酵母菌质粒遗传研究进展

酵母菌做为真核微生物的代表已被广泛应用于分子遗传学研究。酵母菌除具备真核生物所共有的生物学特性外,它又是单核单细胞生物。因此凡是细菌分子遗传学研究中所使用的技术。基本上都适用于酵母菌的分子遗传研究。酵母菌质粒的分子遗传学在最近     

酵母菌原生质体融合研究进展

自从由酵母菌制备分离原生质体的首篇报道问世以来,研究者们对酵母菌原生质体的制备、分离、再生、融合等课题进行了系统的研究。近年来又利用这一技术进行了酵母菌的转化;种内、种间和属间融合;核、线粒体等转移的研究;业已取得可喜的结果,并探     

酿酒酵母原生质体的融合

原生质体融合技术开始于动植物细胞,特别是Willin等报道了PEG有助于高等植物细胞原生质体融合以后,这一技术广泛地应用于植物、微生物原生质体的融合和动物细胞的融合。原生质体的制备、培养、融合和发育为研究细胞分化、膜结构与功能、定向育种等生物学     

酵母菌的载体系统研究进展

由于酵母菌特别是酿酒酵母是单细胞生物,具生长快、易于遗传操作、能对外源蛋白进行翻译后加工和修饰、不产生有毒产物等优点,被认为是表达外源蛋白的最适受体菌。随着重组DNA技术的发展,酿母菌的转化和载体系统的研究已取得很大的进展,已有许多细菌、真菌和高等动植物的基因在酿酒酵母中克隆和表达,已应用酵母工程菌来生产一些重要的外源蛋白,并显示出巨大的优越性。本文着重介绍酵母菌载体系统的研究进展。根据其在酵母菌遗传工程中的应用,可将酵母菌载体系统分为普通的克隆载体和特殊用途的载体两大类。回酵母菌的克隆载体依据…     

具有a-淀粉酶分泌活性以及低双乙酰产量的啤酒酵母工程菌的构建

扣囊复膜酵母(Saccharomycopsis fibuligera)因具有较强的a-淀粉酶以及葡聚糖酶活性, 使其在以淀粉为唯一碳源的培养基上能够良好的生长。从其基因组中克隆了a-淀粉酶的编码区, 构建了由酵母磷酸甘油酸激酶基因(PGK1)启动子、酿酒酵母a-因子信号序列以及扣囊复膜酵母a-淀粉酶基因编码序列组成的基因表达盒。将该表达盒插入到质粒pPLZ-2的ILV2基因序列内部, 使其两翼具有ILV2基因的同源区。将该表达盒通过同源重组的方式整合到啤酒酵母工业菌株YSF-5的a-乙酰乳酸合成酶(AHAS)基因ILV2内部。在以淀粉为唯一碳源的培养基上进行转化子的筛选。通过多对引物PCR、a-淀粉酶活性以及AHAS活性分析对转化子进行鉴定, 得到一株具有a-淀粉酶分泌表达活性、较低AHAS活性, 并且发酵液中双乙酰产量也相对较低的啤酒酵母工程菌。该菌株在非选择压力条件下连续培养50代后仍然保持其遗传稳定性。还对pH、温度以及金属离子对该转化菌株的a-淀粉酶活性的影响进行了研究。由于所构建的菌株不含有非酵母来源的DNA, 所以生物安全性相对较高, 对酵母育种以及啤酒生产工业都具有较为重要的意义。     

低双乙酰抗老化啤酒酵母工程菌的构建

用来源于啤酒酵母的γ-谷氨酰半胱氨酸合成酶基因（GSH1）和铜抗性基因（CUP1）取代质粒pLZ-2中α-乙酰乳酸合成酶基因（ILV2）内部约2.3kb的DNA片段,构建成重组质粒pICG。限制酶酶切质粒pICG后获得在基因GSH1和CUP1两端含有ILV2序列的6.0kb的DNA片段。用此片段转化啤酒酵母YSF31,得到铜抗性高的转化子。并通过PCR和α-乙酰乳酸合成酶（AHAS）活性测定筛选到酵母工程菌。小试实验结果表明酵母工程菌谷胱甘肽含量比受体高34％,而双乙酰含量是受体的75％。其他发酵指标并没有发生改变。中试实验表明酵母工程菌发酵周期缩短3d,而且成品啤酒的保鲜时间延长50％。由于DNA操作过程中没有外源基因介入,因此啤酒酵母工程菌为生物安全的自克隆菌株,具有重要的实际应用价值。     

