花椰菜幼苗下胚轴诱导再生植株

植物名称:花椰菜(Brassica oleracea varbotrytis)80天结球栽培品种。材料类别:无菌苗下胚轴。无菌苗培养:种子经70％酒精浸泡30秒钟后,转移到0.1％昇汞溶液灭菌20分钟,再用无菌水冲洗三次,接种于MS培养基上。培养温度为25—28℃;光强为散射光,约100 lux;每天照光12小时。培养8—10天时幼苗高约3—4厘米,子叶绿色,于无菌条件下先切除胚根、子叶和茎生长点。再把下胚轴切成约1厘米左右长的切段作为外植体进行诱导培养。     

兔眼越桔幼苗胚轴、子叶诱导再生植株

植物名称:兔眼越桔(Vaccinium ashei)材料类别:无菌苗胚轴、子叶。无菌苗培养:种子用70％酒精浸泡1分钟后,转移到10％的漂白精片过滤液中灭菌15分钟,再用无菌水冲洗三次,接种于0.5％琼脂上,培养温度为25～28℃,光强为2,000lx,每日光照16小时。培养3～4周后幼苗高约2～3cm,子叶绿色。于无菌条件下取子叶、胚轴(5～7mm)作为外植体进行诱导培养。     

牡丹胚培养与植株再生

植物名称:牡丹(Paeonia Suffruticosa)。材料类别:成熟种子经清水浸泡一周,取出放入饱和的漂白粉上清液中浸泡10分钟,再用0.1％升汞溶液浸泡5分钟,无菌水冲洗干净,在超净工作台上剖开种子取胚接种。培养条件:在胚培养的初始生长发育和丛生芽的诱导产生等不同阶段分别采用以下不同组的培养基。A、MS+BA0.5(mg/l,下同)+IAAI+蔗糖3％     

串叶松香草多倍体植株的组织培养

植物名称:串叶松香草(Silphium perfolia—tum)。材料类别:幼苗的胚轴。培养条件:将种子用水浸泡12小时后移至500ppm的秋水仙素溶液处理12小时,然后种置于砂基培养基内,室内培养。待其长出幼苗时,取其膨大的胚轴部分接种于培养基上,置于25±0.5℃的培     

赤豆上胚轴切段培养中的植株再生

植物名称:赤豆(Phaseolus angularis)。材料类别:上胚轴。种子用10％安替福民溶液表面消毒、并用无菌水洗后,在MS基本培养基上萌发。从5—7日令的幼苗上切取上胚轴上部约2厘米长的幼嫩部分,切成1.5—2.0毫米长的切段作为培养材料。     

豇豆上胚轴切段培养成苗

植物名称:豇豆(Vigna sinensis)。品种:鹰嘴红、杭州豇豆材料类别:上胚轴(种子经70％酒精2分钟、饱和漂白粉液16分钟消毒后,在1/2 MS培养基中黑暗条件下萌发出幼苗。取8天龄幼苗上胚轴上部约2.5—3cm,切成 2—2.5mm切段)。培养条件:2/3 MS 6-BA 1.5mg/1(单位下同) IBA0.5 蔗糖 2％ 活性炭0.3％ 琼脂0.6％,黑暗下培养20天后,再在每天光照11小时,光强     

芝麻下胚轴愈伤组织的诱导和植株再生

植物名称:芝麻(Sesamum indicum)中芝5号材料类别:中芝5号成熟种子用70％乙醇浸泡半分钟,再用0.1％HgCl_2消毒15分钟,然后用无菌水冲洗4次,接种在1/2MS培养基上。第一对真叶伸展后,将下胚轴切成0.8cm长的切段作外植体。     

甘兰叶片、下胚轴直接分化试管苗的试验

利用结球甘兰(F Brassica oleracsa var.capitata it)幼苗的叶片和无菌苗下胚轴进行组织培养,诱导分化出试管苗,效果良好。叶片培养:将取来的叶片外植体用自来水充分冲洗而后在无菌条件下将叶片浸在0.1%的升汞溶液里(含三滴吐温)处理10分钟,进行杀菌,再用无菌水冲洗4—5次,用滤纸吸去叶片表面水分,切成0.5×0.5cm 的小方块,投入培养基。下胚轴培养基:无菌条件下,取     

绿豆上胚轴培养与植株再生

植物名称:绿豆(Phaseolus aureus)黄褐色种子品种。材料类别:上胚轴。种子用70％酒精和 0.1％ HgCl_9表面灭菌后,在MS基本培养基上萌发。取8～10日龄的绿豆无菌苗上胚轴,切成0.8cm左右长的小段作为培养材料。培养条件:上胚轴切段培养在以MS(1/2MS     

向日葵的组织培养和植株再生

植物名称:向日葵(Helianthus annuus)。材料类别:幼嫩叶片和下胚轴。种子经表面消毒后,在MS基本培养基上萌发。取10—15日龄无菌苗的叶片和下胚轴,将叶片切成5毫米×5毫米的切块;下胚轴切成4—5毫米长的小段作为培养材料。     

连翘试管植株的诱导

植物名称:连翘(Forsythia Suspensa)。材料类别:子叶、苗端、下胚轴。取成熟的连翘种子,进行常规消毒后,接种于不加激素的MS培养基上。当苗高1.5—2cm时,在无菌条件下切取子叶、苗端、下胚轴分别接种。培养条件:以MS培养基为基本培养基,添加不同的激素,组成不同激素水平的培养基进行试验。在室温(17—23℃)黑暗条件下诱导愈伤组织,在26℃左右,每日光照10—12小时(光强为2000     

