何首乌愈伤组织诱导和植株再生

1　植物名称　何首乌 (Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍｍｕｌｔｉｆｌｏｒｕｍ)。2　材料类别　蒙山阳坡路旁野生植株上的嫩芽。3　培养条件　诱导愈伤组织培养基 :(1 )ＭＳ 6 ＢＡ 1ｍｇ·Ｌ-1(单位下同 ) ＮＡＡ 1 ;(2 )ＭＳ 6 ＢＡ 2 ＮＡＡ 1 ;(3) 1 /2ＭＳ ＮＡＡ 0 .3;(4) 1 /2ＭＳ 2 ,4 Ｄ 0 .1 ;(5 ) 1 /2ＭＳ 2 ,4 Ｄ0 .3;(6 ) 1 /2ＭＳ 2 ,4 Ｄ 1 ;(7)ＭＳ 6 ＢＡ 3 2 ,4 Ｄ 1。芽分化培养基 :(8)ＭＳ 6 ＢＡ 1 ;(9)ＭＳ 6 ＢＡ 2 ;(1 0 )ＭＳ 6 ＢＡ 5 ＮＡＡ 0 .1 ;(1 1 )ＭＳ 6 ＢＡ 2 ＮＡＡ 0 .4;(1 2 …     

月季愈伤组织的诱导及植株再生

以可在黑龙江地区露地越冬的5个现代月季（Rosa chinensis）品种为实验材料,分别以其无菌苗的叶片和茎段为外植体,研究了愈伤组织诱导及植株再生方法。实验结果表明：5个寒地月季品种的叶片和茎段均可诱导出愈伤组织,2,4-D诱导愈伤组织的效果较好,高浓度的细胞分裂素不适合用于月季叶片和茎段愈伤组织的诱导;TDZ在月季愈伤组织分化培养过程中具有重要作用,光照培养可促进月季愈伤组织的分化,愈伤组织的分化能力随着继代次数的增加呈下降趋势。该实验成功地从2004-8和2004-9（2个月季品种）愈伤组织中诱导出再生植株,其愈伤组织的分化率分别为45%和38%。     

木锉芦荟愈伤组织的诱导和植株再生

1 植物名称木锉芦荟(Aloe humilis). 2 材料类别幼嫩叶片,带腋芽并已木质化的茎段(粗约1 cm). 3 培养条件愈伤组织诱导与分化培养基:(1)MS+KT 2.9～3.1 mg·L-1(单位下同)+IBA 1;(2)MS+KT 3+IBA 2;(3)MS+KT 2+IBA 2.腋芽萌生培养基:(4)MS+ZT 0.4～ 0.7+IBA 1.生根培养基:(5) 1/2MS+KT3+IBA 1.5～2;(6) 1/2MS+ZT 0.5+IBA 1.2～2.以上培养基均附加3%蔗糖,0.6%琼脂,pH 5.4～5.8,培养温度为 (25±2)℃,光照度 1 500～2 000 lx,光照12 h·d-1.     

枇杷叶荚蒾的愈伤组织诱导及植株再生

以枇杷叶荚蒾幼叶为外植体,MS为基本培养基,研究不同种类和浓度的植物生长调节物质对愈伤组织诱导、分化及生根的影响,建立了枇杷叶荚蒾再生体系。结果表明:枇杷叶荚蒾最佳灭菌组合为75%酒精预处理20s,再用0.1%HgC12浸泡12min;最佳愈伤组织诱导培养基为MS+6-BA1.0mg·L-1+NAA0.25mg·L-1+2,4-D1.0mg·L-1,诱导率最高达92%;最适芽分化培养基为MS+6-BA1.5mg·L-1+NAA0.2mg·L-1,分化率达87.25%;适宜的生根培养基为1/2MS+NAA1.0mg·L-1,生根率达85%。     

罗布麻愈伤组织诱导及植株再生

以罗布麻(Apocynum venetum L.)当年的成熟种子和5周龄的幼苗叶片为外植体,研究了不同激素组合、暗培养对愈伤组织及植株再生的影响.结果表明,幼苗作外植体诱导愈伤的最佳培养基为添加1.0 mg/L 6-BA 0.2 mg/L IBA的MS培养基;继代培养中1.0 mg/L 6-BA与0.2 mg/L IBA组合愈伤致密而生长迅速,长时间培养硬化的愈伤组织可用添加0.5 mg/L 6-BA和0.1 mg/L IBA培养基和初期暗培养获得大量质地疏松、增殖迅速的愈伤组织;再生苗诱导以0.5 mg/L 6-BA 0.2 mg/L IBA组合为佳;1/2MS附加NAA 0.6 mg/L为适宜的生根培养基,初步建立了罗布麻离体再生体系.     

