Effet des destruxines A,B et E dans la pathogénèse deMetarhizium anisopliae chez les larves de Coléoptèresscarabaeidae

Résumé L'effet des destruxines A, B et E dans la pathogénèse deMetarhizium anisopliae (Metsch.) Sor. a été étudié chez les larves du 3e stade des scarabéidesCetonia aurata L. etOryctes rhinoceros L. L'expérimentation a consisté à essayer de modifier, en injectant des destruxines, la sensibilité des larves à un inoculum fongique (spécifique ou non spécifique) introduit dans la cavité générale. Les essais de toxicité des destruxines à l'égard des 2 espèces-?tes montrent une détoxification rapide chez les larves deC. aurata et, à l'opposé, un effet cumulatif des injections répétées chez les larves deO. rhinoceros. Dans les éssais pathologiques sur l'espèceC. aurata, l'évolution de la maladie chez les larves contaminées par l'inoculum spécifiqueM.a. 32 n'est pas modifiée par une injection unique de 2–6,6 ou 20 μg de destruxines par g d'insecte ou par 4 injections fractionnées de 2 μg/g à 2 j d'intervalle. En revanche, dans le cas du germe non spécifique,M.a. 51, on observe un effet sensibilisant tardif. Chez les larves deO. rhinoceros, les 3 injections fractionnées de destruxines à la dose de 1 μg/g stimulent l'activité de la souche spécifiqueM.a. 51, puisque le temps létal 50 % d'un inoculum de 10 spores/larve est ramené de 11,2 j à 6,7 j par l'addition des toxines. L'effet des destruxines dans la pathogénèse deM. anisopliae semble donc lié à l'aptitude de l'espèce-h?te à détoxifier ces substances. Ce r?le dépend aussi de la capacité du germe à produirein situ des mycotoxines comme le suggère la sensibilisation tardive des larves deC. aurata au pathotype non spécifique.

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Summary The presence of mycotoxins like destruxins in insects infected by the entomopathogenic hyphomyceteMetarhizium anisopliae (Metsch.) Sor. is well established. In the case of the scarabeid larvae ofCetonia aurata L. and ofOryctes rhinoceros L. contaminated by this fungus, a cytotoxic effect on hemocytes was demonstrated in previous studies. Thus, the role of purified destruxins A, B and E in modifiying the pathogenicity of 2 isolates ofM. anisopliae in these insects was studied. Single and split inoculations of destruxins, either alone or in combination with fungal spore injection were experimented. The difference in action of destruxins applied in split doses, in these 2 host species indicated a rapid detoxification in larvae ofC. aurata as against a cumulative effect inO. riinoceros. The results indicated that the development of the disease inC. aurata larvae, inoculated with the specific strainM.a 32 was notmodified by combined injection of a single dose (2; 6.6 and 20 μg/g of larval weight) or by split dose applications (4 injections of 2 μg/g at 2 days interval). With the non specific strainM.a. 51, a high sensitivity of larvae was seen at a later period after the treatment. InIO. rhinoceros larvae, 3 split applications of destruxins at a dose of 1 μg/g stimulated the activity of the specific strainM.a. 51, since LT 50, which was 11.2 days at a dose of 10 conidia/larva, has been found to be reduced to 6.7 days by addition of the toxins. Thus, the role of desdtruxins in influencing the pathogenicity ofM. anisopliae depends on: (1) the host species and their ability to detoxify destruxins, and (2) the pathotypes and their capacity to produce toxins in their specific or non specific host, as indicated in the case ofC. aurata larvae.