半枝莲多糖SPS_4组分的纯化性质及分析

半枝莲经热水提取,除蛋白质,乙醇沉淀,DEAE-纤维素及Sephadex G-150柱层析分离得到一种白色粉状多糖SPS_4。经琼脂糖电泳、玻璃纤维纸电泳及醋酸纤维素薄膜,凝胶柱层析证明SPS_4为均一性多糖。经进行完全酸水解后纸层析及气相层析分析确定糖基的组成及摩尔组成比为鼠李糖:岩藻糖:阿拉伯糖:木糖:甘露糖:葡萄糖:牛乳糖=0.22:0.26:1.0:0.09:0.51:1.82:2.09。平均分子量为10000。体外实验表明,多糖SPS_4对S-180肉瘤细胞及腹水肝癌细胞均有一定的抑制作用。     

半枝莲多糖的分离、纯化及其理化性质

唇形科植物半枝莲全草的热水提取液经乙醇沉淀、去蛋白、逆向流水透析、DEAE-纤维素柱层析和Sephadex G-100柱层析得纯品半枝莲多糖(S-BP)。凝胶过滤及聚丙烯酰胺凝胶电泳证明为单一均匀成分。SBP的比旋度为[α]_D~(20)=+26.2°,不含氮,分子量13000,具有890cm~(-1)红外吸收峰。经纸层析和气相色谱分析,SBP含鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、半乳糖和葡萄糖,其克分子比为1.14:1.50:0.20:0.75:1.0:2.18。     

白芍多糖分离纯化及性质分析

采用热水浸提.乙醇沉淀法中药白芍(Paeonia Albiflora Pall)水提取液中分离纯化得到一种多糖蛋白复合物,命名为PAⅡ(Paeonia Albiflora Pall PolysaccharideⅡ,PAⅡ).电泳、FPLC和HPLC检测其纯度;红外光谱和气相色谱法对其结构和组成进行初步分析.结果表明PAⅡ为均一多糖组分,是以D-葡萄吡喃糖为主的多糖-蛋白复合物,总糖含量为85.0%,蛋白含量为13.2%;该糖为吡喃型结构,糖肽键为非O-型;单糖组分为葡萄糖、阿拉伯糖、甘露糖、鼠李糖、木糖,摩尔比为153:2.6:1.25:1:1,平均分子量为5.25×104.     

半枝莲多糖的Sevage法除蛋白工艺研究

以样品浓度、试剂添加量与供试液体积比、Sevage试剂中氯仿与正丁醇体积比、温度和料液比等为因素,采用正交试验设计,优化半枝莲多糖除蛋白的纯化工艺,结果表明：使纯化后半枝莲多糖中总糖含量最高的最佳工艺条件是A1B3C1,即：样品浓度5mg/mL、试剂添加量与供试液体积比1/5、Sevage试剂中氯仿与正丁醇体积比3/1。     

芦荟多糖的分离纯化及性质研究

采用水提醇沉法提取芦荟多糖,经DEAE-C32柱层析分离,Sephades G-100进一步纯化,得AⅠ、AⅡ和AⅢ三种芦荟多糖。Sephadex G-100凝胶色谱表明,AⅠ组分为均一组分,其分子量约为3.8×10~4。借助气相色谱技术,研究了芦荟粗多糖和AⅠ组分的单糖组成。另外,红外光谱鉴定芦荟多糖主要为吡喃多糖。     

水提醇沉法提取半枝莲粗多糖中总糖含量的最佳工艺研究

目的：探求传统水提醇沉方法下提取半枝莲粗多糖中总糖最适高效提取方案。方法：通过传统方法以水提取有效成分,以醇除杂精制的方法,改变提取时间、温度、料液比等影响因素,对所获得的半枝莲粗多糖含量进行考查,并通过统计分析方法对工艺进行优化研究。结论：应用水提醇沉法提取半枝莲粗多糖中总糖含量的最佳工艺条件为：浸提温度100℃、料液比1∶3、浸提时间1h。     