FLO1基因靠近3'端重复序列对酵母菌絮凝蛋白功能的调控

摘要:【目的】研究絮凝基因FLO1 中靠近3'端重复DNA 序列缺失对絮凝蛋白Flo1功能的影响,为遗传稳定的最小絮凝功能基因的构建及酵母菌絮凝特性的可控改造提供理论依据。【方法】通过融合PCR 的方法得到FLO1内靠近3'端重复DNA 序列B、C和D全部缺失的衍生基因FLO1bcd,比较FLO1及FLO1bcd在非絮凝酵母细胞中表达后,菌株在不同条件下絮凝特性的差异。【结果】与表达完整絮凝基因FLO1的酵母菌株YSF1相比,FLO1内靠近3'端重复DNA 序列全部缺失的酵母菌株YSF1bcd的絮凝强度仅略有降低,而且其絮凝特性对钙离子的依赖性、金属离子的敏感性及乙醇敏感性均没有明显变化,但对环境pH以及温度的变化表现出更广泛的适应性,受甘露糖抑制的敏感性也有所降低。【结论】FLO1 中重复DNA序列B、C和D全部缺失与单独缺失C或D一样可以提高絮凝蛋白的构象和功能稳定性,使酵母细胞在极端酸碱环境下仍然表现出明显的絮凝特性;这些重复序列的完全缺失对其他絮凝特性没有明显影响。因此可以通过重复序列删减策略构建遗传稳定的最小絮凝功能基因,为絮凝特性在发酵工业及环境修复方面的可控应用奠定理论 基础。     

从酵母菌中分离纯化超氧化物岐化酶

超氧化物岐化酶(SOD)由于具有消除氧自由基的功能,在医药、保健品中具有重要应用价值。我国目前SOD产品主要是从牲畜血液中提取,这个方法所用原料有限,SOD质量不稳定。80年代后,美国和日本先后开发了用发酵法生产SOD,大大地降低了生产成本。但由于SOD为胞内蛋白,因而发酵法产生SOD后提取工艺极为复杂,至少需要六步,一般经过细胞破碎、离心、盐析、透析、离子交换层析(2～3次)和凝胶层析等才能达到比活>3000u/mg。由于细胞破碎主要为机械法(如球磨和超声波法),胞内所有蛋白都释放出来,SOD比活只有10～30u/mg,因而后续SOD纯化     

固定化酵母酿造啤酒

用固定在藻朊酸钙凝胶珠中的葡萄汁酵母连续酿造啤酒。当把含有8.5mg/L溶解氧的短期发酵的麦芽汁以120ml/小时的流量用泵打进装填了固定化酵母珠(总柱体积的54％)的2.5L柱反应器的底部,共形成2.25mg/L的二乙酰。但是,当麦芽汁含有0.04mg/L的溶解氧时,总共仅形成0.05mg/L的二乙酰。基于这些结果,发展了一个结合固定化酵母反应器的新发酵体系用于快速生产含低二乙酰前体的优质啤酒。     

一种快速确定一个克隆DNA片段中的酵母核基因的方法

我们建立了一种用来确定在4-5kb那样大的DNA片段上携带一个克隆基因的界线的方法。这种方法由下列步骤组成。用四核苷酸识别序列核酸内功酶处理产生两组限制性消化产物以及起始于这种DNA片段的两个末端的任何一端都是用酵母转化来测定它们的互补能力。然后利用两个最短互补片段的重迭来确定这个基因。