苯并[a]芘对小鼠肝脏和肾脏中丙二醛和过氧化氢酶的影响

目的探讨苯并[a]芘（B（a）P）对小鼠肝脏和肾脏脂质过氧化及抗氧化能力的影响。方法采用B（a）P口腔灌胃连续染毒3 d后,取肝、肾组织作匀浆,采用TBA比色法测定鼠肝脏和肾脏内的丙二醛（MDA）的含量,钼酸铵比色法测定鼠肝脏和肾脏内的过氧化氢酶（CAT）的含量。结果肝中各剂量染毒组的MDA含量增加,其中5 mg/kg、10 mg/kg剂量组与油剂对照组比较差异有显著性（P〈0.05）。肾脏中各剂量染毒组的MDA含量均有所增加,其中10 mg/kg剂量组与对照组比较差异有显著性（P〈0.05）。肝脏中各剂量染毒组的CAT的含量低剂量增加高剂量减少,肾脏中各剂量染毒组的CAT的含量增加。结论B（a）P可引起MDA含量增加诱导小鼠肝肾的脂质过氧化损伤。     

分枝杆菌TZh51菌株的分离鉴定及其生物修复污染土壤的特性

[目的]为获得降解芘的微生物菌株,并用其生物修复被多环芳烃污染的土壤.[方法]芘降解菌的分离采用平板升华法.根据表型观察、生理生化特性和16S rDNA的序列同源性分析,对菌株进行分类学鉴定.通过活菌计数、HPLC测定多环芳烃的残留量,研究菌株在固体、液体无机盐培养基以及在污染土壤中降解多环芳烃(polycyclic aromatic hydrocarbons,PAHs)的能力.[结果]分离到4株能降解芘的菌株TZh51、TZh52、TG42和TG52.实验结果表明,TZh51降解PAHs的能力强于其余3株菌.TZh51被鉴定为分枝杆菌属(Mycobacterium sp.),但与已发表的分枝杆菌菌株M11为不同的种.TZh51接种在芘膜的固体无机盐培养基上,测定获得最大芘降解量的条件是培养温度为3512和芘膜厚度为130 ng/mm2.在芘浓度为50、100 mg/L的液体无机盐培养基中培养,6天时TZh51的芘降解率分别达到91.9%、71.8%,10天时菌体数量分别达到最大值为2.0、6.0×108cfu/mL;TZh51降解芘的效果强于M11.在种植作物的处理中,到第6周时TZh51的菌体数量达到每克干土含7.2×108个菌落数,到第8周时菲、荧蒽和芘的降解率分别达到91.4%、86.9%和85.8%;[结论]TZh51具有很强降解PAHs的能力;另外,TZh51与作物联合生物修复污染土壤的效果明显.     

1株芘降解酵母菌HXY-5的筛选鉴定及对芘的降解研究

以长期被石油污染的沈抚污灌渠底泥为菌源,富集筛选出以芘为唯一碳源能够生长的菌株HXY-5,采用形态学和分子生物学鉴定相结合的方法进行菌株鉴定,运用光电比浊法测定其对芘的降解效果,通过单因素实验和正交实验确定其最佳发酵和培养条件。结果表明:HXY-5菌株为间型假丝酵母(Candida intermedia);其最适发酵和培养条件为蔗糖20 g,酵母浸粉2 g,MgSO_4·7H_2O 0.5 g,CaCl_2 0.01 g,KH_2PO_4 0.5 g,溶于1 000 mL蒸馏水中,初始pH 6.0,培养温度为25℃,175 r/min发酵24 h;在初始芘浓度为100 mg/L的液体无机盐培养基中,15 d时,HXY-5菌株对芘的降解率可达63%。结果表明,HXY-5菌株可以对芘环境污染进行修复。     

三株降解芘的戈登氏菌鉴定及其降解能力

从沈抚灌区多环芳烃污染土壤中筛选出的芘降解菌D44、D82S和D82Q,经形态观察、生理生化试验和16S rDNA序列分析确定均为戈登氏菌属(Gordonia sp.).3株菌的最适生长pH值均为7,当pH值低于5或高于9时,生长均受到明显抑制.降解试验表明,3株菌能以芘、苯并芘、蒽、萘、菲和荧蒽为唯一碳源和能源生长.经过7 d的培养,3株菌对初始浓度为100 mg.L-1的芘的降解率均在65%以上,对初始浓度为50 mg.L-1的苯并芘的降解率分别为79.6%、91.3%和62.8%.通过PCR检测发现D82Q和D82S含有烷烃单加氧酶基因alkB.     

细胞色素C和含心磷脂的人工脂膜相互作用

 本文报告以芘为荧光探剂,研究细胞色素C和含心磷脂的人工脂膜的相互作用。1.由于芘和细胞色素C的血红素团之间的能量转移,细胞色素C与心磷脂结合引起芘的单体荧光发射峰(395nm)强度下降。这种淬灭效应受脂膜的相行为影响,在液晶相时淬灭效应小于凝胶相;2.氧化态细胞色素C与还原态相比,对心磷脂结合的视和度稍高;3.在以芘的激发二聚体荧光峰(475nm)强度与单体荧光峰强度之比做为脂膜流动性的指标,发现还原态细胞色素C与含心磷脂脂膜结合后引起流动性增加的效应高于氧化态的结合。     

