乙肝病毒表面抗原preS1与人肿瘤坏死因子α融合基因的表达

用ＰＣＲ法获得了ＨＢｓＡｇｐｒｅＳ１（１－６５）肽段基因,将该基因融合在肿瘤坏死因子（ｈＴＮＦα）之后,插入表达载体ＰＳＢ－９２中,使融合基因的５′端直接置于大肠肝菌ＰＬ启动子下游,采用３０℃培养,４２℃诱导,获得了ＴＮＦ与ｐｒｅＳ１（１－６５）融合蛋白的表达产物。ＳＤＳ－ＰＡＧＥ电泳显示表达产物为２５ｋＤ,约占细菌总蛋白的３５％。表达产物经Ｗｅｓｔｅｒｎｂｌｏｔ验证,能分别特异地与ｈＴＮＦα抗体与ｐｒｅＳ１抗体结合,稀释复性后,该融合蛋白还具有ＴＮＦ的生理功能（对Ｌ９２９细胞的细胞毒活性）。经ＤＮＡ序列测定,ｐｒｅＳ１（１－６５）肽基因正确地融合在ｈＴＮＦα基因之后。该结果提供了一种制备ｐｒｅＳ１的新方法,为进一步开展治疗肝癌和乙肝的导向药物打下基础。     

抗乙肝炎病毒表面抗原preS1（20—47）多抗的制备,性…

ＧＨｓＡｇｐｒｅＳ１（２１－４７）肽参与乙肝病毒与肝细胞受体的结合。我们用固相法合成了ＨＢｓＡｇｐｒｅＳ１（２０－４７）２８肽,并用此肽与ＢＳＡ的偶联物免疫家兔抗血清经亲和层的纯化后,得到高纯度,高活力及专一性的抗ＨＢｓＡｇｐｒｅＳ１（２０－４７）多抗,它能成功地用于基因工程表达产物及病人血清中的ｐｒｅＳ１抗原的检测。     

乙型肝炎病毒表面抗原前S区和谷胱甘肽巯基转移酶融合基因在大肠杆菌中的表达

我们构建了谷胱甘肽巯基转移酶（ＧＳＴ）和完整的或部分缺失的乙型肝炎病毒表面抗原前Ｓ区的融合基因,并在大肠杆菌中进行了表达。融合蛋白的产量随着前Ｓ区长度的增加而迅速降低,而且融合蛋白的前Ｓ区有严重的降解,主要降解位点在ｐｒｅＳ１区的ａ．ａ．７５和ｐｒｅＳ２区的ａ．ａ．１３０和ａ．ａ．１６５左右。利用蛋白降解酶系缺陷型菌株进行的研究表明,这种降解酶存在于多个大肠杆菌株中而且和大肠杆菌中的两个主要的蛋白降解酶系Ｌｏｎ和ｈｔｐＲ无关。具有重要生物学功能的前Ｓ区肽段（ｐｒｅＳ１ａ．ａ．１－６５）因含有阻止分泌的滞留顺序而无法在哺乳动物细胞和酵母中大量表达,但滞留顺序的存在并没有影响含有这一肽段的融合蛋白在大肠杆菌中的表达和产物的纯化。ＧＳＴ融合表达系统产量高,纯化快速简便。用这一方法大量表达并得到的这一肽段不仅是研究乙型肝炎病毒的分子生物学的重要材料,而且可以作为新一代乙型肝炎疫苗的主要组成成分。     

乙型肝炎病毒表面抗原preS1在大肠杆菌中的表达与鉴定

本文报告利用pWR590质粒为载体,构建了含1ac启动子、β-半乳糖苷酶(1—590)基因、Xa因子的四肽识别位点和HBV preS1、preS2编码序列的表达质粒,并成功地在大肠杆菌中获得稳定表达。融合蛋白经Xa因子消化和高效液相层析,得到了preS1(1—91)纯肽。此肽特异性地与人肝细胞质膜结合,从而为肝细胞上存在preS1受体提供了直接的实验依据,也为分离和鉴定肝细胞上preS1受体打下了良好的基础。     

