云南美登木悬浮培养细胞的化学成分

利用组织培养方法以云南美登木（Maytenus hookeri Lose.）未木质化的茎和嫩叶为材料诱导出愈伤组织,经过继代培养建立了悬浮细胞培养系,培养物的乙酸乙酯提取物显示抗橙色青霉（Penicillium avellaneum UC-4376）生长的生物活性。对培养物进行化学成分研究,分离鉴定了9个化合物,2,3-diacetoxyl maytenusone(1)、角鲨烯（squa-lene,2）、β-谷甾醇（β-sitosterol,3)、2′,3′,4′-triacetylsitoindoside I(4)、salaspermic acid(5)、美登酮酸（maytenonic acid,6)、2α-羟基美登酮酸（2α-hydroxy-maytenonic acid,7)、6,11,12-trihydroxy-8,11,13-abietrien-7-one（8）和11,12-dihydroxy-8,11,13-abietrien-7-one（9）,其中化合物1为新化合物,通过2D NMR对化合物5-7的NMR数据进行了全指定,并修正了化合物5和6的部分碳谱数据指定。     

云南美登木悬浮培养细胞的化学成分

利用组织培养方法以云南美登木(Maytenus hookeri Lose.)未木质化的茎和嫩叶为材料诱导出愈伤组织,经过继代培养建立了悬浮细胞培养系.培养物的乙酸乙酯提取物显示抗橙色青霉(Penicillium avellaneum UC-4376)生长的生物活性.对培养物进行化学成分研究,分离鉴定了9个化合物:2,3-diacetoxyl maytenusone (1)、角鲨烯 (squalene,2)、β-谷甾醇 (β-sitosterol,3)、2′,3′,4′-triacetylsitoindoside Ⅰ (4)、salaspermic acid (5)、美登酮酸 (maytenonic acid,6)、2α-羟基美登酮酸(2α-hydroxy-maytenonic acid,7)、6,11,12-trihydroxy-8,11,13-abietrien-7-one (8)和11,12-dihydroxy-8,11,13-abietrien-7-one (9),其中化合物1为新化合物.通过2D NMR对化合物5-7的NMR数据进行了全指定,并修正了化合物5和6的部分碳谱数据指定.     

云南红豆杉细胞的悬浮培养

在云南经豆杉细胞悬浮培养中,适宜的增减基为Ｂ５,接种量为０．５－０．８ｇ干重细胞／１００ｍｌ培养基,２,４－Ｄ浓度为１．０ｍｇ／Ｌ;培养细胞的生长周期约３０ｄ;增减基中较高浓度的蔗糖（４０ｇ／Ｌ）可提高紫杉醇含量;添加的椰子汁（ＣＭ）、酪蛋白氨基酸（ＣＡ）和水解乳蛋白（ＬＨ）３种有机添加剂均能提高培养细胞中紫杉醇的含量,但只有ＣＭ和ＣＡ能促进细胞的生长。于Ｂ５培养基中添国不同浓度的ＮＨ４ＮＯ３对培     

云南美登木组织培养及其化学成分的初步研究

以云南美登木 (MaytenushookeriLoes)的茎尖、嫩叶和叶柄为材料建立了其愈伤组织培养系统 ,并对愈伤组织的化学成分进行了初步研究。从中分离得到了 5个化合物 ,经波谱分析分别鉴定为 β 谷甾醇 (1) ,胡萝卜甙 (2 ) ,sitoindosideⅠ (3) ,五层籽酸 (4)和 2α 羟基美登酮酸 (5 )。云南美登木为提取抗癌化合物美登木素的原料植物 ,对其愈伤组织的化学成分进行研究报道还属首次。     

云南红豆杉细胞的悬浮培养

在云南红豆杉细胞悬浮培养中,适宜的培养基为B5,接种量为0．5～0．8g干重细胞／100ml培养基,2,4－D浓度为1．0mg／L;培养细胞的生长周期约30d;培养基中较高浓度的蔗糖（40g／L）可提高紫杉醇含量;添加的椰子汁（CM）、酪蛋白氨基酸（C）和水解乳蛋白（LH）3种有机添加剂均能提高培养细胞中紫杉醇的含量,但只有CM和CA能促进细胞的生长。于B5培养基中添加不同浓度的NH4NO3对培养细胞无明显影响。     

美登木内生真菌lr88蒽醌类代谢产物的研究

美登木内生真菌lr88采自云南西双版纳美登木的叶中.从该菌的固体培养物中分离得到3个蒽醌类成分,通过波谱分析鉴定为1-羟基-8-甲氧基蒽醌(1),1,3,6,8-四羟基蒽醌(2)及1,8-二羟基蒽醌(3).     