高效芘降解菌N12的分离鉴定与降解特性

以芘为目标降解物,利用选择性富集培养方法,从沈抚灌区污染土壤中分离到一株高效芘降解菌N12,经生理生化试验和16S rDNA测序分析,该菌被鉴定为分枝杆菌属（Mycobacterium sp.）.菌株N12能以菲、苊、芴和芘为唯一碳源和能源生长,不能以蒽、萘和苯并芘为唯一碳源和能源生长.在菲和芘共同存在的情况下菌株N12可降解苯并芘,9 d内对苯并芘降解率可达79.0%.摇瓶降解试验表明,菌株N12可在7 d内将100 mg·L^-1的芘降解94.4%,14 d内将其完全降解;可将600 mg·L^-1的芘在7 d内降解56.1%,14 d内降解95.5%.添加葡萄糖可促进N12对芘的降解.菌株N12是一株优良的多环芳烃降解菌,可作为多环芳烃污染土壤生物修复的菌种资源.     

栉孔扇贝在BaP 胁迫下生物标志物筛选的研究

研究采用染毒→清除→二次染毒实验, 研究了BaP 对栉孔扇贝组织解毒代谢酶活力和DNA 损伤的影响, 筛选了栉孔扇贝在BaP 胁迫下的生物标志物。结果表明: BaP 对栉孔扇贝鳃丝、消化盲囊芳烃羟化酶(AHH)、谷胱甘肽硫转移酶(GST)活力和还原型谷胱甘肽含量(GSH)及DNA 损伤影响显著(PaP 处理组鳃丝AHH 活力与对照组无明显差异外, 其他处理组组织AHH 活力均被显著诱导, 于15d 时达到最大值, GST 活力和GSH 含量则呈逐渐下降趋势, 5d 时达到最小值, 之后趋于稳定; 而组织DNA 链断裂(F 值)基本呈下降趋势, DNA-蛋白质交联(DPC 值)呈逐渐升高, 至15d 时分别达到最小值和最大值。在清除(15—45d)阶段, 各处理组组织AHH 活力逐渐下降,GST 活力和GSH 含量则逐渐升高, 在25—40d 时均恢复至对照组水平; 各处理组组织F 值和低浓度处理组(0.05、0.5 μg/L)DPC 值分别呈逐渐升高和下降趋势, 于35—40d 时恢复至对照组水平, 而高浓度处理组(5、10 μg/L)DPC 值仍显著高于对照组水平。在二次染毒(45—60d)期间, 除鳃丝AHH 活力在50d 时达到最大值外, 其他指标变化趋势与一次染毒基本一致。由此可见, 栉孔扇贝在BaP 胁迫下组织解毒代谢酶活力和DNA 损伤表现出明显的时间剂量效应性和稳定性, 依据相关性分析, 提出以鳃丝AHH 活力和消化盲囊GST活力为防御型生物标志物, 鳃丝、消化盲囊DPC 值为损伤型生物标志物, 并将AHH、GST 活力和DPC 值整合作为BaP 毒性评定的组合型生物标志物, 全面评价PAHs 的污染毒性。       

芘对红树植物桐花树幼苗生理生化指标的影响

研究了一种典型多环芳香烃-芘处理(浓度为20 mg·kg^–1)及不同处理时间对红树植物桐花树(Aegiceras corniculatum (L) Blanco)生理生化指标的影响。结果表明, 芘处理显著提高了桐花树的株高(7.43%)和生物量(38.55%),而对地径和叶数无显著影响; 随生长时间延长, 芘处理植株和对照(CK)植株的株高、地径、叶片数和生物量均显著增加。芘处理对桐花树的叶绿素(Chl)含量不产生影响; 但随生长时间延长, Chla 和Chla/b 显著降低, 而Chlb 和Chl(a+b)显著下降后在150 d 时又恢复至最初水平。芘处理对桐花树的净光合速率Pn 和气孔导度Gs 影响不大, 却显著提高了其蒸腾速率E 和胞间CO2 浓度Ci。添加芘显著提高了桐花树超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽-S-转移酶(GST)、过氧化物酶(POD)等抗氧化系统酶活性及丙二醛(MDA)的含量, 使其分别提高了9.23%, 94.30%, 70.09%和27.40%。随生长时间延长, SOD、GST 和POD 显著升高, 而MDA 含量在第50 天时显著升高后在第100 天和第150天又相继显著下降。上述结果表明, 添加浓度为20 mg·kg^–1 的芘处理不会对桐花树的光合作用产生显著影响, 而显著促进其生长和生物量积累; 此浓度下的芘处理提高了桐花树的抗氧化酶活性, 说明桐花树对芘胁迫具有一定的耐受性。     

北京市11种园林植物滞留大气颗粒物能力研究

测定了北京市11种园林植物叶面颗粒物附着密度,利用环境扫描电镜观察比较了各测试树种叶表面微形态,测量统计了滞留颗粒物的粒径分布.结果表明,植物主要通过叶片上表面滞留大气颗粒物,上表面滞留的大气颗粒物数量约为下表面的5倍;叶片上表面滞留大气颗粒物能力由高到低的微形态结构依次是沟槽>叶脉＋小室 >小室>条状突起,并且结构越密集、深浅差别越大,越有利于滞留大气颗粒物;测试树种叶片上、下表面PM_2.5和PM₁₀平均百分含量分别为66.7％和98.3％与 43.4％和92.9％.