帝王秋海棠愈伤组织的诱导和植株再生

1植物名称帝王秋海棠(Begonia imperialis Lem.)。2材料类别幼嫩叶片、茎段(粗约1cm)。3培养条件愈伤组织诱导与分化培养基:(1)MS 6-BA 1.0mg·L-1(单位下同) NAA 0.1;(2)     

拟南芥胚愈伤组织诱导和植株再生

CullusInductionandPlantletRegenerationinEmbryoExplantsofAra－bidopsisthalianaLIXiU-Ru(BeijingAgriculturalCollege,Beijing102206)##D1植物名称拟南芥（Arabidopsisthaliana）。2材料类别胚。3培养条件（1）愈伤组织诱导培养基：B5或1／2MS＋2,4－D0．5mg·L－1（单位下同）＋BA0．05十2％蔗糖或葡萄糖;（2）诱导生芽培养基：B5、MS或1／2MS＋2,4-D0．05＋BA0．5＋3％蔗糖;（3）诱导生根培养基：1／2MS＋2,4-D1．0。将种子表面消毒后,接种在B5培养基上,1天后剥胚,将胚接种在培养基（1）上进行愈伤组织诱导。…     

柚木无性系愈伤组织诱导及植株再生

以柚木优良无性系71-14组培苗节间茎段为材料,MS 为基本培养基,采用正交设计对6-BA、IBA、TDZ、NAA 等4个生长调节剂各4水平进行愈伤组织诱导,并以最佳组合使用不同浓度的 TDZ 进行柚木愈伤组织再生.结果表明：TDZ 对形成具再生能力的致密型愈伤组织影响最大,低浓度水平的 TDZ 和6-BA 更易形成致密型愈伤组织;以愈伤组织大小、诱导率和致密型所占比例采用隶属函数法评定得出最优的愈伤组织诱导培养基为 MS＋0．9 mg·L-16-BA＋0．04 mg·L-1 IBA＋0．02 mg·L-1 TDZ＋0．8 mg·L-1 NAA,愈伤组织诱导率达80．78％、平均直径1．65 cm,获致密型愈伤组织83．0％;得出优化的再生培养基为 MS＋0．132 mg·L-1 TDZ,分化率为34．22％;初步建立了以茎段为外植体的柚木优良无性系71-14的再生体系,为柚木转基因技术的研究提供技术支撑.     

莲胚愈伤组织诱导及植株再生的研究

关于莲胚组织培养国内外有过研究,但迄今利用组织培养技术从莲胚诱导愈伤组织形成再生植株的成功例子尚未见有报道。     

芝麻愈伤组织诱导与植株再生体系的建立

以芝麻栽培种(Sesamum indicum, 2n=26)、野生种(S. radiatum, 2n=64; S. schinzianum, 2n=64)及其远源杂交后代(S. schinzianum × S. indicum)为材料, 研究了不同基因型、外植体类型、激素种类及其浓度对芝麻愈伤组织诱导及植株再生的影响, 建立了芝麻愈伤组织诱导及高频植株再生的技术体系。结果表明, 6-BA/NAA激素组合有利于绿色紧密型愈伤组织的形成及分化; 最佳愈伤组织诱导及分化培养基为MS+ 0.1 mg·L^–1NAA + 2.0 mg·L^–16-BA+ 30 g·L^–1蔗糖。在该培养条件下, 野生种下胚轴愈伤组织的诱导率最高为97.50%, 分化率为94.02%; 栽培种下胚轴愈伤组织的诱导率最高为40.60%, 分化率为8.16%; 远缘杂交后代幼胚外植体愈伤组织的诱导率最高为46.67%, 分化率为89.29%。该研究结果为芝麻转基因技术体系的建立及新种质创制奠定了基础。     

