介导巨噬细胞摄取氧化修饰极低密度脂蛋白的受体

用未标记氧化修饰极低密度脂蛋白（ｏｘ－ＶＬＤＬ）、ｎ－ＶＬＤＬ、乙酰ＬＤＬ竞争１２５Ｉ－ｏｘ－ＶＬＤＬ与巨噬细胞的结合。在浓度为２００μｇ蛋白／ｍｌ时,分别抑制标记ｏｘ－ＶＬＤＬ结合量的７０～７８％、６０～７０％和２５～３５％。用未标记ｏｘ－ＶＬＤＬ竟争１２５Ｉ－ｎ－ＶＬＤＬ与巨噬细胞的结合,能抑制７７％。结果说明ｏｘ－ＶＬＤＬ主要通过ｎ－ＶＬＤＬ受体进入巨噬细胞。以ｏｘ－ＶＬＤＬ与ｏｘ－ＬＤＬ进行交叉竞争时,ｏｘ－ＶＬＤＬ与ｏｘ－ＬＤＬ自身可抑制标记ｏｘ－ＶＬＤＬ或ｏｘ－ＬＤＬ的７５～８２％,而ｏｘ－ＶＬＤＬ或ｏｘ－ＬＤＬ的交叉竞争仅３８～４０％。表明ｏｘ－ＶＬＤＬ与ｏｘ－ＬＤＬ有部分共同的构象与巨噬细胞的脂蛋白受体结合,但ｏｘ－ＶＬＤＬ不是经ｏｘ－ＬＤＬ受体被巨噬细胞摄取。     

介导巨噬细胞摄取氧化修饰极低密试脂蛋白的受体

用未标记氧化修饰极低密度脂蛋白（ｏｘ－ＶＬＤＬ）、ｎ－ＶＬＤＬ、乙酰ＬＤＬ竞争＾１２５Ｉ－ｏｘ－ＶＬＤＬ与巨噬细胞的结合。在浓度为２００μｇ蛋白／ｍｌ时,分别抑制标记ｏｘ－ＶＬＤＬ结合量的７０￣７８％、６０￣７０％和２５￣３５％。用未标记ｏｘ－ＶＬＤＬ竞争＾１２５Ｉ－ｎ－ＶＬＤＬ与巨噬细胞的结合,能抑制７７％。结果说明ｏｘ－ＶＬＤＬ主要通过ｎ－ＶＬＤＬ受体进入巨噬细胞。以ｏｘ－ＶＬＤＬ与ｏｘ－ＬＤ     

极低密度脂蛋白受体研究进展

极低密度脂蛋白受体 (VLDL R)属于低密度脂蛋白受体 (LDL R)超家族 ,结构上与LDL R极为相似 ,而在结合特性、组织分布及生理功能上存在较大的差异 .近年来的研究表明 ,VLDL R配体结合域中的重复序列参与配体的结合 ,并已初步确定受体N端的 4个重复序列中含有与配体结合的重要位点 ;在哺乳动物体内 ,VLDL R主要分布于脂代谢活跃的组织细胞 ,如 :心肌、骨骼肌和脂肪组织等 ,表明其与脂质尤其是甘油三酯的代谢密切相关 ;动脉粥样硬化 (AS)的病变斑块组织中该受体的表达量很高 ,推测VLDL R参与了AS的病变过程 ;在不同的细胞内 ,VLDL R及其亚型的表达并不一致 ,并发现与各种生理、病理变化相关 ,已经发现多种转录因子参与VLDL R表达的调控 ;基因敲除研究也不断揭示VLDL R新的功能意义 ,特别是发现了VLDL R在脑的发育过程中的重要信号作用 ,这些研究已使人们对VLDL R有了新的更全面的认识     

巨噬细胞表面的结构分枝杆菌受体

本广袤地近年来发现的多种参与摄取结核分枝杆菌（结核杆菌）的巨噬细胞表面受体的种类和功能作了综述,着重阐述了各受体导结核杆菌内吞的机制,受体多样性和受体联合以及受体介导对后续事件的影响。     

