A comparison of the changes in the non‐neuronal cell populations of the superior cervical ganglia following decentralization and axotomy

Transecting the axons of neurons in the adult superior cervical ganglion (SCG; axotomy) results in the survival of most postganglionic neurons, the influx of circulating monocytes, proliferation of satellite cells, and changes in neuronal gene expression. In contrast, transecting the afferent input to the SCG (decentralization) results in nerve terminal degeneration and elicits a different pattern of gene expression. We examined the effects of decentralization on macrophages in the SCG and compared the results to those previously obtained after axotomy. Monoclonal antibodies were used to identify infiltrating (ED1+) and resident (ED2+) macrophages, as well as macrophages expressing MHC class II molecules (OX6+). Normal ganglia contained ED2+ cells and OX6+ cells, but few infiltrating macrophages. After decentralization, the number of infiltrating ED1+ cells increased in the SCG to a density about twofold greater than that previously seen after axotomy. Both the densities of ED2+ and OX6+ cells were essentially unchanged after decentralization, though a large increase in OX6+ cells occurred after axotomy. Proliferation among the ganglion's total non‐neuronal cell population was examined and found to increase about twofold after decentralization and about fourfold after axotomy. Double‐labeling experiments indicated that some of these proliferating cells were macrophages. After both surgical procedures, the percentage of proliferating ED2+ macrophages increased, while neither procedure altered the proliferation of ED1+ macrophages. Axotomy, though not decentralization, increased the proliferation of OX6+ cells. Future studies must address what role(s) infiltrating and/or resident macrophages play in regions of decentralized and axotomized neurons and, if both are involved, whether they play distinct roles. © 2002 Wiley Periodicals, Inc. J Neurobiol 53: 68–79, 2002     

Ultrastructural and cytochemical examination of the nuclear crystalloid inclusions of Olea europaea L. mesophyll cells

Summary The nuclei of mesophyll cells of olive trees contain numerous sizeable crystalloid inclusions. Cytochemical examination using epoxy resin-embedded, semithin-sectioned tissue indicated the presence of proteins and oligoor polysaccharides in these inclusions. Their electron microscopical analysis revealed a crystalline substructure consisting of intersected subunits of high order. The spacing of the lattice fibrils and the angles of intersection were determined and used to establish a model of the unit cell of crystallization. It is suggested that the nuclear crystalloids of olive trees consist of glycoprotein molecules. They differ from the intranuclear crystalloids observed in other species predominantly in the high density of their subunit arrangement.     

Enhancement by N-hydroxysulfosuccinimide of water-soluble carbodiimide-mediated coupling reactions

Water-soluble carbodiimides are frequently employed in coupling or conjugation reactions, e.g., to link a peptide immunogen to a carrier protein. However, their utility is limited by low coupling yields obtained under some conditions. We have found that addition of N-hydroxysulfosuccinimide to such reactions can greatly enhance the yields obtained.     

Mikrospektralphotometrische Untersuchungen zum Speichermechanismus des kationischen Farbstoffes Chrysoidin durch die lebende und tote Pflanzenzelle

Wie aus Elektrophorese- und spektralphotometrischen Untersuchungen hervorgeht, liegt der kationische Farbstoff Chrysoidin G, je nach dem pH-Wert der wäßrigen Farblösungen, als I-, II-, III- und IV-wertiges Kation und elektroneutrales Farbbasenmolekül vor. Von physiologischer Bedeutung ist nur das I-wertige Kation und das Farbbasenmolekül. Die Unabhängigkeit der Absorptionsmaxima wäßriger Farbstofflösungen mit konstantem pH-Wert von der Farbstoffkonzentration deutet darauf hin, daß Chrysoidin keine Assoziate bildet. In organischen Lösungsmitteln ergibt Chrysoidin G je nach dem Grad der Polarität des Solvens und dem pH-Wert der wäßrigen Phase bei Ausschüttelungs-versuchen unterschiedliche Absorptionskurven. Natriumnucleinat bedingt eine negative Metachromasie; die jeweilige Lage des Maximums wird von der Natriumnucleinatkonzentration bestimmt. Rutin übt keinen wahrnehmbaren Einfluß auf das Absorptionsspektrum aus. Nach einer Vitalfärbung von Oberepidermiszellen der Schuppenblätter von Allium cepa mit Chrysoidin G zeigen das diffus gefärbte Plasma und die darin auftretenden gelben Kugeln übereinstimmende Absorptionsspektren mit einem breiten Bandenmaximum bei ? 420 nm. Der lebende Zellkern färbt sich nicht. Der gefärbte volle Zellsaft der Unterepidermis besitzt ein Maximum bei ? 448 nm. Aus der Lage der Absorptionsmaxima und dem Verlauf der Absorptionskurven kann geschlossen werden, daß die Färbung des lebenden Plasmas auf eine Anreicherung des einwertigen Kations und des Farbbasenmoleküls in polaren Lipoiden beruht, während es sich bei der Färbung des fixierten Zellkerns um eine Bindung des Chrysoidins an Nucleinsäuren handelt. Die Vitalfärbung des vollen Zellsaftes mit Chrysoidin G ist nicht auf den Gehalt der Vakuolen an Flavonolen zurückzuführen, sondern hängt vermutlich vom pH-Wert des Zellsaftes ab.