大别山五针松子叶和下胚轴离体培养成苗

植物名称:大别山五针松(Pinus dabeshanensis) 材料类别:子叶和下胚轴。种子冷水浸种24小时,剥去种壳,经0.1％升汞(8分钟)和70％酒精(0.5分钟)表面灭菌后,用无菌水冲洗5遍,接种到MS培养基上发芽。2周后,根长至0.5～1cm,剥去胚乳,切取子叶和下胚轴培养。培养条件:基本培养基为改良的MS(MS无机成分中NH_4NO_3浓度减低到1/4,KNO_3为1/2;有机成分改为VitB_1 0.4mg/L、甘氨酸2mg/L)和     

四季樱草叶片的组织培养

植物名称:四季樱草 (Primula, obconica),又名仙鹤莲或报春花。材料类别:取生长正常、无病虫害的四季樱草幼叶,经自来水冲刷后,用70％酒精溶液浸泡2分钟,然后用0.1％升汞溶液再浸泡6分钟左右,最后用无菌水冲洗3遍,沥干后;用剪子将其剪成(0.8～1cm)~2的小块,用于接种。     

油梨童期茎切段试管培养发根的生物鉴定

材料与方法 种子的发芽 将去皮种子用含有0.5％次氯酸钠(“Purex”,用水稀释10倍)和0.1％吐温20乳化剂的溶液浸泡灭菌。将子叶分开,切下带有1—2厘米厚的子叶的胚轴(带有胚根和胚芽),移栽入营养管内。发芽培养基含有MS培养基的盐分和蔗糖3000(单位:毫克/升,下同)、肌醇100、盐酸硫胺素0.4、活性炭1000和“TC”琼脂8000。在加入琼脂前,pH调整到5.7。每个容积为25×150毫米的试管加入营养琼脂25毫升。试管用聚丙烯罩罩口,以1.05公斤/厘米~2压力消毒15分钟。每个培养管放入一     

苗龄与红光对向日葵原生质体分离和培养的影响

用1.0—1.5%(W/V)纤维素酶(Onozuka R-10)和0.3—0.5%(W/V)果胶酶[Pectinasc (Serva)]配合分离到大量有活力的向日葵下胚轴原生质体,经液体浅层培养或琼脂糖小块培养7—10天后,均能持续分裂到细胞团或体细胞胚,至14—21天形成大量肉眼可见的小愈伤组织(直径0.5—2.0mm)。比较试验表明:(1)影响向日葵下胚轴原生质体分裂生长的首要因素是起始材料无菌苗的生理状态。用红光照射无菌苗,能明显地促使下胚轴原生质体在较低密度(1×10~4/ml)培养时,也能持续分裂,再生小愈伤组织;(2)在MS培养基上添加5mmol/L谷氨酰胺或以7.5mmol/L谷氨酰胺代替原培养基中的无机氮,能促使原生质体高频率(44.4%左右)分裂,再生愈伤组织。     

龙吐珠的快速繁殖

植物名称:龙吐珠(clerodendron thomsonae)。材料类别:茎尖及嫩茎。培养条件:茎尖及嫩茎剪下后,在肥皂水中清洗,自来水冲洗干净后,投入70％乙醇溶液中表面杀菌15秒钟左右,再用0.1％升汞溶液浸泡8～10分钟,无菌水冲洗4～5次,消毒滤纸吸干表面水分,     

翅荚木的组织培养

植物名称:翅荚木(Zenia insignis) 材料类别:无菌苗的顶芽;下胚轴的上、中段;一年生枝条的切段。培养条件:MS中加入不同比例的6-BA与IBA,或6-BA与NAA,琼脂1％,蔗糖3％及肌醇、烟酸、V_(B1),V_(B6)等。pH5.8。培养温度28±2℃。光照为2支40W日光灯,每日照光10～12h。生长与分化情况: (1)愈伤组织的诱导在MS 6-BA1.0mg/L(单位下同) IBA0.1或MS 6-BA1.0 NAA0.1     

植物生长调节剂对黄豆和绿豆下胚轴伸长的影响

材料为黄豆(Glycine max)、绿豆(Phaseolus radiatus)种子,前者置于不同浓度的植物生长调节剂溶液中浸泡3～4 h,后者先放在45℃的水中浸泡3～4 h,待萌动露芽和芽长达2cm时以一定浓度的生长调节剂溶液各喷淋一次。然后将两者都放在25℃下暗培养,每天换水3～4次,水温21～23℃。培养7 d后测得以下结果(表1):     

槐树器官、胚胎发生及细胞学观察

槐树(Sophora japonica)是多年生木本豆科植物,常作行道树,并为优良的蜜源及药用植物。陈维伦等曾以胚轴和子叶进行槐树的组织培养,获得了无根苗,我们曾简要的报道了其子叶、胚轴和幼叶的培养及植株再生。本文着重报道槐树子叶培养中器官、胚胎发生及细胞学观察结果。8月上旬采取15年龄槐树的肉质果荚,70%酒精浸泡30秒,0.2%HgCl_2常规灭菌10分钟,无菌水冲洗3次,在无菌条件下剥去果荚及种皮,切下子叶,并一分为二,接种在 MS     

巴戟天芽体培养

植物名称:巴戟天(Morinda officinalis)。材料类别:幼芽。取初生的顶芽或侧芽,截长0.4—0.7cm作为外植体,剥去苞皮,用0.1％升汞溶液消毒10分钟,再用无菌水冲洗4—5次。切除基部0.1—0.3cm坏死组织,留下芽体接种在培养基上。培养条件:(1)增殖培养基:(浓度单位: