丛枝菌根真菌对玉米和棉花内源激素的影响*

在温室盆栽条件下研究了丛枝菌根（Ａｒｂｕｓｃｕｌａｒ　ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ,ＡＭ）真菌：ＧｉｇａｓｐｏｒａｒｏｓｅａＮｉｃｏｌ．＆Ｓｃｈｅｎｃｋ、Ｇｌｏｍｕｓ　ｍｏｓｓｅａｅ（Ｎｉｃｏｌ．＆　Ｇｅｒｄ．）Ｇｅｒｄｅｍａｎｎ　＆Ｔｒａｐｐｅ和Ｇｌｏｍｕｓ　ｖｅｒｓｉｆｏｒｍｅ　（Ｋａｒｓｔｅｎ）Ｂｅｒｅｈ对玉米和棉花植株内源激素的影响。结果表明,ＡＭ真菌在正常供水和干旱条件下均能显著提高玉米和棉花植株叶片和根内玉米素、生长素和赤霉素的含量,并降低脱落酸的含量。在植物体内含磷量、生长量及其生长发育阶段等一致、仅存在接种与不接种唯一差异条件下,供试ＡＭ真菌同样能改变玉米和棉花植株内源激素的平衡状况。接种处理植株的脱落酸含量与气孔阻力呈正相关关系。表明玉米和棉花植株抗旱性和生长状况的改善与ＡＭ真菌改变内源激素的平衡状况有关。接种ＡＭ真菌的植株表现较强的抗旱性;其生长量也显著大于不接种的对照。ＧＩ．ｖｅｒｓｉｆｏｒｍｅ的效应最大。     

野生植物根围的丛枝菌根真菌Ⅱ

本文主要报道了野生植物根围Glomus属的17个种,聚球囊霉G.aggregatumSchenck＆Smith,苏格兰球囊霉G.caledonium（Nicol.＆Gerd.）Trappe＆Gerd,近明球囊霉G．claroideumSchenck＆Smith,明球囊霉G．clarumNicolson＆Schenck,缩球囊霉G．constrictumTrappe,透光球囊霉G．diaphanumMorton,幼套球囊霉G．etunicatumBecker＆Gerdemann,集球囊霉G．fasciculatum（Thaxter）Gerd．＆Trappe,何氏球囊霉G．hoiBerch＆Trappe,地球囊霉G.geosporum（Nicol．＆Derd.）Warker,根内球囊霉G．intraradicesSchenck＆Smith,摩西球囊霉G．mosseae（Nicol．＆Gerd.）Gerd.＆Trappe,隐球囊霉G.occultumWalker,网状球囊霉G.reticulatumBhattcharjee＆Mukerji,地表球囊霉G.versiforme（Karsten）Berch,台湾球囊霉G．formosanumWu＆Chen,悬钩子球囊霉G．rubiformeGerdemann＆Trappe）Almeida＆Schenck;内养囊霉属1个种,稀有内养囊霉Entrophosporainfrequens（Hall）Ames＆Schenider。其中,网状球囊霉为我国新记录种。     

甘薯同一不亲和群内品种间体细胞杂种

利用PEG融合方法,融合甘薯(Ipomoea batatas ) B不亲和群内品种‘koganesengan’和‘bitambi’的原生质体。将融合处理的原生质体进行培养,共获得45株再生植株。4株再生植株形态上表现出融合双亲的中间特性,其中2株染色体数为融合两亲之和（2n = 12x (2n + 2n) = 180）,另外2株分别为41～103和35～100,因细胞不同而不同。经RAPD分析,这4株再生植株分别具有双亲特异的DNA扩增带或双亲都不具有的新扩增带。鉴定这4株再生植株为杂交不亲和的B群内品种间体细胞杂种。     

甘薯叶柄原生质体有效植株再生

将甘薯(Ipomoea batatas (L．)Lam．)‘元气’和‘白星’(‘White Star’)的叶柄原生质体培养在含有0.05 mg·L-1 2,4-D和0.5 mg·L-1 KT的改良MS液体培养基中,3～4 d后细胞开始分裂。培养8～9周后,将直径达1～2 mm的愈伤组织转移到添加0.05～0.2 mg· L-1 2,4-D和0～0.5 mg·L-1 KT或添加0.5～2.0 mg ·L-1 NAA和1.0～3.0 mg·L-1 BAP 的MS固体增殖培养基上使其增殖。转移3～5周后,将愈伤组织再转移到MS基本培养基或转移到添加2.0～3.0 mg·L-1 BAP的MS培养基上。当进一步转移到MS基本培养基上后,从愈伤组织或从愈伤组织形成的不定根上再生出植株。‘元气’植株再生率高达60.0 ％,White Star高达43.4％。     

野生植物根围的丛枝菌根真菌II.

