一种高质量麦冬总RNA的提取方法

本方法采用CTAB作为去污剂,分别用氯仿/异戊醇反复抽提、LiCl沉淀,以去除蛋白质、碳水化合物和次生代谢物等杂质,用DNase处理去除DNA污染,最后用无水乙醇沉淀获得总RNA。该方法不仅能获得完整性好、纯度高的总RNA,而且操作简单、成本低廉、RNA产率高,对富含次生物质的中草药材植物组织总RNA的提取具有借鉴意义。     

一种提取高质量油菜种子和种皮RNA的方法

提取高质量的RNA是从基因表达水平上研究油菜种子和种皮发育的必要条件。现有方法因为油菜种子脂肪、多酚和多糖,难以快速获得完整、高纯度的油菜种子总RNA。本试验针对油菜种子和种皮特点,利用苯酚-氯仿抽提后用无水乙醇沉淀RNA,建立了在油菜种子和种皮中快速提取高质量总RNA的提取方法,电泳分析表明28S rRNA亮度约为18S rRNA的2倍;紫外分光光度计检测A260/A280介于1.8～2.0之间。用该法分离的RNA,已成功用于RT-PCR、Northern blot分析和基因全长的克隆等分子生物学研究。     

东亚砂藓(Rhacomitrum canescens)RNA提取方法的比较和改进

方法:以东亚砂藓为材料,用CTAB法、热硼酸盐法和改良的SDS/酸酚法提取东亚砂藓总RNA,并采用3种方法进行沉淀,从提取RNA的纯度、完整性、产量、耗时和RT-PCR效果等分析确定适用于东亚砂藓总RNA提取的方法。结果:研究表明:CTAB法提取的RNA 28S rRNA明显缺失,泳道模糊不清,杂质多,热硼酸法和改良的SDS/酸酚法提取RNA 28S rRNA,18S rRNA条带清晰,OD260/OD280都在1.7以上,纯度高,但热硼酸法提取出的RNA有DNA污染,RNA的含量(15.68~35.2μg.g-1)低于SDS/酸酚法提取RNA的含量(46.5~51.9μg.g-1)3种沉淀方法比较认为无水乙醇配合LiCl沉淀RNA节省时间,反转录和RT-PCR效果好。结论:改良的SDS/酸酚法适合东亚砂藓RNA的提取。     

自然干燥紫萼藓总RNA提取方法

介绍一种适合富含酚类、萜类等次生物质的干燥紫萼藓的总RNA的提取方法—SDS/酸酚法。采用SDS做为去污剂,用水饱和酚、氯仿和异戊醇进行抽提以去除蛋白、酚类等次生物质,醋酸钾和无水乙醇去除多糖等物质,最后LiCl沉淀获得总RNA。该方法不但获得了完整性好和纯度高的RNA,而且操作简单,成本也较低,对其他富含酚类、萜类等次生物质的干燥植物组织的总RNA的提取具有借鉴意义。     

不同沉淀方法处理胶乳总RNA对基因扩增效率的影响

为探明沉淀方法对胶乳总RNA提取及PCR扩增效率的影响,并寻求较好的RNA沉淀方法,针对胶乳中蛋白、多糖、橡胶粒子含量高的特点,在本实验室改进的SDS法的基础上,分别用Li Cl、Na Cl+异丙醇、Na Cl+Na Ac+无水乙醇和Na Ac+无水乙醇对橡胶树胶乳总RNA进行沉淀,并对所得RNA的完整性、纯度、含量和RT-PCR扩增效率进行比较。结果表明,4种方法均可获得完好的RNA,但其纯度、含量和PCR扩增效率随方法不同而有所差别,其中Na Cl+Na Ac+无水乙醇沉淀的橡胶树胶乳总RNA纯度、产率和18S、REF基因扩增效果均较高,故认为用Na Cl+Na Ac+无水乙醇沉淀胶乳总RNA是一种较为有效的方法。     

仿刺参体壁总RNA提取方法的建立

目的:通过对TRIzol一步法进行改进,建立一种从富含胶原蛋白、多糖及色素的仿刺参体壁提取总RNA的有效方法。方法:样品在液氮中研磨并用TRIzol匀浆后再进行抽提;对TRIzol一步法提取的总RNA进行DNaseⅠ消化和酚氯仿抽提,用2.5mol/L的醋酸钾沉淀,并加入适量糖原(10mg/mL)与RNA共沉淀。结果:琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度法以及RT-PCR检测结果表明,改进的方法能够有效去除基因组DNA、蛋白、多糖及色素的污染,RNA的产率提高。结论:制备的总RNA纯度高,完整性好,能够满足mRNA差异显示RT-PCR等分子生物学研究的要求,是一种提取仿刺参体壁及其他富含黏多糖、胶原蛋白和色素的动物组织总RNA的有效方法。     

一种改进的富含多糖的芒果组织中完整总RNA提取方法

2次用0.25体积无水乙醇和0.11体积的5 mol·L-1醋酸钾溶液(pH 4.8)去除多糖,并用硼酸和聚乙烯吡咯烷酮去除多酚,成功地从0.2～0.3 g富含多糖和多酚的芒果嫩绿色、砖红色和转绿期的叶片以及果皮和果肉组织中提取到完整总RNA,所提取的RNA在体外能成功进行反转录合成cDNA.此法的全过程共需要22～24 h.     

