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A controlled environment experiment investigated whether thered:far-red (R:FR) ratio of light at the apical bud of the mainstolon could alter plant morphogenesis in clonal cuttings ofwhite clover (Trifolium repens L.) The apical bud included theapical meristem, five to six developing leaf primordia withassociated axillary bud primordia and stipules and the firstemerged folded leaf until development was greater than 0·3on the Carlson scale. Three light regimes were imposed on theapical bud by collimating light from R or FR light-emittingdiodes so that the R:FR ratio of light incident at the apicalbud was set at 0·25, 1·6 or 2·1, withoutsignificantly altering photosynthetically active radiation.The effect of these light regimes on white clover seedling growthwas also tested. At a low R:FR ratio seedling hypocotyl and cotyledon lengthswere significantly longer. However, with the cuttings, the lighttreatments did not alter node appearance rate or internode lengthof the main stolon, petiole length, area of leaves or totalshoot dry matter. There was one significant photomorphogeneticresponse in the cuttings, a delay of 0·5 of a phyllochronin the appearance of branches from axillary buds in the lowR:FR ratio treatment relative to the other treatments. Wherebranch appearance was delayed plants had fewer branches. Thisdifference could be ascribed solely to a delay in branch appearanceas there were no significant treatment effects on either theinitiation of axillary bud primordia within the apical bud,the probability of branching or on the rate of growth of branchesafter appearance. Because treatment of the apical bud inducedonly one of the many previously observed responses of whiteclover to a decrease in the R:FR ratio of light, we concludethat other plant organs must also sense the quality of incidentlight.Copyright 1994, 1999 Academic Press White clover, Trifolium repens, apical bud, light quality, red:far-red ratio, light-emitting diode, branching, axillary buds, photomorphogenesis  相似文献   
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Nisin stimulated oxygen consumption by nongrowing, glucose-metabolizing Staphylococcus aureus and Escherichia coli cells, indicating a protonophore mode of action. A similar stimulation in E. coli cells osmotically stressed to disrupt the outer cell membrane confirmed the cytoplasmic membrane as the site of nisin action and showed that nisin uptake was not prevented by the outer membrane.  相似文献   
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