈波动式分泌,最大值分别为(2.18±0.69)U/L和(8.82±1.83)U/L,同种激素不同检测日期数据两两比较差异不显著(P> 0.05);雌二醇在发情期和妊娠期血清中浓度亦处于较稳定水平,最大值出现在发情第1天,为(27.73±23.19)ng/L,数据两两比较差异亦不显著(P> 0.05);孕酮在发情期维持较高水平,最大值在发情第3天,为(2.41±1.35)μg/L,之后在妊娠期持续下降,分娩当天达到最低点,为(0.13±0.14)μg/L,数据两两比较差异显著(P <0.05);催乳素在发情期先下降,最低值为(0.15±0.04)U/L,第3天开始升高,并在妊娠期保持较高水平,到分娩时维持最高(0.21±0.05)U/L,数据两两比较差异不显著(P> 0.05)。初步探索了5种激素含量在发情和妊娠期间的动态变化,为养殖蓝狐的生殖生理提供参考数据。     

PMSG、E_2、PGF_(2α)和hCG组合处理对初情前蓝狐卵巢和子宫的影响

为了完善提高狐狸繁殖效率的超排技术,探讨了用PMSG、E2、PGF2α和hCG的不同组合处理对诱发初情前雌性蓝狐发情及其对卵巢和子宫发育的影响.EPP组(E2、PMSG和PGF2α组合)和EPPh组(E2、PMSG、PGF2α和hCG组合)分别有2只和3只发情,而对照组未见发情;EPP和EPPh组卵巢指数和有腔卵泡百分率显著高于对照组(P<0.05),而初级卵泡所占百分率则显著低于对照组.此外,EPPh组次级卵泡所占百分率与对照组相比显著降低(P<0.05);当用EPP和EPPh法处理雌性蓝狐后,子宫指数、子宫壁和子宫内膜厚度显著高于对照组(P<0.05).结果 表明,EPP和EPPh处理不仅具有诱发雌性蓝狐发情的功效,而且能够提高初情前雌性蓝狐卵巢指数和增加有腔卵泡数量.     

芹菜素对雌性大鼠生殖轴的影响

目的：探讨芹菜素在10-9mol/L浓度时对雌性大鼠生殖功能的影响。方法：应用侧脑室注射方法观察芹菜素对雌性大鼠生殖轴激素含量的影响。在侧脑室注射后第3天取血浆,采用放免技术测定血浆中促性腺激素释放激素（GnRH）、卵泡刺激素（FSH）、黄体生成素（LH）、雌二醇（E2）、孕酮（P）的含量。结果：在给药后第3天血浆中促性腺激素释放激素（GnRH）、卵泡刺激素（FSH）、黄体生成素（LH）的含量增加而雌二醇（E2）、孕酮（P）的含量降低,差异有显著性。结论：芹菜素抑制雌二醇（E2）合成中芳香化酶的活性实现对雌二醇（E2）、孕酮（P）分泌的抑制。芹菜素通过影响雌激素受体而使下丘脑的促性腺激素释放激素（GnRH）和腺垂体的卵泡刺激素（FSH）、黄体生成素（LH）分泌增加。     

川金丝猴尿液类固醇激素的保存时效性

尿液类固醇激素检测已经广泛运用于野生动物的生理机能、健康状况和繁殖状态的研究,由于分析条件以及样品采集时间限制,一般尿液样品需保存一段时间后才能在实验室分析,不同物种尿液类固醇在不同保存条件的保存时效有差异。本研究利用2只成年雄性和4只成年雌性的尿液样品共21份,确定川金丝猴尿液类固醇的保存时效和保存方法。结果表明:4℃时,雄性川金丝猴尿液睾酮、雌性尿液睾酮、孕酮的保存时效为7 d左右;雌性尿液雌二醇的保存时效在3 d以内。-20℃时,雄性川金丝猴尿液中睾酮的含量在60 d内保持稳定;雌性尿液中睾酮、孕酮和雌二醇的含量在60 d、45 d、60 d内保持稳定。-20℃保存川金丝猴尿液样品是一种有效、可靠的方法。     

中国大鲵生殖激素的初步研究

首次全面报道了中国大鲵6项生殖激素的研究结果.采用电化学发光技术,检测了雌雄中国大鲵在繁殖期与非繁殖期的血清中垂体泌乳素、卵泡生成激素、黄体生成激素、雌二醇、孕酮和睾酮6项生殖激素的含量.实验结果表明,雌雄性中国大鲵在繁殖期间与非繁殖期间的6项生殖激素检测结果没有明显的差异,对中国大鲵血清中的生殖激素与繁殖期的相关性进行了初步探讨,为中国大鲵生殖内分泌学的研究和人工繁殖积累了资料.     