从少量培养细胞中同时提取微量蛋白和RNA的方法探讨

为建立一项从少量培养细胞中同时提取RNA和蛋白质的技术 ,向 2～ 3× 10 5细胞中加入 1ml自制RNA提取试剂 ,RNA抽提后剩下的中下两相 ,用异丙醇、盐酸胍和无水乙醇抽提蛋白质 .同时用进口Tripure试剂、经典的异硫氰酸胍 苯酚 氯仿一步抽提RNA法和分子克隆实验手册裂解液制备蛋白质的方法 ,作为对照 .自制试剂提取的总RNA ,18S、2 8S清晰可见 ,2 8S比 18S带亮度强 2～ 3倍 ,带与带之间无拖尾现象 ,5S隐约可见 ,而且成功地进行了Northern印迹、RT PCR分析 ,与经典方法差异不大 ;用此法所提蛋白质 ,经SDS PAGE检测 ,蛋白分离效果很好 ,无杂质 ,且Western印迹检测Giα蛋白 ,可见一条清晰的特异带 ,与常规提取蛋白质 ,结果相似 .从微量细胞中同时提取的RNA和蛋白质 ,得率高、纯度好 ,具有化学完整性和生物学性质     

一种高效经济的高质量植物RNA提取方法

建立了一种高效经济的植物RNA提取方法.在提取缓冲液中加入蔗糖、氯化钾和镁离子以提供对RNA分子的保护.破碎后的细胞于提取缓冲液中裂解后,用酚/氯仿变性并去除内源RNA酶和其他蛋白质,而后用pH 5.6 的NaAc沉淀RNA.用该方法提取RNA的得率较高,经电泳检测,RNA的完整性很好.RNA印迹分析和RT-PCR也都得到很好的结果.该方法还使实验成本大大降低.     

狗尾草总DNA的提取与纯化研究

狗尾草杂草中富含多糖和酚类物质,而用已报道的提取方法均难得到高纯度DNA。为此,对提取植物DNA的SDS法进行了改进。用4．5ml细胞提取液,1．0ml饱和NaAc溶液,0．10倍样液体积的无水乙醇,氯仿／异戊醇溶液与样液体积比为0．80,与样液等体积的酚／氯仿／异戊醇溶液(28：21：1)和异丙醇,在65℃水浴加热60min,可从1．0g狗尾草中提取780μg纯DNA。     

一种适用范围广的总RNA提取方法

介绍一种RNA提取方法,该方法以SDS、氯仿和Tris苯酚为主要提取试剂,以LiCl和乙醇为RNA沉淀试剂。分别以柽柳(木本植物)、星星草(草本植物)、天牛（昆虫）、酿酒酵母和白腐菌（真菌）为RNA提取材料,用该方法成功地提取出了它们的总RNA。获得的RNA条带清晰,A₂₆₀/A₂₈₀ 在1.8以上。通过对LiCl和乙醇沉淀RNA的效果分析表明,该方法可在10 min内完全沉淀RNA,同时也可以同时获得纯度较高的DNA。提取的RNA质量可满足cDNA文库构建,基因芯片探针标定和RT-PCR等对RNA质量要求较高的分子生物学操作,说明这是一种应用范围广的RNA提取方法。     

大青杨叶片总RNA的快速提取方法

目的:寻求快速提取大青杨叶片总RNA的方法。方法:分别用改良CTAB法、改良SDS法、改良TRIzol法及某公司总RNA提取试剂盒提取大青杨叶片总RNA,并用紫外光谱分析、凝胶电泳方法对提取的总RNA进行鉴定。结果:用改良CTAB法和改良TRIzol法能有效地去除蛋白及多糖,提取到的总RNA纯度高,D260nm/D280nm分别为2.05和1.78,RNA的完整程度优于试剂盒法。结论:改良CTAB法为大青杨叶片总RNA的最佳提取方法。     

条斑紫菜丝状体总RNA提取方法比较

目的:为了获得质量较高的条斑紫菜丝状体总RNA,对几种常用提取方法进行研究。方法:以条斑紫菜自由丝状体为材料,比较了用异硫氰酸胍法、CTAB法、SDS/酚法、TRIzol法、RNAplant法提取的RNA的质量和纯度。结果:异硫氰酸胍法提取RNA的成本低,但纯度不高;CTAB法产率较小,且不能完全去除多糖或蛋白质;SDS/酚法未能获得完整的RNA;TRIzol法未能见到5SrRNA条带,且带有杂带;而RNAplant法提取RNA的质量好、纯度高、提取效率高,其D260nm/D280nm值为1.836,经逆转录得到的双链cDNA扩增产物长度在200bp以上。结论:实验结果表明RNAplant法更适于条斑紫菜丝状体总RNA的提取。     

