CRISPR/Cas9基因编辑技术在糖尿病细胞治疗中的应用研究进展

近几年来,基因编辑技术快速发展,为在特定位置精确操控基因组提供了一个有效而精确的工具。CRISPR/Cas9系统是一种新型的基因编辑工具,可实现对人类基因组的高精度修饰,是疾病建模和治疗的可行选择。随着CRISPR/Cas9系统技术的广泛应用,在糖尿病领域有不少相关研究出现。该文从干细胞分化为β细胞、基因编辑重编程为β细胞以及修饰基因三个方面总结了CRISPR/Cas9技术在糖尿病治疗中的应用。     

人脐带间充质干细胞在Balb/c裸鼠体内的分布情况研究

目的研究人脐带间充质干细胞（hUCMSCs）在BalB/c裸鼠体内的分布。 方法采用DiR标记hUCMSCs,以MTT法检测标记hUCMSCs体外培养的生长增殖,流式细胞术检测标记hUCMSCs的细胞表型,以诱导分化法检测标记hUCMSCs的成骨、成脂、成软骨诱导分化能力,小动物活体成像法检测DiR标记hUCMSCs尾静脉给药后在小鼠体内的分布情况。采用t检验对测得的hUCMSCs增殖数据进行统计分析。 结果0,24,48,72,96,120 h MTT法测得的DiR标记hUCMSCs吸光度值与未标记组相比差异无统计学意义,DiR标记对hUCMSCs细胞表型没有明显影响,对其成骨、成脂、成软骨多向诱导分化能力没有影响,DiR标记hUCMSCs尾静脉给药后,荧光首先分布于肺脏,随时间逐渐迁移至肝脏和脾脏,最终归巢和分布于肝脏、脾脏和肺脏,荧光强度肝脏>脾脏>肺脏,随时间逐渐减弱,至4周时动物肝脏、脾脏和肺脏仍有荧光存在。 结论DiR标记不影响hUCMSCs体外增殖、细胞表型表达和多向诱导分化能力,DiR标记hUCMSCs尾静脉注射后首先分布在肺脏,存在明显的首过效应,然后逐渐迁移至肝脏和脾脏,主要分布和归巢在肝脏、脾脏和肺脏。     

RAPD方法对甲型溶血性链球菌分型的探讨

甲型溶血性链球菌常居于人类的口腔、＿L呼吸道等部位,为人体的重要条件致病菌。本文应用随机引物PCR或称RAPD法,对甲型溶血性链球菌进行比较,分析该菌RAPD扩增产物的多态性,以判断各菌株间DNA差异和亲缘关系。作者随机设计f17bP和10加的2条引物,用RAPD方法分析了30株甲型溶血性链球菌及5株肺炎链球菌DNAs用17hP引物对30株未卜本地区3所医院临床标本分离的甲型溶血性链球菌DNA进行扩增,共出现了12个DNA片段的条带,分别命名A、B、C……L,各菌株间的主要条带具有较强的相似性。根据A、J2条带分布特征可将30株菌区分为…