川金丝猴粪样内3种类固醇激素保存时效分析

川金丝猴(Rhinopithecus roxellanae)是中国特有的灵长类物种,生存于海拔1 400～3 300 m的山地森林地带。采用拾取新鲜粪便的非损伤性途径研究该物种野生种群生理状态,必须首先确定其新鲜粪便在特定保存方法下的保存时效。本项研究探讨在川金丝猴自然分布区夏季可获得的低温(4±1)℃、在95%乙醇中保存条件下,该物种新鲜粪便内3种类固醇激素(睾酮、雌二醇、孕酮)在8个设定天数:0(标准对照)、5、6、7、8、10、20、30 d的保存时效。结果表明,雌性川金丝猴粪样内睾酮和雌二醇在30 d内可稳定保存,孕酮含量在保存10 d时的平均值显著性低于标准参照值(P0.05);雄性川金丝猴粪样中睾酮含量在保存6 d时的平均值显著低于标准参照值(P0.05)。本研究说明,在野生川金丝猴新鲜粪便保存条件一致的情况下,该物种新鲜粪样内睾酮、孕酮、雌二醇3种激素保存时效并不一致,实际运用时需要结合研究目的区别对待。     

心房钠尿肽(ANP)对大鼠卵巢细胞生成雌激素与孕激素的影响

应用大鼠卵巢黄体细胞、颗粒细胞培养以及放射免疫分析法,观察了α型心房钠尿肽(α-ANP)对性甾体激素孕酮(P)和雌二醇(E_2)分泌的影响,结果发现,0.1—10ng/ml 浓度的α-ANP 促进离体培养的大鼠黄体细胞分泌孕酮,并呈量效关系。α-ANP 也促进大鼠卵泡颗粒细胞分泌孕酮,但对分泌雌二醇没有影响。说明α-ANP 也影响卵巢分泌功能。     

小熊猫繁殖周期血清雌二醇和孕酮含量变化

为研究小熊猫繁殖周期血清雌二醇、孕酮含量变化规律,采用化学发光免疫分析法连续16 次测定了2只成体雌性小熊猫血清雌二醇和孕酮含量变化,历经发情间期、发情期和两次妊娠期;连续9次测定了7只小熊猫妊娠期的孕酮含量变化。结果:(1)发情间期,小熊猫血清雌二醇的水平一直维持在低水平(基础水平),进入发情前期,血清雌二醇水平明显升高,在发情期一直维持高水平,配种后迅速降至基础水平; (2)小熊猫血清孕酮含量在发情间期和发情期均维持在较低水平,直至发情期过后才出现升高,在妊娠期一直维持高水平,峰值出现在5 月;(3)发情的小熊猫不论妊娠与否,在妊娠期内血清孕酮含量均维持在高水平。研究表明:小熊猫血清雌二醇、孕酮含量变化能直接反映其繁殖规律,雌二醇对启动雌性小熊猫季节性繁殖起重要作用;在妊娠期内小熊猫血清孕酮含量升高不能作为判断小熊猫妊娠的标准;雌性小熊猫在妊娠期有假孕现象。     

大熊猫雌性个体发情期生殖内分沁变化的研究

本文首次报道了用黄体生成素的生物测定法测定大熊猫发情期黄体生成素的生物活性与雌二醇、孕酮的关系。雌性大熊猫在发情高潮后两天,尿中黄体生成素的生物活性与雌二醇同时出现峰值,并与雄性变配。随后尿中孕酮浓度迅速增长,其浓度远远大于发情前期的水平。生殖内分泌的变化证实:雌性大熊猫在发情期中有成熟的卵子排出。     