水杨酸诱导美登木悬浮细胞产生脂氧合酶及多羟基脂肪酸的研究

水杨酸 (SA)可诱导云南美登木 (Maytenushookeri)悬浮培养细胞产生 9 脂氧合酶(9 lipoxygenase ,9 LOX)。通过LC ESI MS测定SA诱导下悬浮培养系中多羟基脂肪酸的含量变化 ,发现用浓度为 80 0 μmol L的SA诱导培养 18h ,悬浮细胞产生最大量的三羟基十八碳烯酸。同时 ,通过对比不同羟基十八碳烯酸含量的变化 ,推测在SA诱导下 ,9 LOX介导的十八碳酸途径中有环氧中间体的生成。     

利用云南红豆杉悬浮细胞生产紫杉醇和紫杉烷类化合物(英文)

云南红豆杉 (TaxusyunnanensisChengetL .K .Fu)的一株紫杉醇高产细胞系经过 8年多的继代培养 ,仍保持较稳定的紫杉烷类化合物的生物合成能力。从此株紫杉醇高产细胞系的悬浮培养物中分离到 8个紫杉烷类化合物 ,经核磁共振光谱和质谱数据分析 ,它们的化学结构分别是 2 ,5 ,10_三乙酰氧基_14_丙酰氧基紫杉二烯 (1)、2 ,5 ,10_三乙酰氧基_14_(2′_甲基丙酰氧基 )紫杉二烯 (2 )、2 ,5 ,10 ,14_四乙酰氧基紫杉二烯 (3)、2 ,5 ,10_三乙酰氧基_14_(2′_甲基_3′_羟基丁酰氧基 )紫杉二烯及其差向异构体 (4和 5 )、巴卡亭Ⅳ (6 )、巴卡亭Ⅲ (7)和紫杉醇 (8)。化合物 3、5 - 7为首次从云南红豆杉细胞培养物中分离到。定性分析表明 ,云南红豆杉细胞悬浮培养液中的化学成分与培养细胞中的相似。另外 ,此株紫杉醇高产细胞系的紫杉醇含量可高达 0 .3% ,可用来进行大规模培养     

培养基和培养条件对栀子悬浮细胞合成多糖的影响

对栀子悬浮细胞合成多糖的调控因子研究表明 :B5为最适培养基 ;5～10d继代周期的细胞可以保持良好的生长状态和多糖的合成能力 ;80g L的鲜细胞的接种量有利于栀子细胞的生长和多糖的合成 ;使用单一碳源时 ,葡萄糖比蔗糖对细胞生长更有益 ,但葡萄糖成本高 ,因而混合碳源 45g L(葡萄糖 :蔗糖 =1∶1)是最佳配方 ;氮源种类对细胞生长和多糖合成没有明显的影响 ,但氮源浓度是主要因素 ,40～50mmol L是最佳浓度 ,同时运用悬浮细胞生产栀子多糖可以通过在不同时间收获的细胞来避免提取时黄色素的干扰 ,具有很好的实际意义。     

Chemical Constitutents of the Suspension Cell Cultures of Maytenus hookeri

Suspension cell cultures of Maytenus hookeri Loes. (Celastraceae) in SH media were established from the calli induced from the leaves and young stems of M. hookeri on MS media with the supplement of 2 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L KIN (kinetin). Ethyl acetate extract of the cultures showed inhibitory activities against Penicillium avellaneum UC-4376 which was sensitive to maytansinoids. Exhaustive isolation of natural products from a large scale of suspension cell cultures did not yield maytansine instead of affording nine compounds including one novel triterp enoid, named 2,3-diacetoxyl maytenusone (1), and eight known ones including squalene (2), β-sitosterol (3), 2′,3′,4′-triacetyl-sitoindoside Ⅰ (4), salaspermic acid (5), maytenonic acid (6), 2α-hydroxy-maytenonic acid (7), 6,11,12-trihydroxy 8,11,13-abietrien-7-one (8) and 11,12 dihydroxy 8,11,13 abietatrien 7 one (9) elucidated on the basis of 1D and 2D-NMR data. The 1H-NMR and 13C-NMR assignments were made for 1, 5, 6 and 7, while the 13C-NMR assignments for 5 and 6 were revised. The chemical results suggested that the suspension cell cultures of M. hookeri did not produce maytansinoids under the reported experiment conditions.     