氧化修饰极低密度脂蛋白增强其致动脉粥样硬化作用

研究了氧化修饰极低密度脂蛋白（ｏｘ－ＶＬＤＬ）对小白鼠腹腔巨噬细胞内脂质堆积作用及其机制。经Ｃｕ~（２＋）修饰后ＶＬＤＬ的电泳迁移率及脂质过氧化物含量均显著增加。ｏｘ－ＶＬＤＬ更易导致小鼠腹腔巨噬细胞内脂质堆积。以相同浓度（３００μｇＴＧ／ｍＬ）或不同浓度（２００─５００μｇＴＧ／ｍＬ）的ｏｘ－ＶＬＤＬ及正常ＶＬＤＬ（ｎ－ＶＬＤＬ）与巨噬细胞温育２４ｈ,前者使巨噬细胞内ＴＧ堆积均比后者显著（Ｐ＜０．０１）。同时,随ｏｘ－ＶＬＤＬ的脂质过氧化物含量（ＴＢＡＲＳ水平）增加,巨噬细胞内ＴＧ含量的百分率相应增加。以５０μｇ蛋白／ｍＬ的ｎ－ＬＤＬ,ｏｘ－ＬＤＬ,ｎ－ＶＬＤＬ及ｏｘ－ＶＬＤＬ与巨噬细胞温育６０ｈ。细胞内ＣＥ堆积中氧化组均比正常组高（Ｐ＜０．０１）。巨噬细胞对~（１２５）Ｉ－ｎ－ＶＬＤＬ与~（１２５）Ｉ－ｏｘ－ＶＬＤＬ的结合、降曲线均有饱和趋势。两结合曲线无明显差异,但细胞对后者降解的量比前者多。结合的竞争实验表明,ｎ－ＶＬＤＬ能抑制大部分~（１２５）Ｉ－ｏｘ－ＶＬＤＬ与细胞结合,而Ａｃ－ＬＤＬ只能抑制小部分。结果表明ｏｘ－ＶＬＤＬ主要通过受体途径：大部分经过ｎ－ＶＬＤＬ受体,小部分经过清道夫受体被巨噬细胞摄     

极低密度脂蛋白对巨噬细胞载脂蛋白E基因表达的调节

巨噬细胞（M）是动脉粥样硬化（AS）斑块中泡沫细胞的主要来源之一,它可通过其表面的多种脂蛋白受体介导摄取合APOB或APOE的脂蛋白,导致M的脂质增加．此外,M有较强的分泌ApOE的能力[1],这一现象虽已发现多年,但意义尚不清楚VLDL是一种含APOE的脂蛋白,它能通过M膜上识别APOE的受体进入M,从而促进Mg内脂质堆积,并与AS密切相关[2,3]．流行病学调查发现在我国的高脂血症中2／3为VLDL升高为主的高甘油三酯（HTG）血症．另外,Evans等报道HTG血症患者的血浆中以ApoE－poorVLDL升高为主,它们在血浆中清除的速率较Apo…     

氧化修饰低密度脂蛋白对巨噬细胞一氧化氮合酶基因表达的影响

氧化修饰LDL(OX-LDL)可抑制脂多糖(LPS)诱导的巨噬细胞NO释放, 而正常(N-LDL)和乙酰化LDL(AC-LDL)则没有抑制作用.OX-LDL对NO释放的抑制作用随LDL修饰程度的升高而增强,且具有浓度和时间效应.狭缝杂交结果显示OX-LDL处理可使LPS诱导的巨噬细胞NOS mRNA含量下降,提示OX-LDL对NO释放的抑制作用可能发生在转录水平.     

巨噬细胞对正常人极低密度脂蛋白亚组分代谢的研究

本文研究了小鼠腹腔巨噬细胞对正常人极低密度脂蛋白(N-VLDL)两种亚组分VLDL_1和VLDL_3的代谢。两种亚组分都能以受体方式和非特异性方式被巨噬细胞摄取和降解。在受体途径中以VLDL_1的摄入量居多。对胞内甘油三酯(TG)的堆积作用以VLDL_1较强,对胆固醇酶(CE)的堆积则以VLDL_3较强。表明两者在促进巨噬细胞向泡沫细胞转变中的作用有所不同。     

人可溶性低密度脂蛋白受体在甲醇酵母中的表达

为获得低密度脂蛋白受体配基结合结构域在甲醇酵母中的分泌表达 ,首先用RT PCR方法以人肝癌Bel 740 2总RNA为模板扩增了编码低密度脂蛋白受体配基结合结构域的基因片段。核酸测序分析表明克隆到的DNA片段的序列与报道的人LDLR的cDNA序列相同。然后构建了甲醇酵母表达质粒pPIC9K sLDLr ,并将其线性化后用电穿孔法导入PichiapastorisGS115。分别用SDS PAGE、Westernblot和Ligandbindingblot对GS115 pPIC9K sLDLr上清中的重组sLDLR进行鉴定。SDS PAGE和Westernblot分析表明表达的sLDLR的表观分子量为 36kD。Ligandbindingblot分析表明表达的sLDLR具有配基结合的生物学活性     

兔主动脉平滑肌细胞低密度脂蛋白受体相关蛋白(LRP)的诱导表达调节

在兔主动脉平滑肌细胞 ( SMC)培养基中分别加入正常低密度脂蛋白 ( N- LDL)、氧化低密度脂蛋白 ( ox- LDL)、正常极低密度脂蛋白 ( N- VLDL)、氧化极低密度脂蛋白 ( ox- VLDL)和 β-极低密度脂蛋白 (β- VLDL )培养 2 4 h后 ,用定量 RT- PCR和配体结合实验检测平滑肌细胞 LRP的m RNA和蛋白质水平的表达 .结果表明 :五种脂蛋白均能在转录和翻译水平诱导兔主动脉平滑肌细胞的 LRP表达 ,尤以富含胆固醇的 N- LDL ,ox- LDL和β- VLDL的刺激作用更明显 .用胆固醇单独或与脂蛋白共同温育 SMC后 ,发现胆固醇本身可促进 SMC的 LRP蛋白水平的表达 ,脂蛋白与胆固醇的共同刺激作用更为显著 .结果提示 :上述五种脂蛋白对 SMC上 LRP的表达有上调作用 ,其机制可能主要是通过其中的胆固醇来实现的 .     