密度梯度离心分离大鼠卵巢卵泡膜细胞

探讨用密度梯度离心法快速、有效地分离大鼠卵泡膜细胞.选取23～25 d雌性大鼠卵巢,用Percoll密度梯度离心法将卵泡膜细胞分离纯化,3β-羟基类固醇脱氢酶(3β-hydroxysteroid dehydrogenase,3β-HSD)组织化学染色用于卵泡膜细胞纯度检测.分别用0.1 U/mL和1.0 U/mL卵泡刺激素(Follicle-stimulating hormone,FSH)及黄体生成素(luteinizing hormone,LH)处理细胞,无血清培养48 h后,酶联免疫法检测培养液中雄烯二酮和雌二醇的水平.分离所得细胞中,3β-HSD染色阳性细胞与总细胞数之比大于90％; LH组的雄烯二酮水平显著高于对照组和FSH组(P＜0.05),LH组中1.0 U/mL组的雄烯二酮水平又高于0.1 U/mL组.各组均未检测到雌二醇及孕酮.3β-HSD组织化学染色可快速有效地检验所分离的卵泡膜细胞的纯度,分离所得的卵泡膜细胞可对LH产生反应,且其中几乎没有混杂颗粒细胞.     

哺乳动物性别决定和性反转

目前已知SRY仅是涉及性别决定过程的基因之一.近年来又发现和克隆了许多可能参与性腺分化与发育的基因,如副中肾抑制基因MIS,也称抗副中肾激素基因AMH;SRY相关基因SOX9;编码甾类因子的基因SFI;X-连锁的DAX基因;Wilm′s肿瘤抑制基因WTI;以及X-连锁的剂量敏感基因DSS等,并新建立了性别决定的Z-基因模型,DSS-基因模型和Jimenez等的模型,较合理地解释了哺乳动物性别决定的分子机理和以前难以解释的各种奇特的性反转现象,使性别决定的研究取得了长足的进展,但仍有一些悬而未决的问题有待于进一步探索.     

Sex Determination by Sex Chromosomes in Dioecious Plants

Abstract: Sex chromosomes have been reported in several dioecious plants. The most general system of sex determination with sex chromosomes is the XY system, in which males are the heterogametic sex and females are homogametic. Genetic systems in sex determination are divided into two classes including an X chromosome counting system and an active Y chromosome system. Dioecious plants have unisexual flowers, which have stamens or pistils. The development of unisexual flowers is caused by the suppression of opposite sex primordia. The expression of floral organ identity genes is different between male and female flower primordia. However, these floral organ identity genes show no evidence of sex chromosome linkage. The Y chromosome of Rumex acetosa contains Y chromosome-specific repetitive sequences, whereas the Y chromosome of Silene latifolia has not accumulated chromosome-specific repetitive sequences. The different degree of Y chromosome degeneration may reflect on evolutionary time since the origination of dioecy. The Y chromosome of S. latifolia functions in suppression of female development and initiation and completion of anther development. Analyses of mutants suggested that female suppressor and stamen promoter genes are localized on the Y chromosome. Recently, some sex chromosome-linked genes were isolated from flower buds of S. latifolia.     

Sex Determination and Sex Ratios in Crocodylus palustris

Incubation temperature determines sex in the mugger crocodile,Crocodylus palustris. Exclusively females are produced at constanttemperatures of 28.0°C through 31°C. At 32.5°C,only males are produced. Both sexes are produced in varyingproportions at 31.5, 32.0, and 33.0°C. Embryo survival isnot affected within this range, but developmental rate and totalincubation time are strongly temperature dependent. In naturalnests laid in breeding enclosures, cool incubation temperaturesproduced only females whereas males were produced only in warmnests. Clutch sex ratios were female or male biased. Yearlysex ratios (=percent male) varied from 0.05 to 0.58; overallsex ratio during six nesting seasons was 0.24 (1 male: 3 females).Sex ratio and incubation time vary with nest location and temperaturein a manner consistent with the constant temperature results.Incubation time decreases with increasing incubation temperature,and is an accurate predictor of sex ratio in the field and laboratory. To date, temperature-dependent sex determination (TSD) has beenreported in five species of Crocodylus and in three speciesof Alligatorinae; but the TSD patterns in these groups differ.The TSD pattern of C. palustris is similar to that of C. porosus.Nesting in C. palustris is synchronized with the seasonal availabilityof thermal regimes suitable for incubation. Resultant sex ratiosare a consequence of when and where eggs are laid. Early nestsare located in warm, sunny sites; in contrast, late season nestsare located in the shade. An egg transplant experiment demonstratedthat sex ratios could be altered by simple manipulations ofnest temperatures in the field. The adaptive significance ofTSD in crocodilians may relate to the influence of incubationtemperature on various hatchling attributes, particularly growth.