三角叶滨藜的组织培养和植株再生

1　植物名称　三角叶滨藜 (Atriplextriangu laris)。2　材料类别　无菌苗的子叶。3　培养条件　培养基 :( 1 )MS + 6 BA 1mg·L- 1(单位下同 ) + 2 ,4 D 1 ;( 2 )MS + 6 BA 1 +NAA 1 ;( 3)MS + 6 BA 1 +IBA 1 ;( 4 )MS + 6 BA 1 +IAA1 ;( 5 )MS + 6 BA 0 .5 +IAA 0 .1 +GA 0 .2 ;( 6)MS + 6 BA 0 .5 +IAA 0 .4+GA 2 ;( 7)MS + 6 BA1 +IAA 0 .2 +GA 2 ;( 8)MS + 6 BA 1 +IAA 0 .4+GA 2 ;( 9) 1 /2MS +IAA 2 ;( 1 0 ) 1 /2MS。上述培养基 ( 1 )～ ( 4 )加CH(水解酪蛋白 ) 2 0 0、45 g·L- 1 蔗糖 ,( 5 )～ ( 8…     

激素对洋桔梗植株再生的影响及生根培养的研究

以MS为基本培养基 ,附加不同浓度的 6 BA、KT、NAA和IBA诱导洋桔梗叶片外植体的再生植株。结果表明 :MS +6 BA 0 .5～ 1 .0mg/L(单位下同 ) +NAA 0 .2和MS +6 BA 0 .5～ 1 .0 +IBA 0 .2培养基都能诱导外植体产生愈伤组织 ,但 6 BA的浓度必须小于 1 .0mg/L ,否则会导致组织的严重玻璃化 ;MS +KT 1 .0～2 .0 +NAA 0 .2或MS +KT 1 .0～ 2 .0 +IBA 0 .2培养基也能诱导外植体产生愈伤组织 ,愈伤组织出现的时间较早且质地较好 ,适合分化。继代培养时 ,MS培养基中仅加 6 BA 0 .5mg/L或KT 0 .5mg/L ,即能获得较高的分化率。生根培养研究中 ,培养液为 1 /2MS+5 0g/L糖 +IBA 2mg/L的前处理 ,生根效果较好 ,生根率接近基质生根培养的生根率。     

木立芦荟组织培养pH分化特性及快速繁殖的研究

以木立芦荟的叶片、叶鞘、带腋芽的茎段为外植体进行试管培养 ,结果叶鞘和茎段可诱导形成愈伤组织 ,腋芽直接萌生。经试验筛选出各培养阶段最适宜的培养基为 :( 1 )愈伤组织诱导 ,MS BA 2 .5mg/L NAA0 .1 5mg/L ;( 2 )腋芽萌生 ,MS BA 2 .0mg/L NAA 0 .1 5mg/L ;( 3 )丛生芽分化及继代 ,MS BA 2 .0mg/L NAA0 .1 0mg/L ;( 4)生根 ,MS BA 0 .3～ 0 .5mg/L IBA 0 .2mg/L 活性碳 0 .5%。研究还发现 ,培养基酸碱度对木立芦荟组织培养分化效果的影响非常显著。     

圆柏组织培养繁殖研究

用5年生圆柏幼嫩茎段为外植体,研究植物生长调节剂对试管苗的调控作用及增殖效果,结果表明:在1/2MS+BA0.5mg/L+NAA0.5mg/L+IBA0.2mg/L的培养基上,试管苗分化率为95.0%,生长发育良好,在MS+BAI.omg/L+NAA0.cling/L的培养基上,增殖效果较好。     

马蹄金的组织培养和植株再生

1　植物名称　马蹄金 (Dichondrarepens)。2　材料类别　下胚轴 (hypocotyl)、子叶 (cotyle don)、叶片 (leaf)和叶柄 (petiole)。3　培养条件　无菌苗培养基 :(1)MS。愈伤组织诱导培养基 :(2 )MS +2 ,4 D 1mg·L- 1(单位下同 ) +NAA 1+6 BA 0 .2 +KT 0 .2 ;(3)MS +2 ,4 D 1+6 BA 0 .2 ;(4 )MS +2 ,4 D 1+KT 0 .2 ;(5 )MS +NAA0 .5 +ZT 0 .2 ;(6 )MS +NAA 0 .5 +6 BA 0 .5 ;(7)MS +2 ,4 D 0 .2 +6 BA 0 .5 ;(8)MS +2 ,4 D 1+6 BA 0 .5 ;(9)MS +2 ,4 D 1+NAA 0 .5 +6 BA 0 .2 +KT 0 .2。愈伤组织分化培…     