夏枯草多糖分离纯化、相关性质及药效

研究了夏枯草多糖的提取工艺、分离纯化、部分理化性质以及夏枯草多糖的免疫学活性。夏枯草经水提醇沉,去蛋白、脱色、凝胶柱色谱等步骤分离纯化得到夏枯草精多糖（Pure polysaccahrides of Spica prunellae,PPSP）。HPGPC法测其相对分子质量,红外光谱法对其结构进行初步分析,柱前对氨基苯甲酸衍生化HPLC法测其单糖组成。免疫学实验证明夏枯草精多糖单独作用或协同ConA均可显著促进小鼠脾淋巴细胞增殖,夏枯草精多糖在200μg／mL质量浓度下对正常小鼠的廓清指数和吞噬指数有明显促进作用。     

明党参多糖的分离、纯化及其理化性质

伞形科植物明党参根的热水提取液经乙醇沉淀、去蛋白、逆向流水透析,DEAE-纤维素柱层析和 Sephadex G-100柱层析得纯品明党参多糖(CSP)。凝胶过滤及聚丙烯酰胺凝胶电泳证明为单一均匀成分。CSP 的比旋度为〔α〕_D~(20)=+170.9(C=0.4,H_2o),不含氮,分子量52000,具有845cm~(-1)红外吸收峰。经纸层析和气相色谱分析,CSP 含鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、半乳糖和葡萄糖,其摩尔比为0.09:0.25:0.17:1.0:1.56:11.94。     

中华鳖多糖制备纯化及一般理化性质研究

利用双酶酶解工艺制备了中华鳖体内的多糖物质,以乙醇沉淀纯化了鳖多糖。鳖多糖为灰白色粉未状,易溶于水,不溶于丙酮等有机试剂,其中多糖质量分数为82.12%,它的蛋白、硫酸根及已糖醛酸质量分数分别是3.20%、2.16%、10.36%。     

仙草多糖的分离纯化及鉴定

仙草(Mesona Chiliensis Benth)是我国的一种民间草药。用0.5％NaHCO_3抽提,乙醇沉淀得到了仙草多糖的粗品。经过H_2O_2脱色处理,Sephadex G-75柱层析和硫酸—苯酚法收集单一峰部分,得到仙草多糖纯品(简称MCPS),薄层层析、凝胶电泳和醋纤薄膜电泳证明其为均一性多糖。红外光谱扫描表明,它具有典型的多糖吸收峰。HPLC法测得相对分子量为4.3×10~4,经薄层层析确定MCPS的单糖组成为葡萄糖、半乳糖、阿拉伯糖、木糖、鼠李糖,半乳糖醛酸及一种未知单糖。药理实验表明,它具有免疫促进作用与抑瘤效应。     

当归多糖的分离纯化及其部分性质的研究

中药当归经热水提取、乙醇分级沉淀、ＤＥＡＥ纤维素和ＳｅｐｈａｄｅｘＧ１５０柱层析,得ＡｓⅢａ和ＡｓⅢｂ两个多糖级份。ＡｓⅢａ和ＡｓⅢｂ经醋酸纤维薄膜电泳、玻璃纤维纸电泳和凝胶柱层析分析,证明都是均一的,经琼脂糖凝胶柱层析测得ＡｓⅢａ和ＡｓⅢｂ的分子量分别为８５ＫＤ和４９ＫＤ左右。组成分析表明ＡｓⅢａ由葡萄糖组成,ＡｓⅢｂ由葡萄糖、甘露糖和阿拉伯糖组成,三者比为１０∶１０∶４。     

苦瓜多糖的提取、分离纯化及组成性质

正交实验确定提取工艺后,用热水提取法得到苦瓜多糖(MCP).对MCP进行DEAE-32离子交换层析分离,得到3个多糖组分MCP1、MCP2和MCP3. 进一步采用Sephacryl S-400凝胶层析进行分离,经凝胶层析和高效液相色谱检测表明,MCP1、MCP2为均一性多糖组分.通过高效液相凝胶色谱法测定了两者的相对分子质量分别为1.16×106和7.45×105.用PMP衍生化法测定其单糖,结果表明: MCP1系由Man、Rham、GlcUA、GalUA、Glu、Gal、Xyl、Ara等单糖组成的杂多糖,摩尔比为1.03:2.93:1.00:14.95:2.16:30.70:2.85:4.50.MCP2系由Rham、GalUA、Gal、Xyl、Ara等单糖组成的杂多糖,对应的摩尔比为1.63:21.88:4.66:1.00:1.29.紫外光谱表明该多糖不含蛋白质和核酸.     

附子多糖FI的分离纯化及部分理化性质研究

白附片经热水抽提、Sevag法脱蛋白、乙醇沉淀、DEAE- C32柱层析分离 ,再通过 Sephadex G- 2 0 0柱层析进一步纯化 ,得到一种纯白色粉末状多糖 ,糖含量为 97% ,平均分子量为 2 .6× 10 5,熔点为 2 70℃。经完全酸水解、薄层层析、红外光谱分析 ,证明为葡聚糖。     

枸杞多糖LBP－I的分离纯化及性质鉴定

枸杞多糖ＬＢＰ－Ｉ的分离纯化及性质鉴定何进梁运祥张声华（华中农业大学生命科学技术学院,武汉４３００７０）（华中农业大学食品科学技术系）Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ,ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄｐｒｏｐｅｒｔｙｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｐｏｌｙｓａｃｃｈ...     

天麻多糖提取纯化方法及性质的初步研究

目的:探讨天麻多糖的最佳提取、纯化方法,分析天麻多糖性质,为深入研究天麻多糖提供技术方法。方法:采用水提醇沉法提取出水溶性粗多糖,经Sevag法脱蛋白和活性炭去色素,过DEAE-纤维素柱,盐洗脱得到天麻多糖。进行天麻多糖理化性质分析、紫外光谱和红外光谱检测分析。结果:以10%乙醇50℃恒温回流提取2 h,重复三次,是天麻多糖提取的最佳方法。天麻多糖为白色粉末状固体,其水溶液呈透明粘稠状,pH弱酸性。结论:天麻多糖为非淀粉类非还原性多糖,可能是含有α-D-木吡喃糖、D-吡喃葡萄糖等单糖的非均一组分构成的多糖。     

枸杞多糖的提取纯化及组成分析

采用水提法从枸杞中提取分离枸杞多糖(LBP)用DEAE纤维素柱色谱和凝胶柱色谱进行分离纯化,采用GPC-LLS法、红外光谱和气相色谱等方法对其组成进行研究。结果表明LBP含有3个级分,LBP的分子质量约为1.497×105,由阿拉伯糖(Ara),鼠李糖(Rha),木糖(Xyl),甘露糖(Man),半乳糖(Gal)和葡萄糖(Glc)6种中性单糖组成。     

紫球藻胞外多糖的分离纯化与性质分析

采用Q Sepharose Fast Flow凝胶,从紫球藻胞外多糖（ESPS）获得3个组分ESPS0,ESPS1.0和ESPS1.6,它们经过Sephadex G200凝胶过滤纯化后,紫外光谱、红外光谱、氨基酸分析、单糖组成分析表明,ESPS0中未测出蛋白,ESPS1.0和ESPS1.6的蛋白含量分别为7.8%和7.6%,三者硫酸基含量分别为16.3%,11.6%和8.3%,同时分别在201 nT,207 nm和199 nm处出现特征吸收峰,而在280 nm和260 nm波长处无吸收峰.ESPS0、ESPS1.0中单糖的连接方式为β-糖苷键,而ESPS16中主要为α-糖苷键.ESPS1.0、ESPS1.6都含有十七种氨基酸.三种组分都是由D-木糖、D-葡萄糖、D-甘露糖、D-艾杜糖以不同的比例所组成.