乙型肝炎病毒preC／C基因在杆状病毒载体系统中的表达

通过ＰＣＲ获得长度为６４０ｂｐ的ＨＢＶ ｐｒｅＣ／Ｃ基因片段,将其克隆入转移载体质粒ｐＳＸＩＶＶＩ＾＋Ｘ３／４,构建出重组质粒ｐＳＸＩＶＶＩ＾＝Ｘ３／４－ｐＣ＝Ｃ。利用共转染的方法,构建出既能形成多角体又能表达ｐｒｅＣ／Ｃ基因的重组毒株ＴｎＮＰＶ－Ｃ／Ｃ－ＯＣＣ＾＋。该重组毒株中ｐｒｅＣ／Ｃ基因受到串联的双启动子－合成启动子和含ＨｉｎｄⅢ接头的ＸＩＶ启动子的双重调控。     

人乙型肝炎病毒前表面抗原（preS）基因的突变及其在家蚕细胞中影响 …

为探讨人乙型肝炎病毒（ＨＢＶ）前表面抗原（ｐｒｅＳ）基因的表达调控机理,以实现高效表达,利用ＰＣＲ方法在克隆的ｐｒｅＳ基因的第２、３位密码子引入同义突变。消除存在于５端编码区保守的反向重复序列,将ｐｒｅＳ基因及其突变形式（ＭｐｒｅＳ）分别重组到转移载体ｐＢＭ０３０,获得ｐＢＭ－ｐｒｅＳ和ｐＢＭ－ＭｐｒｅＳ。将ｐＢＭ－ｐｒｅＳ和ｐＢＭ－ＭｐｒｅＳ分别与野生型家蚕核型多角体病毒（ｂｍＮＰＶ）ＤＮＡ共转     

人a降钙素基因相关肽基因在酵母细胞中的分泌表达与产物的分…

化学合成的人ａ降钙素基因相关肽（ＣＧＲＰ）基因用ＰＣＲ法改造后使其能正确融合在酵母分泌型表达载体ｐＶＴ１０２Ｕ／ａ中的ａ交配因子前导肽序列之后,然后进行克隆并转化酵母宿主菌Ｓ－７８进行表达,培养物的上清用酶标（ＥＬＩＳＡ）鉴定为阳性,而对照Ｓ－７８、ｐＶＴ１０２Ｕ／ａ为阴性,表达量用ＥＬＩＳＡ定量大于２ｍｇ／Ｌ。表达产物经阳离子交换层析（ＣＭ－Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｃ２５）和ＨＰＬＣ纯化得到了ＨＰＬＣ     

人乳头瘤病毒HPV16 E7蛋白基因在沙门氏菌疫苗菌株X4072中的表达

采用ＰＣＲ方法,从ＨＰＶ１６型质粒中分离出ＨＰＶ１６Ｅ７基因片段,用ＥｃｏＲＩ和Ｓａｌｌ双酶解后,定向插入到表达质粒ｐＹＡ３３３２（ａｓｄ＋）的Ｐｔｒｃ启动子下游,构建成ｐＹＡ３３３２－ＨＰＶ１６－Ｅ７重组表达质粒。在大肠杆菌Ｘ６２１２上筛选出重组质粒后,通过中间菌株Ｘ３７３０的转化过渡,将重组质粒导入鼠伤寒沙门氏减毒疫苗菌株Ｘ４０７２（ａｓｄ－）,构建成宿主和载体之间具有平衡致死结构的ＨＰＶ１６     

CS3菌毛抗原和霍乱毒素B亚基在人伤寒菌中的表达

通过体内外重组的方法,构建了人伤寒菌流行株Ｔｙ２的△ａｒｏＡ,△ａｒｏＣ和ａｓｄ＾－基因缺失突变体（ＲＳ４１７）作为抗原载体菌：同时,构建包含ａｓｄ基因的表达质粒ｐＹＸ１０２,与ＲＳ４１７一起,构成宿主－载全平衡致死系统,用于在没有抗生素条件选择的情况下,稳定表达克隆在表达质粒上的外源抗原基因,将肠毒素性大肠杆菌的菌毛抗原ＩＩＩ（ＣＳ３）基因和霍乱弧菌毒素Ｂ亚基（ＣＴＢ）基因分别克隆至ｐＹＸ１０２     

带preS1的乙肝表面抗原融合蛋白的亲和纯化

乙肝表面抗原大分子蛋白ＬＨＢｓ的ｐｒｅＳ１区域２１～４７位肽段为肝细胞受体的结合位点;由ｐｒｅＳ１诱发的抗体有可能阻断病毒对肝细胞的侵蚀。因此,含有ｐｒｅＳ１的新型乙肝疫苗可能会引起机体更广泛、可靠的保护作用。但基因工程表达产物用于生产的一个关键问题是产品的纯化。用抗ＨＢｓＡｇｐｒｅＳ１单抗制成了亲和凝胶载体,并用它纯化了基因工程表达的带ｐｒｅＳ１的乙肝表面抗原融合蛋白．此法有操作简便;纯化效果好,回收率高等优点．一步层析产品纯度可达９０％以上,回收率在５０％左右,具有很好的应用前景。     

