做减数分裂实验的几种好材料

1.大葱花序在地里越冬的大葱(2n=16),第二年春天三四月便可长出花序,待花序长到象枣大小时,颜色呈绿色(呈黄色时已晚),采摘花序,置于卡诺固定液中(3份酒精:1份冰醋酸),固定24小时,然后取出花序,挑取小花即可制片。如不及时制片,可将固定后的花序,用95％酒精冲洗后(直至闻不到醋酸味为止),放入70％酒精中,存于冰箱内,可随时取用。     

蝗虫性细胞减数分裂制片方法的改良

最近,我室采用分离、滴片方法观察蝗虫性细胞减数分裂,取得良好效果。现介绍如下。 1.取材在麦熟和稻熟季节采集蝗虫。取其精巢固定于卡诺液中0.5—1小时。去固定液,用95％酒精洗3次,移于70％酒精中,置于低温下可长期保存。 2.制片方法 (1)用眼科镊把精巢取出,装入瓶中,加入碎玻璃反复振荡,使组织捣碎。 (2)用吸管吸取捣碎液放入离心管内,以1000转/分的速度离心3—5分钟。去上清液,     

植物维管束透明法

1.选幼嫩蚕豆一株连根拔出,用清水洗净根、茎表面污物备用。 2.将根部浸入碱性洋红溶液(配制:取0.5克碱性洋红溶解于2毫升95%酒精中后,用自来水稀释至150毫升)中染色12小时左右,待细小叶脉染为红色后,取出,用清水漂洗数分钟。     

小剂量电离辐射对哺乳动物细胞发生的影响

作者以年青的性成熟的雄性豚鼠做材料,用4伦的伦琴射线照射后,发现精巢精子染色体在有丝分裂后期发生染色体改组。分别在照射后经过1、3、6、30、60昼夜取被照射的动物之精巢,用(?)液固定,以(?)的醋酸洋红法染色。获得的重要结果略述如下:     

玉米花粉植株后代H_2减数分裂的染色体行为(英文)

最近几年,我国许多单位都成功地培养出了玉米花粉植株及其纯合植株后代。但在花粉植株后代的细胞遗传学方面还尚未进行研究。我们于1978年以玉米品种来宾白花粉植株姊妹交后代H_2,杂种桂单12花粉植株的自交后代H_2为材料,按常规的酒精-冰醋酸固定液固定材料,醋酸洋红染色压片,观察结果如下: 1.来宾白:发现在粗线期染色体常常是粘在一起的,在染色体1、4、5、6和7的长臂上有一个中等大小的染色节,在染色体9的短臂末端上有一小的染色节。在检查的8株中有3株,也观察到一小染色节紧靠第2染色体短臂的末端。第4染色体的染色节是杂合的(图版Ⅰ,1)。在第2、3和6号植株中经常出现核仁的大小、数量和形状的变异(表1;图版Ⅰ2-6)。此外,在大多数植株中观察到巨大的花粉母细胞和2至3个细胞的融合。 后期Ⅰ,有2个或1个染色单体桥而无断片(图版Ⅰ,7),一个桥和一个断片,一个断片而无桥(图版Ⅰ,8),出现在第3、6和7号植株的细胞中,大约比率超过15％。然而,在对照植株的细胞中相同畸变型只有1％(表2)。虽然倒位的构型在粗线期是有可能出现的,可是没有看见。第1、3和7号植株的花粉粒平均有10％是不育的(表3)。 2.桂单122):发现在粗线期,所有植株的染色体普遍展开得很好。在染色体1、4、6、7和9的长臂上有一个中等大小的纯合     

念珠藻的制片方法

取材普通念珠藻(Nostoc Commune)生于潮湿的土壤或草地上,在春、夏多雨季节里很容易采到.它形似木耳,俗称“地木耳”或“地皮菜”,可食用.发状念珠藻(Nostoc flagelliforme)形如发丝,俗称发菜,是重要的食用蓝藻,可从商店购得.取其中任何一种材料泡在水中,使其胶质鞘膨胀,用小毛笔刷净泥砂杂物,剪成3毫米左右长的小块(或段).选平整的材料置于载片中央,用另一张载片将材料压薄,用棉线捆紧两张载片. 固定将捆好的两张载片投入FAA固定液中24小时,松开棉线,分开载片.由于材料本身的胶质,它能粘贴在两张或其中的一张载片上(通常两张载片各粘一部分).将此材料染色和脱水. 洗涤与初染将固定好的材料用50％酒精洗涤2—3次,每次10分钟.再经40％→30％→20％→10％酒精洗,每级10分钟.最后经蒸馏水浸洗2次,每次2分钟.媒染用4％铁明矾1小时,蒸馏水洗2次后用海氏苏木精染色1小时.蒸馏水洗去浮色,1％铁明矾分色.边分色边显微镜检,至细胞内含物呈黑色,其它部分浅灰色或无色时为止.立即倒掉分色液,蒸馏水洗2—3次后,将材料浸泡于自来水中,使其变蓝     

