一种简单实用的人工营养液饲养豆蚜的方法

采用经修改的半纯人工饲料配制营养液及自制饲养装置来人工饲养豆蚜Aphis craccivoraKoch。实验结果表明,应用该营养液及自制饲养装置饲养豆蚜)存活率高,且操作简单、饲养装置、条件容易达到,能满足对蚜虫等同翅目昆虫生物测定的要求。     

肝癌肿瘤浸润淋巴细胞（TIL）体外扩增及特性研究

探讨从原发性肝癌（hepatocellular carcinoma,HCC）患者的术后肿瘤组织中分离肿瘤浸润性淋巴细胞（tumor-infiltrating lymphocyte,TIL）,并进行体外大量扩增的方法。在该研究工作中,组织标本来源于术后的肿瘤癌旁组织,经过组织破碎、酶消化后,采用不连续密度梯度离心分离其中淋巴细胞。分离的淋巴细胞先采用大剂量重组人白介素2（IL-2）（2 000 U/mL）进行引发,然后采用同种异体的外周血单核细胞作为饲养细胞进行扩增。针对9例原发性肝癌术后标本,所分离的TIL均能成功进行培养扩增,扩增后细胞数为（1~5.5）×10^9。扩增倍数为111~572。扩增后的TIL,表型检测发现CD3＋细胞的比例为（90.3±9.4）%,CD3＋CD4＋细胞的比例为（24.9±14.1）%,CD3＋CD8＋细胞的比例为（56.4±20.2）%,CD3＋CD56＋细胞的比例为（14.8±12.6）%。杀伤检测结果显示,肝癌TIL对非自体肿瘤细胞系HepG2和Bel-7402有较强的杀伤作用。因此,采用该改良的方法,原发性肝癌的TIL在体外可以成功进行培养扩增,并具有较强抗肿瘤活性,可以作为肝癌术后巩固性免疫治疗的一种手段。     

TRAb在Graves病~(131)I治疗中的临床价值

目的:探讨促甲状腺激素受体抗体(TRAb)在Graves病131I治疗中的临床价值。方法:回顾性分析我院经131I治疗的186例Graves病患者,与70例健康对照组分别于131I治疗前及治疗后3、6、12和18月采用电化学发光免疫分析法(ECLA)动态检测血清TRAb、FT3、FT4、TSH浓度变化,进行统计分析,并计算TRAb的阳性率。结果:70例健康对照组TRAb水平1.09±0.45 IU/L,186例Graves病131I治疗前血清TRAb水平9.95±7.18 IU/L,明显高于健康对照组,两组比较有显著的统计学意义(t=-10.306,P0.001)。131I治疗3月后TRAb水平14.81±10.37 IU/L,明显高于治疗前(t=-5.26,P0.001);131I治疗6月后TRAb水平12.33±8.73 IU/L开始下降,治疗12月后TRAb水平3.14±0.87 IU/L明显降低;治疗18月后TRAb水平1.19±0.45 IU/L与健康对照组比较差异无统计学意义(t=-1.588,P=0.113)。Graves病131I治疗前TRAb阳性率为93.5%,治疗后3、6、12、18个月TRAb阳性率分别为93.5%、79.6%、27.4%和8.6%。结论:Graves病131I治疗中检测TRAb水平具有指导治疗、判断疗效、预测复发等重要的临床价值。     

转基因技术在能源植物育种中的应用

由于能源危机与环境污染问题日益严重,能源植物以其安全、环保、可再生和低成本等特性,成为能源开发的一个热点。随着转基因技术的不断进步,利用转基因技术培育高产、优质、高效新型能源植物新品种也取得了相应的成果。本文简要介绍了能源植物的概念和分类,概述了转基因技术在提高植物总生物量、降低植物木质素的含量、在植物中过表达纤维素降解酶、以及提高油料植物含油量等方面的应用现状,并探讨了该技术在能源植物遗传改良中的应用前景,以期为后续的能源植物新品种培育等研究和应用提供参考。     

以Real-time PCR方法检测耐药幽门螺杆菌中HefABC基因的表达

为了探讨耐药幽门螺杆菌(Helicobacter. pylori)主动外排系统hefA、hefB、hefC基因表达与菌株克拉霉素耐药、阿莫西林耐药以及多重耐药的关系,随机选择H. pylori克拉霉素耐药株、阿莫西林耐药株、敏感株、多重耐药株各10株,利用Real-time PCR方法检测HefABC系统的表达,以成组t检验法对敏感株与各耐药株之间mRNA表达水平进行比较。结果显示,hefA在敏感组、克拉霉素耐药组、阿莫西林耐药组、多重耐药组中的mRNA表达量以2-ΔΔCt表示,分别为0.903 9±0.154 07、1.482 2±0.378 5、1.278 0±0.206 2、2.255 7±0.289 2,克拉霉素耐药组与敏感组比较:t=4.489,p0.05;阿莫西林耐药组与敏感组比较:t=4.631,p0.05;多重耐药组与敏感组比较:t=13.11,p0.05。hefB在敏感组、克拉霉素耐药组、阿莫西林耐药组、多重耐药组中的m RNA表达量以2-ΔΔCt表示,分别为0.075 9±0.015 7、0.636 1±0.162 3、0.906 4±0.127 6、1.149 2±0.305 8,克拉霉素耐药组与敏感组比较:t=10.86,p0.05;阿莫西林耐药组与敏感组比较:t=20.42,p0.05;多重耐药组与敏感组比较:t=11.09,p0.05。hefC在敏感组、克拉霉素耐药组、阿莫西林耐药组、多重耐药组中的m RNA表达量以2-ΔΔCt表示,分别为0.128 2±0.054 5、1.319 4±0.272 4、0.683 0±0.185 0、3.480 2±0.932 6;克拉霉素耐药组与敏感组比较:t=13.56,p0.05;阿莫西林耐药组与敏感组比较:t=9.096,p0.05;多重耐药组与敏感组比较:t=11.35,p0.05。研究结果证实,H. pylori中外排系统hefA、hefB、hefC的高表达与菌株对克拉霉素耐药、阿莫西林耐药及多重耐药均有关。