抗乙型肝炎病毒表面抗原preS1（20－47）多抗的制备、性质和应用

ＨＢｓＡｇｐｒｅＳ１（２１－４７）肽参与乙肝病毒与肝细胞受体的结合。我们用固相法合成了ＨＢｓＡｇｐｒｅＳ１（２０－４７）２８肽,并用此肽与ＢＳＡ的偶联物免疫家兔;抗血清经亲和层析纯化后,得到了高纯度、高活力及专一性的抗ＨＢｓＡｇｐｒｅＳ１（２０－４７）多抗,它能成功地用于基因工程表达产物及病人血清中的ＰｒｅＳ１抗原的检测。     

木糖代谢基因表达水平对酿酒酵母重组菌株产物形成的影响

以Ｅ．ｃｏｌｉ－Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ穿梭质粒ＹＥｐ２４为骨架,将树干毕赤酵母（Ｐｉｃｈｉａ ｓｔｉｐｉｔｉｓ ＣＢＳ６０５４）的木糖还原酶（ＸＲ）基因ＸＹＬ１及木糖醇脱氢酶（ＸＤＨ）基因ＸＹＬ１分别以不同的相对表达方向置于酿酒酵母的乙醇脱氢酶Ｉ（ＡＤＨ１）启动子和磷酸甘油激酶（ＰＧＫ）启动子下,构建不同ＸＹＬ１及ＸＹＬ２的重组质粒。这些重组质粒分别转化酿酒酵母（Ｈ１５８）受体菌。得到的重组菌株     

核酸免疫可特异地诱发小鼠对乙型肝炎病毒表面抗原S＋PreS1的免疫反应

运用改造后的乙型肝炎病毒表面抗原Ｓ＋ＰｒｅＳ１融合基因（将ＰｒｅＳ１）区肝细胞受体结合位点（２１－４７ａａ）编码基因融合到Ｓ蛋白Ｃ端２２３位残基下游）,构建了一系列真核表达载体,并在ＣＨＯ细胞上有效表达了分泌型的,具有Ｓ＋ＰｒｅＳ１双重抗原性的融合蛋白颗粒,用上述质粒ＤＮＡ肌肉免疫Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ小鼠,成功地检测到了抗一－ＨＢｓ和抗－ＰｒｅＳ１抗体,加强免疫能显著改善免疫效果,本研究还建立了检测抗     

人肿瘤坏死因子基因在变铅青链霉菌中的克隆与表达

以质粒ｐＩＪ４８６为载体,将来源于质粒ｐＨＴ１的肿瘤坏死坏因子（ＴＮＦ－ａ）ｃＤＮＡ克隆至变铅青链霉菌,以新霉素（３０μｇ／ｍｌ）为选择标记,获得了数百转化子,实验表明Ｎｏ．７转化子ｓ．ｌｉｖｉｄａｎｓ ＴＫ５４－ＨＴ所含重组质粒ｐＩＪＴ７已克隆有ＴＮＦｃＤＮＡ。Ｌ９２９细胞毒实验结果表明该转化子ＴＮＦ表达量可达１０＾８活性单位／升以上,中和实验确证其表达产物为人ＴＮＦ－ａ,ＳＤＳ－ＰＡＧＥ表明克     

人Mn—SOD cDNA的克隆及高效表达

用逆转录－聚合酶链反应（ＲＴ－ＰＣＲ）,以人肝细胞株（Ｌ０２）总ＲＮＡ为模板,扩增了人锰超氧化物歧化酶（ｈＭｎ－ＳＯＤ）的ｃＤＮＡ。重组到Ｔ７启动子控制下的表达载体ｐＥＴ－２４ａ（＋）中,构建表爱质粒ｐＥＴ－ＭｎＳＯＤ,并转化大肠杆菌ＢＬ２１（ＤＥ３）。ＳＤＳ－ＰＡＧＥ及蛋白质印迹分析表明,经１ｍｍｏｌ／Ｌ异丙基硫代－β－Ｄ－半乳糖苷（ＩＰＴＧ）诱导后,可高效表达一分子量为２２ｋＤ的蛋白质,与抗人     