大花银莲花愈伤组织诱导及再生体系的建立

为建立野生大花银莲花(Anemone silvestris)组培再生体系,分别以无菌苗上、下胚轴、叶片和叶柄为外植体,探讨不同浓度植物生长调节剂对不同外植体的愈伤组织诱导、不定芽分化、增殖与生根的影响。结果表明, 4种外植体均可诱导出不定芽,其中上胚轴诱导效果最佳,其在1/2MS+2.0mg·L^–1 6-BA+0.1mg·L^–1 NAA培养基中诱导率最高,为86.67%;最适增殖培养基为1/2MS+1.0mg·L^–1 6-BA+0.05mg·L^–1 NAA,增殖系数为3.67;最佳生根培养基为1/2MS+0.3mg·L^–1 IBA,生根率为100%;在草炭:蛭石=2:1(v/v)的栽培基质中,组培苗的移栽成活率最高,为98.33%。该研究有效解决了野生大花银莲花在园林及药用生产上的种质资源紧缺难题,为工厂化育苗提供了技术支撑。     

扁桃愈伤组织诱导及分化的研究

以扁桃优良品种'Naporeil'的茎段、叶片和花药作为外殖体,分别对其进行愈伤组织诱导和分化研究,以筛选愈伤组织的最佳诱导增殖培养基、分化培养基和生根培养基.结果表明,该品种以茎段、花药作为外殖体最易诱导获得愈伤组织,叶片不适宜作为外殖体诱导愈伤组织;愈伤组织的最佳诱导增殖培养基均为B5+0.5 mg/L 2,4-D+0.2 mg/L 6-BA+1.0 mg/L NAA,愈伤组织诱导率为100%,增殖倍数最高可达7倍;茎段愈伤组织的分化培养基为MS+0.2 mg/L NAA+0.8 mg/L 6-BA+0.5 mg/L ZT,分化率为71%;花药愈伤组织未见分化.由茎段愈伤组织再分化获得的不定芽在1/2MS+0.5 mg/L IBA培养基上诱导生根,并给以黑暗预处理可使生根率达80%以上.     

火龙果愈伤组织诱导与植株再生

为了建立火龙果愈伤组织诱导与植株再生体系,以火龙果茎段、幼苗和子叶为外植体进行离体培养试验。结果表明：茎段诱导愈伤组织的最优培养基为1／2MS＋2,4-D2．0mg·L^-1＋6-BAO．5mg·L^-1,诱导子叶愈伤组织的最适培养基是1／2MS＋2,4-D2．0mg·L^-1＋6-BA1．0mg·L^-1,诱导愈伤组织分化的最优培养基为1／2MS＋6-BA4．0mg·L^-1＋NAA0．5mg·L^-1,最佳生根培养基为1／2MS＋6．BA1mg·L^-1＋NAA0-3mg·L^-1。     

Callus Induction and Plant Regeneration in Alstroemeria

Callus was induced from mature embryos of Alstroemeria cv. ‘Butterfly’cultured on MS medium supplemented with 2·0 or 4·0mg dm^–3 2,4–D or picloram and incubated at 25°Cin the dark. The effect of auxin concentration and precultureof embryos was studied. Callus was capable of regeneration aftertransfer to MS medium containing 4.0 mg dm°3 BAP. Shootsand whole plantlets were regenerated. The effect of growth regulators,used in the callus induction medium and the regeneration medium,on plant regeneration was studied Key words: Alstroemeria, callus, plant regeneration.     

地皮消愈伤组织诱导及植株高效再生体系的建立

以地皮消(Pararuellia delavayana)无菌实生苗带叶茎尖和带节茎段为外植体, 探讨不同植物激素种类及组合对愈伤组织诱导、芽丛发生及植株再生的影响。结果表明, 地皮消组织培养和植株再生的适宜外植体为带节茎段, 其在MS+1.0 mg·L^-1 6-BA+0.5 mg·L^-1 NAA+0.1 mg·L^-1 KT培养基中培养17天后, 约85.38%的外植体产生出分化能力较强的愈伤组织; 25天后约97.55%的愈伤组织开始分化出绿色芽丛; 30天后不定芽分化系数可达15.38。不定芽增殖继代6次后出现玻璃化现象, 且随着继代次数的增加, 玻璃化现象加重, 增殖率明显下降; 采用MS和B₅培养基交替使用可改善试管苗玻璃化现象并保持较高的增殖率。不定芽生根的适宜培养基为MS+0.5 mg·L^-1 NAA, 生根率可达100%。再生苗移栽成活率达95%以上。该研究建立了地皮消无性快速繁殖体系, 为保护地皮消野生资源及种苗繁育提供了有效途径, 也为其遗传转化研究奠定了基础。