观察有丝分裂方法的改进

在观察植物细胞的有丝分裂实验中,通常的步骤为:将取下的根尖在固定液中固定15—30分钟,然后用95％酒精洗净醋酸,移入70％酒精中,再水洗后转入1N盐酸中60℃下水解10分钟,之后水洗1—2次,压片,用醋酸洋红染色10分钟。整个过程约需35—50分钟,耗时长,且操作繁琐。近年来,我们采用了一种较为简便的方法,具体如下:     

聚乙烯醇封藏水绵永久装片

用聚乙烯醇不仅可以封藏较大的生物标本(参见本刊1983年第四期第54页聚乙烯醇膜藏叶脉标本一文),经过实验,还可用来封藏显微玻片标本,效果十分理想,特别是含水的标本。采集水绵投入FAA固定液中固定24小时,取出浸入50％酒精中(一段时间),移入清水中2—3小时,浸渍洗除固定液,在这期间要注意换清水,如果是流水清洗1小时即可。把水绵放入滴有品红染液的表面皿中染色10分钟,经镜检认为满意便可用清水洗去浮色。     

细胞减数分裂实验的简便方法

以蝗虫为材料做常规的细胞减数分裂实验,精巢经过固定后,需要较长的染色时间:30—60分钟(《中学生物学实验手册》)或2—3小时(《遗传学实验》刘祖洞等编),不易作为学生课堂实验,更难让学生了解实验的全过程。我用蝗虫的活体材料,不经固定直接染色观察,缩短了染色及整个实验过程的时间,可在一课时内完成,效果亦很好。在实验前两三天,于天气晴朗的中午,让学生到高     

草履虫和其他纤毛虫的临时染色剂

一种由10.5份醋酸洋红,4.5份45％醋酸,2份1N的盐酸,1份1％的快綠(FCF)溶于95％酒精溶液所组成的混合剂,作为当草履虫和其它原生动物的纤毛虫在无性生殖和成熟分裂时的一种新的临时染色剂。这种染色剂代替通常所使用的醋酸洋紅和酸化甲墓綠核染色剂,有下列好处:(1)它使核和原生质同时分化(核成为红棕色,原生貭由綠到灰綠色);(2)它使新发生的大核分化为(均匀的淡绿色),发生分裂的老大核为紅棕色,食泡为粒状,亮蓝綠色;(3)由于染色剂的精密性和透明性,使细胞內部結构更清楚。对某个特別的动物,为了达到更适宜的結果,可稍改变它成分的比例,在一些由于固定而容易引起发生变形的实例里,在使用时我們可将酸的浓度稀释一下。     

胞间连丝玻片的制备

将柿子或黑枣的种子浸于温水中24小时,剥去种皮,将胚乳切成薄切片并于I—KI溶液(I 1克,KI 1.25克,蒸馏水100毫升)中固定3—5分钟,移入5％H_2SO_4溶液中3—5分钟。将切片置载片中央滴一滴结晶紫染色,3分钟后用50％酒精洗1—2     

小型昆虫整体玻片标本的简便制法

1.处死固定将蚊、蚜等置于70%酒精中杀死固定. 2.脱脂将材料装人试管中注入适量70%的氢氧化钾或氢氧化钠溶液加热脱脂,待水开后,再用文火维持15分钟左右. 3.清水漂洗:脱脂后用纱布过滤碱液,用蒸馏水或清水漂洗2-3次,再用蒸馏水将材料浸泡半小时左右. 4.染色用75%酒精、酸性品红饱和液染     

一种半永久玻片标本的制备方法

这里介绍一种用蔗糖液制备半永久玻片标本的方法。用这种蔗糖液制备半永久玻片标本研究染色体是很方便的和有实际意义的。这种用蔗糖液制备的半永久玻片标本,可以保存较长时间(一年或更长)。蔗糖液的制备方法取40克蔗糖(化学纯)溶解在60毫升水中,并加热至沸,直至溶液总体积减少了1/4时为止。为避免蔗糖液冷却后出现结晶,要向蔗糖液滴入2—3滴香柏油,细心搅匀,然后再加0.2克苯酚结晶,该糖液可保存一个月以上。花药制片方法 1.从经卡诺固定剂(95％酒精:冰醋酸3:1)固定的保存在70％酒精中的花序上取出一些花药,用醋酸地衣红色液(醋酸洋红、醋酸间     