重组PAI－1在大肠杆菌中的高效表达

纤溶酶原激活物抑制因子－１（ＰＡＩ－１）在天然状态下含量很低。为了进行ＰＡＩ－１的结构与功能的研究,构建了表达重组ＰＡＩ－１的质粒ｐＢＶ２２０／ＰＡＩ－１,并在大肠杆菌中得到了高效表达。最高表达量为菌体总蛋白量的４９％以上,经Ｗｅｓｔｅｒｎ ｂｌｏｔｉｎｇ检测,得到了分子量为４３．０ｋＤａ的反应条带。对形成包涵体的表达产物进行变、复性处理及Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ－７５的初步纯化,得到了潜伏态的重组Ｐ     

HIV-1型核衣壳蛋白P24截短体在大肠杆菌中的表达,纯化和鉴定

用聚合酶链式反应（ＰＣＲ）从ＨＩＶ １ｇａｇ基因中扩增出衣壳蛋白Ｐ２４截短体（ｔＰ２４）基因,插入质粒ｐＧＥＸ ４Ｔ３中构成重组表达质粒ｐＧＥＸ ｔｐ２４,将ｐＧＥＸ ｔｐ２４转化大肠杆菌ＢＬ２１后获得了高效表达,表达量占菌体总蛋白量的３４３８％。经Ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ４Ｂ亲和层析纯化的截短体Ｐ２４纯度为９２７７％。纯化的截短体Ｐ２４在间接ＥＬＩＳＡ和免疫印迹检测ＨＩＶ抗体阳性血清和正常人血清中,具有很高的抗原特异性和免疫反应性。     

鼠Ⅰ型可溶性白细胞介素1受体基因在昆虫细胞的克隆和表达

白细胞介素１（ＩＬ－１）是一种重要的细胞因子,具有广泛的生物学活性。它通过与细胞表面的白细胞介素 １受体（ＩＬ－１Ｒ）结合而起作用。以杆状病毒为载体在昆虫细胞中克隆表达了小鼠Ｉ型可溶性白细胞介素１受体（ｓＩＬ－１　ＲＩ）基因。以ＮＩＨ／３Ｔ３细胞ＲＮＡ为模板,采用ＲＴ－ＰＣＲ方法扩增得到小鼠ｓＩＬ－ＩＲＩ的ｃＤＮＡ,克隆至杆状病毒转移载体ｐＡｃＧＰ６７Ｂ,将转移重组质粒与野生病毒ＡＣＮＰＶ ＤＮＡ共转染昆虫细胞Ｓｆ９,经同源重组得到重组杆状病毒ｒＡＣＮＰＶ。应用经纯化的ｒＡｃＮＰＶ感染昆虫细胞Ｓｆ９,表达获得重组的ｓＩＬ－１ＲＩ。经对亲和层析样品的ＳＤＳ－ＰＡＧＥ分析和对ＩＬ－１β生物活性阻断作用实验证实,表达产物能够与其配基结合,并且能够分泌至细胞培养上清中。     

转化生长因子α—绿脓杆菌外毒素融合蛋白TGFa—PE40高效表达质…

利用基因工程技术,将质粒ＰＹＸ３８２用ＸｂａＩ和ＥｃｏＲＩ切下插入的ＴＧＦａ－ＰＥ４０融合基因片段,连接到可表达载体ＰＣＢ６０４的ＸｂａＩ／ＥｃｏＲＩ位点中,构建成新的重组质粒Ｐ２Ｘ－ＴＰ１。Ｐ２Ｘ－ＴＰ１转化Ｅ．ｃｏｌｉＢＬ２１感受态菌后,在ＩＰＴＧ诱导下Ｉｐｐ启动子转寻表达ＴＧＦａ－ＰＥ４０融合蛋白。表达产生物主要以包涵体形式沉积在细胞内,隔合蛋白表达量的高低与诱导时的细胞密度,诱导的温度以及     

重组人粒细胞集落刺激因子的纯化

重组人粒细胞集落刺激因子（ｒｈＧ－ＣＳＦ）在工程菌ｐＣＧ－１／ｒｈＧ－ＣＳＦ／ＤＨ５ａ中以无活性的包涵体形式大量表达。经过菌体破碎分离包涵体、包涵体变性复性后,ｒｈＧ－ＣＳＦ的活性得到恢复。用离子交换和疏水层析纯化了ｒｈＧ－ＣＳＦ,比活性达１．５７×１０８ｕ／ｍｇ,纯度大于９８％。