红根草的组织培养与快速繁殖研究

研究了红根草不同采集季节、外植体类型与消毒效果,不同激素浓度和激素组合与芽及根的诱导,及试管苗的移栽。结果表明,不同外植体类型消毒效果为茎节>茎尖>植株抽茎前的生长点;4~6月份采样最佳;MS+BA0.8~1.6mg/L+NAA0.2mg/L、MS+BA0.2mg/L+NAA0.02mg/L、MS+NAA1.0mg/L分别用于初代、继代、生根培养效果最好;试管苗移栽成活率达90%。     

八角莲组织培养研究

以八角莲种子为外植体,MS为基本培养基,通过不同的激素种类和浓度配比,对八角莲进行组织培养研究。结果表明:种子在MS+BA1.0mg/L+IBA0.5mg/L+GA34.0mg/L培养基上容易萌芽,发芽率为72.4 %;培养基MS+BA10.0mg/L+GA30.5 mg/L可诱导种子幼苗形成丛生芽;继代繁殖在MS+BA(8.0～10 .0)mg/L+GA32 .0mg/L与低浓度BA或无BA的培养基上进行循环培养效果较好;MS+NAA1.0 mg/L+AC0.2g/L适宜诱导生根获得再生植株,生根率100%。带叶叶柄在MS+BA1.0mg/L+2-ip(0.5～1.0) mg/L+NAA0.02 mg/L培养基上可诱导愈伤及根,直接形成再生植株。生根苗移栽成活率90 %。     

银河I号杨叶外植体再生体系建立

以银河 号杨 (Populus alba× P.hopeiensis)无菌试管苗叶片为外植体 ,建立了叶片外植体快速繁殖的培养程序。实验结果表明 ,MS附加 6 - BA∶ IAA(5∶ 1 )、每天 1 4h光照 ,可诱导离体叶片产生大量不定芽 ,且生根试管苗叶片的不定芽分化率明显高于无根试管苗。不定芽长至 1 cm以上时切下后转至 1 /2 MS附加 IBA 0 .2 mg/L的培养基上 ,可生根而形成完整的再生植株     

罗汉果叶片离体再生快繁技术

以罗汉果(Ssiraiti grosvenori)叶片为外植体,探讨培养方式、激素组合对愈伤组织诱导和不定芽分化的影响。结果表明:罗汉果叶片在培养基MS+BA 1.0 mg/L+IBA 0.7 mg/L上培养4周愈伤组织的诱导率达90%以上;罗汉果愈伤组织在培养基MS+BA 1.0 mg/L+IBA0.2 mg/L+赛苯隆(TDZ)0.1 mg/L上不定芽的分化率可达70%,平均出芽指数3.7;罗汉果试管苗在培养基MS+BA 2.0 mg/L+IBA 0.2 mg/L上茎芽增殖比较稳定,在培养基MS+IBA0.1 mg/L上培养2周开始分化不定根,其生根率在90%以上。     

香附子块茎试管苗繁殖

以香附子块茎为材料,用组织培养的方法,进行试管苗繁殖研究。结果表明,1/3MS+炉灰渣培养基是块茎生长芽培养的适宜培养基;1/2MS+ZT 0.6 mg/L+NAA 0.1 mg/L是生长芽分化和继代分化繁殖培养的适宜培养基;1/2MS+ABT 2号6 mg/L+IAA 0.4 mg/L是生根和试管苗微型块茎培养的适宜培养基。培养30 d试管苗移栽成活率96%;培养60 d试管苗移栽成活率89.7%;种植的块茎发芽率99.8%;试管苗和微型块茎定植的成活率在99%以上;定植试管苗保持了香附子的植物学特征。     

草木樨状黄芪高频离体再生体系的建立

以草木樨状黄芪无菌苗茎切段为材料,在含１－２mg/L2,4-D和０－０．５mg/L６ＢＡ的MS培养基上培养获得大量愈伤组织,愈伤组织诱导率在９５％以上,愈伤组织在附加０．２mg/LＫＴ,１mg/L６ＢＡ,０或０．５mg/LＮＡＡ,５００mg/LＣＨ 和２００mg/L ＹＥ的ＭＳ培养基上诱导丛生芽,并进而发育成苗。苗的分化频率为１００％。分化苗或其茎的切段在不国源植物激素的１／２ＭＳ培养基上可出现根的分化,分化频率达９０％以上,再生植株经炼苗后移栽成活率达８０％以上。     

马尾松成熟合子胚的体细胞胚胎发生和植株再生

采用马尾松（Ｐｉｎｕｓｍ ａｓｓｏｎｉａｎａ Ｌａｍ ｂ．）成熟合子胚为起始外植体,在含２,４－Ｄ １０ ｍ ｇ／Ｌ,ＫＴ和ＢＡ 各４ ｍ ｇ／Ｌ的ＤＣＲ培养基上得到胚发生培养物。将白色半透明的愈伤组织（含早期原胚）在含２,４－Ｄ１．０ ｍ ｇ／Ｌ,ＫＴ和ＢＡ 各０．４ ｍ ｇ／Ｌ的ＤＣＲ培养基上保持并增殖。在附加９０００ ｍ ｇ／Ｌ肌醇的ＤＣＲ高渗培养基上得到粗壮的后期原胚。ＡＢＡ 和活性炭同时使用能促进子叶胚的形成,最高频率为３５．１％ 。在无激素培养基上,成熟体细胞胚萌发并进一步形成完整小植株     

