Untersuchungen über den osmotischen Wert polyploider Pflanzen

Zusammenfassung In der Mehrzahl der untersuchten Fälle (insgesamt über 1000 Einzelmessungen) wurden die osmotischen Werte der Tetraploiden niedriger gefunden als die der Diploiden, doch sind die Unterschiede im allgemeinen gering. Junge Pflanzen hatten immer niedrigere 4n-Werte; bei alten Pflanzen und bei Pflanzen unter extremen Kulturbedingungen waren aber vielfach die Werte der 4n höher. Es wird die Hypothese aufgestellt, daß niedrigere osmotische Werte der Tetraploiden den Normalzustand darstellen, daß aber die Polyploiden wie in anderen Eigenschaften, so auch in ihrer Osmotik variabler sind und unter dem Einfluß von Außen-bedingungen ihre osmotischen Werte stärker modifizieren.Unter physiologischen Zwangsbedingungen (Trockenkultur, Pfropfungen) wurde an den Tetraploiden eine unter den gegebenen Verhältnissen zweckmäßige Erhöhung ihrer osmotischen Werte über das Niveau der 2n beobachtet. Gegen Trockenklima erwiesen sich die untersuchten Tetraploiden im Vergleich mit den Diploiden resistenter.Irgendwelche artspezifischen Eigentümlichkeiten konnten im Rahmen der untersuchten Pflanzen nicht festgestellt werden.Mit 6 Textabbildungen.     

Anwendung der automatisierten Festphasenextraktion bei der Bestimmung von Ochratoxin A

For some foodstuffs, determination of the mycotoxin ochratoxin A (OTA) requires time consuming clean up by means of solid phase extraction (SPE). Therefore a system for automated SPE was tested for cleaning up roasted coffee as a possible way of shortening preparation time. Validation of the method in accordance to the so called “Concept '98” led to a LOD of 0.2 μg/kg and a recovery rate of 92%. By using the described procedure with samples of roasted coffee the OTA contents varied between the LOD and 3.4 μg/kg. This method was also used to determine ochratoxin A in liquorice roots, ginger and valerian.

Presented at the 26^th Mykotoxin Workshop in Herrsching, Germany, May 17–19, 2004     

The activation of the decapping enzyme DCP2 by DCP1 occurs on the EDC4 scaffold and involves a conserved loop in DCP1

The removal of the 5′-cap structure by the decapping enzyme DCP2 and its coactivator DCP1 shuts down translation and exposes the mRNA to 5′-to-3′ exonucleolytic degradation by XRN1. Although yeast DCP1 and DCP2 directly interact, an additional factor, EDC4, promotes DCP1–DCP2 association in metazoan. Here, we elucidate how the human proteins interact to assemble an active decapping complex and how decapped mRNAs are handed over to XRN1. We show that EDC4 serves as a scaffold for complex assembly, providing binding sites for DCP1, DCP2 and XRN1. DCP2 and XRN1 bind simultaneously to the EDC4 C-terminal domain through short linear motifs (SLiMs). Additionally, DCP1 and DCP2 form direct but weak interactions that are facilitated by EDC4. Mutational and functional studies indicate that the docking of DCP1 and DCP2 on the EDC4 scaffold is a critical step for mRNA decapping in vivo. They also revealed a crucial role for a conserved asparagine–arginine containing loop (the NR-loop) in the DCP1 EVH1 domain in DCP2 activation. Our data indicate that DCP2 activation by DCP1 occurs preferentially on the EDC4 scaffold, which may serve to couple DCP2 activation by DCP1 with 5′-to-3′ mRNA degradation by XRN1 in human cells.