何首乌总RNA提取方法的比较及改进

目的：探讨不同提取方法对提取何首乌总RNA的质量影响,寻找适于何首乌成熟叶组织RNA的提取方法。方法：以何首乌成熟叶组织为材料,采用SDS／酸酚法、常规CTAB法及改良的TRIzol试剂法分别进行实验,并对所提取RNA的质量进行验证。结果：采用3种方法都能提取出RNA,但质量差异较大。其中改良的TRIzol试剂法能有效抑制次生物质的影响,提取的RNA产量可达70-110μg／g,纯度高于其他2种方法,D260nm／D280nm值为1．85～1．97。结论：改良的TRIzol试剂法操作简便,提取的RNA完整性和纯度较高,可以满足下一步实验的要求。     

Rapid and Reliable Method of Extracting DNA and RNA from Sweetpotato, Ipomoea batatas (L). Lam

A quick, simple and reliable method of extracting DNA from sweetpotato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) has been developed. The method was applied successfully for extraction of total DNA from leaves and total RNA from leaves and various tissues. The yield of DNA extracted by this procedure was high (about 1 mg/g leaf tissue). The extracted DNA was completely digested by restriction endonucleases indicating the absence of common contaminating compounds. The absorbancy ratios of A260/A230 and A260/A280 of isolated RNA were approx. 2 and the yield was about 0.2 mg/g fresh wt. CIPK and tublin genes were successfully amplified by RT-PCR, suggesting the integrity of isolated RNA. The total DNA and RNA isolated by this method was of sufficient quality for subsequent molecular analysis.     

用改良CsCl密度梯度离心法提取石蒜叶片和鳞茎总RNA

石蒜[Lycoris radiata（L’Her．）Herb．]是重要的药用植物,其次生代谢产物加兰他敏（galantamine）在临床上的应用非常广泛,是治疗阿尔茨海默氏病的首选药物之一。尽管有关加兰他敏化学合成途径已有许多报道,但由于纯化学合成的成本太高,目前仅限于实验室合成,尚不能用于工业化生产。提高石蒜本身的加兰他敏含量是获得加兰他敏最为经济和环保的方法。因此,研究加兰他敏生物合成的分子机制对于提高其含量具有重要意义。     

Isolation of RNA of high quality and yield from <Emphasis Type="BoldItalic">Ginkgo biloba</Emphasis> leaves

An improved protocol was developed to isolate total RNA in good yield and integrity from Ginkgo biloba leaves containing high levels of flavonoid glycosides, terpene lactones, carbohydrates and polyphenolic secondary metabolites. Polyvinylpolypyrrolidone at 2% and β-mercaptoethanol at 4% were added to the standard CTAB extraction buffer and, after chloroform and phenol extraction, the pellet obtained by ethanol/acetate precipitation was washed and a second phenol/chloroform extraction was introduced to remove co-precipitated polysaccharides. Both A₂₆₀/A₂₃₀ and A₂₆₀/A₂₈₀ absorbancy ratios of isolated RNA were around 2 and the yield was about 0.4 mg g^--1 fresh weight. At least seven distinct rRNA bands were detected by denaturing gel electrophoresis. Sharp hybridization signals were obtained from Northern blots with both nuclear and plastid gene probes. Two gene fragments: nuclear-encoded cab and chloroplast encoded rbcL were successfully amplified by RT-PCR, suggesting the integrity of isolated RNA. The total RNA isolated by this protocol is of sufficient quality for subsequent molecular applications.     

An optimized preparation method to obtain high-quality RNA from dry sunflower seeds

In an attempt to isolate high-quality, intact total RNA from sunflower (Helianthus annuus) seeds for investigation of the molecular mechanisms of mutations, we tested various procedures, using kits, including RNAiso Plus, RNAiso Plus+RNAiso-mate for Plant Tissue, Trizol, and the Qi method, but no high-quality total RNA of high integrity was obtained with any of these methods, probably due to the high content of polyphenols, polysaccharides, and secondary metabolites in mature sunflower seeds. Modifications were made to the Qi method. To avoid polyphenol oxidation, frozen dry seeds free of the seedcase were ground in a mortar with an equal amount of PVP30, and the fine ground powder was transferred to an extraction buffer with 2% PVP30 (w/v), 5% β-mercaptoethanol (v/v) and LiCl (8 M). A sample homogenate was extracted with chloroform prior to acidic phenol-chloroform extraction. The total RNA was precipitated with 1/4 volume of NaAc and 2 volumes of absolute ethanol to prevent contamination by polysaccharides. The yield of total RNA was 29.95 μg/100 mg husked dry seeds; the ratios of A260/A230 and A260/A280 were 2.44 and 2.09, respectively. Electrophoretic analysis clearly showed 28S and 18S ribosomal RNA bands. Using the extracted RNA, a fragment of the actin gene was successfully expressed by RT-PCR. This modified protocol is suitable for isolating high-quality total RNA from sunflower seeds for molecular research.