氧化低密度脂蛋白对THP-1巨噬细胞吞噬和分泌功能的影响

目的:探讨氧化低密度脂蛋白(oxidized low density lipoprotein,ox-LDL)对巨噬细胞源性泡沫细胞吞噬功能和炎症相关因子分泌功能的影响。方法:利用佛波酯(phorbol ester,PMA)诱导THP-1细胞分化形成巨噬细胞,之后采用ox-LDL处理48小时后,诱导其形成泡沫细胞。利用中性红吞噬实验,分析泡沫细胞形成前后吞噬功能的变化;通过ELISA法,检测细胞培养上清中肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factorα,TNF-α)含量,观察ox-LDL对THP-1巨噬细胞功能的影响。结果:细胞形态学结果表明,我们成功利用ox-LDL诱导THP-1巨噬细胞形成泡沫细胞;进一步发现ox-LDL诱导THP-1巨噬细胞表面的清道夫受体CD36表达升高,并促进细胞吞噬功能增加,进一步促进细胞内胆固醇含量显著升高(P0.05);同时,ox-LDL能够刺激巨噬细胞大量分泌TNF-α(P0.05)。结论:ox-LDL通过增强清道夫受体CD36表达,提高巨噬细胞的吞噬功能,引起大量胆固醇聚集,产生细胞毒性损伤,并促进TNF-α炎性因子的大量分泌。     

CideB Protein Is Required for the Biogenesis of Very Low Density Lipoprotein (VLDL) Transport Vesicle

Nascent very low density lipoprotein (VLDL) exits the endoplasmic reticulum (ER) in a specialized ER-derived vesicle, the VLDL transport vesicle (VTV). Similar to protein transport vesicles (PTVs), VTVs require coat complex II (COPII) proteins for their biogenesis from the ER membranes. Because the size of the VTV is large, we hypothesized that protein(s) in addition to COPII components might be required for VTV biogenesis. Our proteomic analysis, supported by Western blotting data, shows that a 26-kDa protein, CideB, is present in the VTV but not in other ER-derived vesicles such as PTV and pre-chylomicron transport vesicle. Western blotting and immunoelectron microscopy analyses suggest that CideB is concentrated in the VTV. Our co-immunoprecipitation data revealed that CideB specifically interacts with VLDL structural protein, apolipoprotein B100 (apoB100), but not with albumin, a PTV cargo protein. Confocal microscopic data indicate that CideB co-localizes with apoB100 in the ER. Additionally, CideB interacts with COPII components, Sar1 and Sec24. To investigate the role of CideB in VTV biogenesis, we performed an in vitro ER budding assay. We show that the blocking of CideB inhibits VTV budding, indicating a direct requirement of CideB in VTV formation. To confirm our findings, we knocked down CideB in primary hepatocytes and isolated ER and cytosol to examine whether they support VTV budding. Our data suggest that CideB knockdown significantly reduces VTV biogenesis. These findings suggest that CideB forms an intricate COPII coat and regulates the VTV biogenesis.     

Very Low Density Lipoprotein Receptor (VLDLR) Expression Is a Determinant Factor in Adipose Tissue Inflammation and Adipocyte-Macrophage Interaction

Obesity is associated with adipose tissue remodeling, characterized by adipocyte hypertrophy and macrophage infiltration. Previously, we have shown that very low density lipoprotein receptor (VLDLR) is virtually absent in preadipocytes but is strongly induced during adipogenesis and actively participates in adipocyte hypertrophy. In this study, we investigated the role of VLDLR in adipose tissue inflammation and adipocyte-macrophage interactions in wild type and VLDLR-deficient mice fed a high fat diet. The results show that VLDLR deficiency reduced high fat diet-induced inflammation and endoplasmic reticulum (ER) stress in adipose tissue in conjunction with reduced macrophage infiltration, especially those expressing pro-inflammatory markers. In adipocyte culture, VLDLR deficiency prevented adipocyte hypertrophy and strongly reduced VLDL-induced ER stress and inflammation. Likewise, cultures of primary peritoneal macrophages show that VLDLR deficiency reduced lipid accumulation and inflammation but did not alter chemotactic response of macrophages to adipocyte signals. Moreover, VLDLR deficiency tempered the synergistic inflammatory interactions between adipocytes and macrophages in a co-culture system. Collectively, these results show that VLDLR contributes to adipose tissue inflammation and mediates VLDL-induced lipid accumulation and induction of inflammation and ER stress in adipocytes and macrophages.