介绍一种生物玻片标本简单染色法

(1)将切好的标本放在载玻片上,用滴管滴上95%酒精将材料固定(保存材料的构造成分,使其接近生活状态)约20分钟,然后换入50％酒精中放置5分钟,最后用清水洗净。(2)用另个滴管吸一些墨水(曾用民生红墨水及民生蓝墨水分别试验染色)加于材料上,染色一分钟。(3)用滴管吸清水将     

观察细胞有丝分裂的简易方法

将蚕豆种子水浸24小时,在20-25℃下培养。待根长1-1.5厘米左右时,于上午九时或下午二时半左右剪取主根或侧根根尖3-4毫米,放入Carnoy固定液(无水酒精三份+冰醋酸一份)中浸没并置于-5°的冰箱中15-20分钟。取出后水洗1-2分钟。将材料置于载片上,加1 N HCl二份与45％冰醋酸一份的混合液2-3滴并在酒精灯上缓缓加热至冒蒸汽,水洗2-3分钟。     

甘紫菜的染色体观察

甘紫菜是我国海藻养殖的重要对象之一。搞清楚它的染色体数目和生活史中减数分裂的时期,这在理论上和实际应用上都有一定的意义。材料和方法:实验材料采集于青岛市栈桥附近的海边。所采集的新鲜材料用3:1的无水酒精和冰醋酸固定。用铁醋酸洋红和水合氯醛酸铁苏木精染色。对染色体分裂相较多,分散较好的标本,经酒精脱盖片,用油派胶(Euparal)封片。本研究的凭证标本保存在山东海洋学院遗传研究室。     

在组织切片中肥大细胞的证明及迅速记数的简单方法

肥大细胞的选择性染色法如下:1)薄片新鲜组织(3—5毫米厚)于下液固定18—24小时,但标本置于此液至少一周尚无显明害处。配法:福尔马林液10毫升;95%酒精90毫升;醋酸钙1克。2)组织以95%酒精洗2次,每次1小时。3)以常法制做石蜡切片(8—12微米厚),粘片,脱蜡,经纯酒精至95%酒精。4)在室温于下液内染1小时。配法:甲苯胺蓝(toluidine blue)0.25克;70%酒精100毫升;浓盐酸     

哺乳动物脑和脊髓灰白质标本制作法

取哺乳动物的新鲜羊脑组织和牛颈部脊髓,先用逐渐增加浓度(75％、85％、96％)的酒精溶液将材料固定,在每一种酒精溶液中要固定3—4天。从酒精溶液中将脑组织和牛脊髓取出,用锋利的刀片切成薄片和小段,再转入1％硫酸铜溶液中浸泡,经半小时后,     

以龙胆紫染硫酸酯多醣类的组织化学意义

甲、方法:1)固定于任何固定液皆可,但以酒精为最合适。石蜡切片,厚3微来。切片脱蜡,降酒精,至蒸馏水。2)以龙胆紫(gentian violet)水溶液1∶250,000或1∶1,280,000染色24小时(即0.25毫升0.1%龙胆紫贮存液加入100毫升蒸馏水内;或以0.1毫升0.1%龙胆紫液加入128毫升蒸馏水内)。3)滤纸吸干切片,然后在亚尼林二甲苯(anilinc-xylene)1∶1或1∶2液内脱色及脱水约5分钟(或稍长),直至紫色不再从切片上脱下为止。以二甲苯洗2—3次,用树胶封片。若染透明质酸(hyaluronic anid)可以甘油封片。     

人结肠切片三种特殊染色的比较

目的比较人结肠组织切片阿利辛蓝AB染色(Alcian Blue)、过碘酸雪夫氏PAS染色(Periodic Acid Schiff)及洋红三种染色方法及镜下特点。方法取人结肠,Carnoy氏固定液固定,对结肠组织进行阿利辛蓝AB染色、PAS染色及洋红染色,光学显微镜下观察染色效果。结果三种染色都能清晰显示结肠组织的结构,尤其对结肠的粘膜层进行了观察。阿利辛蓝染色使结肠上皮吸收细胞的细胞核染为红色,杯状细胞中的黏液染为蓝紫色;洋红染色使结肠上皮吸收细胞的细胞核染为蓝紫色,杯状细胞中的黏液染为红色。结论阿利辛蓝和洋红染色均能清楚显示杯状细胞中的黏液,且染色后的细胞质和细胞核成为互补色,结构清晰,对比明显。