New chemical constituents from the endophyte Streptomyces species LR4612 cultivated on Maytenus hookeri

From solid cultures of the biologically important endophyte Streptomyces species LR4612, cultivated on Maytenus hookeri, four new and two known compounds were isolated. The new compounds were identified as (2S*,3S*)-5-amino-3-hydroxy-5-oxopentan-2-yl 3-(formylamino)-2-hydroxybenzoate (1), N-[(3R*,4R*)-3-amino-3,4-dihydro-4-methyl-2,6-dioxo-2H,6H-1,5-benzodioxocin-10-yl]formamide (2), (5beta,6alpha)-6,11-dihydroxyeudesmane (3), and 5-(6,7-dihydroxy-6-methyloctyl)furan-2(5H)-one (4); the known compounds were elucidated as sorbicillin (5) and N-acetyltyramine (6). The structures were established by HR-ESI-MS and in-depth NMR analyses.     

云南美登木内生真菌Beauveria sp.Lr89中的两个环肽

从云南美登木(Maytenus hookeri Loes.)的根部分离到内生真菌Lr89,根据ITS序列分析,鉴定为白僵菌属(Beauveria)真菌。在PDA琼脂平板发酵物中分离得到2个环肽类化合物,经波波谱鉴定为isaridin A(1)和isariin B(2),本文首次报道了这两个化合物的13C NMR数据。     

长春花悬浮培养细胞对天麻素的生物转化

应用长春花(Catharanthus roseus (L.) G. Don)悬浮细胞培养体系对天麻素进行了生物转化反应研究.经过8 d培养形成一个转化产物,应用光谱方法鉴定转化产物的结构为对羟基苯甲醇,为天麻素水解后形成的甙元.     

利用云南红豆杉悬浮细胞生产紫杉醇和紫杉烷类化合物

云南红豆杉(Taxus yunnanensis Cheng et L. K. Fu)的一株紫杉醇高产细胞系经过8年多的继代培养,仍保持较稳定的紫杉烷类化合物的生物合成能力.从此株紫杉醇高产细胞系的悬浮培养物中分离到8个紫杉烷类化合物,经核磁共振光谱和质谱数据分析,它们的化学结构分别是2,5,10-三乙酰氧基-14-丙酰氧基紫杉二烯(1)、 2,5,10-三乙酰氧基-14-(2′-甲基丙酰氧基)紫杉二烯(2)、 2,5,10,14-四乙酰氧基紫杉二烯(3)、 2,5,10-三乙酰氧基-14-(2′-甲基-3′-羟基丁酰氧基)紫杉二烯及其差向异构体(4和5)、巴卡亭Ⅳ(6)、巴卡亭Ⅲ (7)和紫杉醇(8).化合物3、 5-7为首次从云南红豆杉细胞培养物中分离到.定性分析表明,云南红豆杉细胞悬浮培养液中的化学成分与培养细胞中的相似.另外,此株紫杉醇高产细胞系的紫杉醇含量可高达0.3%,可用来进行大规模培养.     

Biotransformation of 3b-Hydroxyandrost-5-en-17-one by Cell Suspension Cultures of Catharanthus roseus

Catharanthus roseus (L.) G. Don cell suspension cultures were used to transform 3b-hydroxyandrost-5-en-17-one, the products were isolated by chromatographic methods. Their structures were established by means of NMR and MS spectral analyses. Nine metabolites were respectively elucidated as: androst-4-ene-3,17-dione (Ⅰ), 6a-hydroxyandrost-4-ene-3,17-dione (Ⅱ), 6a,17b-dihydroxyandrost-4-en-3-one (Ⅲ), 6b-hydroxyandrost-4-ene-3,17-dione (Ⅳ), 17b-hydroxyandrost-4-en-3-one (Ⅴ), 15a,17b-dihydroxyandrost-4-en-3-one (Ⅵ), 15b,17b-dihydroxyandrost-4-en-3-one (Ⅶ), 14a-hydroxyandrost-4-ene-3,17-dione (Ⅷ), 17b-hydroxyandrost-4-ene-3,16-dione (Ⅸ). It is the first time to obtain the above compounds by biotransformation with Catharanthus roseus cell cultures.