本文主要报道了野生植物根围Glomus属的17个种,聚球囊霉G. aggregatumSchenck & Smith,苏格兰球囊霉G. caledonium (Nicol. & Gerd.) Trappe & Gerd,近明球囊霉G. claroideum Schenck & Smith,明球囊霉G. clarum Nicolson & Schenck,缩球囊霉G. constrictum Trappe,透光球囊霉G. diaphanum Morton,幼套球囊霉G. etunicatumBecker & Gerdemann,集球囊霉G. fasciculatum (Thaxter) Gerd. & Trappe,何氏球囊霉G.hoi Berch & Trappe,地球囊霉G. geosporum (Nicol. & Gerd.) Warker,根内球囊霉G.intraradices Schenck & Smith,摩西球囊霉G. mosseae (Nicol. & Gerd.) Gerd. & Trappe,隐球囊霉G. occultum Walker,网状球囊霉G. reticulatum Bhattcharjee & Mukerji,地表球囊霉G. versiforme (Karsten) Berch,台湾球囊霉G. formosanum Wu & Chen,悬钩子球囊霉G. rubiforme Gerdemann & Trappe) Almeida & Schenck;内养囊霉属1个种,稀有内养囊霉Entrophospora infrequens (Hall) Ames & Schenider.其中,网状球囊霉为我国新记录种.     

甘薯同一不亲和群内品种间体细胞杂种

利用PEG融合方法,融合甘薯(Ipomoea batatas)B不亲和群内品种‘koganesengan'和‘bitambi'的原生质体.将融合处理的原生质体进行培养,共获得45株再生植株.4株再生植株形态上表现出融合双亲的中间特性,其中2株染色体数为融合两亲之和(2n=12x(2n 2n)=180),另外2株分别为41～103和35～100,因细胞不同而不同.经RAPD分析,这4株再生植株分别具有双亲特异的DNA扩增带或双亲都不具有的新扩增带.鉴定这4株再生植株为杂交不亲和的B群内品种间体细胞杂种.     

渤海湾岛屿的丛枝菌根真菌*

从渤海湾岛屿上的天然植被根围土壤中分离到丛枝菌根真菌7属35种, 其中无柄囊霉属Acaulospora5种,原囊霉属Archaespora1种,内养囊霉属 Entrophospora 1种,球囊霉属Glomus属18种,巨孢囊霉属 Gigaspora3种, 类球囊霉属Paraglomus属1种,盾巨孢囊霉属Scutellospora6种。群生盾巨孢囊霉Scutellospora gregaria和易误巨孢囊霉Gigaspora decipiens为我国的新记录种。标本保藏于莱阳农学院菌根生物技术实验室。     

野生植物根围的丛枝菌根真菌Ⅱ*

本文主要报道了野生植物根围Glomus属的17个种,聚球囊霉G.aggregatumSchenck＆Smith,苏格兰球囊霉G.caledonium（Nicol.＆Gerd.）Trappe＆Gerd,近明球囊霉G．claroideumSchenck＆Smith,明球囊霉G．clarumNicolson＆Schenck,缩球囊霉G．constrictumTrappe,透光球囊霉G．diaphanumMorton,幼套球囊霉G．etunicatumBecker＆Gerdemann,集球囊霉G．Fasciculatum（Thaxter）Gerd．＆Trappe,何氏球囊霉G．hoiBerch＆Trappe,地球囊霉G.geosporum（Nicol．＆Derd.）Warker,根内球囊霉G．intraradicesSchenck＆Smith,摩西球囊霉G．Mosseae（Nicol．＆Gerd.）Gerd.＆Trappe,隐球囊霉G.occultumWalker,网状球囊霉G.reticulatumBhattcharjee＆Mukerji,地表球囊霉G.versiforme（Karsten）Berch,台湾球囊霉G…     

龙脑香科植物对丛枝菌根真菌的影响

在天然林地和温室盆栽条件下,比较研究了龙脑香科植物对丛枝菌根(Arbuscular mycorrhizas,AM)真菌孢子密度、相对多度、频度、属的组成、丰度和侵染状况等方面的影响.结果表明,用坡垒作盆栽寄主加富培养后,菌根侵染率、泡囊、丛枝和侵入点都低于原采样植物,以原坡垒土壤中栽植苗木的侵染率为最高,可达20.3%;而以望天树根围土壤栽植的苗木为最低,仅为10.6%;坡垒还不同程度地改变了原采样植物根围土壤中AM真菌孢子的密度、相对多度、频度、属的组成、丰度等.在4种土壤中,栽植坡垒苗木后,AM真菌的孢子密度都有不同程度的增长.采用与原采样相同种类的植物作为AM真菌加富培养的寄主更有利于促进AM真菌的生长发育、保持AM的多样性.     

甘薯叶柄原生质体有效植株再生

将甘薯（Ｉｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓ（Ｌ．）Ｌａｍ．）‘元气’和‘白星’（‘ＷｈｉｔｅＳｔａｒ’）的叶柄原生质体培养在含有０．０５ｍｇ·Ｌ－１２,４Ｄ和０．５ｍｇ·Ｌ－１ＫＴ的改良ＭＳ液体培养基中,３～４ｄ后细胞开始分裂。培养８～９周后,将直径达１～２ｍｍ的愈伤组织转移到添加０．０５～０．２ｍｇ·Ｌ－１２,４Ｄ和０～０．５ｍｇ·Ｌ－１ＫＴ或添加０．５～２．０ｍｇ·Ｌ－１ＮＡＡ和１．０～３．０ｍｇ·Ｌ－１ＢＡＰ的ＭＳ固体增殖培养基上使其增殖。转移３～５周后,将愈伤组织再转移到ＭＳ基本培养基或转移到添加２．０～３．０ｍｇ·Ｌ－１ＢＡＰ的ＭＳ培养基上。当进一步转移到ＭＳ基本培养基上后,从愈伤组织或从愈伤组织形成的不定根上再生出植株。‘元气’植株再生率高达６０．０％,ＷｈｉｔｅＳｔａｒ高达４３．４％。