播娘蒿下胚轴高频率再生植株因素的研究

以播娘蒿（Descurainia sophia)下胚轴为外植体,研究影响其分化的若干因素。结果表明：用附加2,4－D的培养基,对下胚轴切段预培养5d可提高分化频率;1.7mg/L AgNO3对分化出芽有很大促进作用,最佳激素组合为2.0mg/L 6-BA 0.2mg/L NAA;黄化苗的下胚轴比绿苗的下胚轴对激素反应更敏感,最高分化频率可达86.05%。再生芽转至1／2MS 0.5mg/L NAA 0.5mg/L IBA的培养基中,生根率100％。     

海甘蓝愈伤组织再生植株的研究

海甘蓝种子在附加有２～５ｍｇ／Ｌ６－ＢＡ＋０１ｍｇ／ＬＮＡＡ的ＭＳ培养基上,幼苗生长健壮。幼苗的下胚轴和子叶柄在ＭＳ＋１ｍｇ／Ｌ２,４－Ｄ＋０５ｍｇ／Ｌ６－ＢＡ的培养基上可以获得较好的愈伤组织。将来源于下胚轴的愈伤组织培养于含有０５ｍｇ／ＬＮＡＡ,２ｍｇ／Ｌ６－ＢＡ的ＭＳ培养基上分化出的丛生芽状态最好。最佳生根培养基为１／２ＭＳ＋０５ｍｇ／ＬＢＡ。     

特大‘新红宝’西瓜的快速繁殖研究

利用新红宝西瓜种子、茎段、茎尖及腋芽为外植体,接种子改良的ＭＳ培养基上。种子经常规消毒灭菌后,７—１５ｄ后可获得９５％以上的健壮无菌苗．苗高３ｃｍ─５ｃｍ时即可用于有关实验。接种６ｄ后,茎段两端切口处膨大,２８—３５ｄ后出现愈伤组织,出愈率达到６８％。接种５ｄ后,茎尖明显长大。在本实验的激素组合中．３５ｄ后,茎尖周围均出现了不同数量的腋芽。最好的组合为改良的ＭＳ＋２．５ｍｇ／ＬＢＡ＋ＩＡＡ１ｍｇ／Ｌ,可使一个茎尖在３５—４２ｄ后扩增为１８─２１个芽并逐渐长成无根苗。４７ｄ后,转入改良ＭＳ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ培养基中．生根率达到９４％以上。２８ｄ后,将苗移到田间,第一批移苗５００株,成活４３８株,成活率达到８７．６％。     

一种快速有效的741杨离体叶片再生芽方法

在对杂交品种741杨(Populus alba(P.davidiana×P.simonii)×P.tomentosa)进行农杆菌介导法转基因的试验中发现了一种快速有效的叶片再生芽的方法.首先叶片外植体在培养基Ⅰ(MS培养基添加0.5 mg/L BA和1.0 mg/L 2,4-D)上培养2～3 d,再转移到培养基SH(MSmedium containing 2.0 mg/L of BA and 0.1 mg/L of NAA)上培养10 d,然后再转移到培养基Ⅱ(MSmedium with 0.5 mg/L of BA)上,培养大约5 d之后86.7%的叶片外植体产生的芽,每片叶片外植体(1 cm×1 cm)可产生40～50个芽.但是,如果叶片外植体在培养基Ⅰ上培养的时间长于5 d,再依次转移到培养基SH和Ⅱ上,则叶片会产生大量根.     

湿地松体细胞胚胎发生和植株再生

以湿地松的未成熟合子胚为外植体,在附加８ｍｇ／Ｌ,２,４－Ｄ和４ｍｇ／Ｌ ＢＡ的ＬＰ培养基上诱导出胚性愈伤组织。在含１ｍｇ／Ｌ,２,４－Ｄ和０．５ｍｇ／Ｌ ＢＡ的培养基上保持并增殖。提高培养基的渗透压后,愈伤组织内大量的胚性胚柄细胞团和早期原胚。     

Regeneration of grape (Vitis labruscana cv. Kyoho) by shoot-tip culture

We investigated the optimal levels of growth regulators, culture media, and pH on callus growth and organogenesis of in-vitro cultured ‘Kyoho’ grapes. Calli were induced by culturing leaf blades on an MS basal medium supplemented with 1 mg/IL BA and 0.01 mg/L 2,4-D. In addition, calli originating from the exocarp and mesocarp of grape fruits devel-oped on MS media supplemented with 0.1 mg/L IAA, NAA, or 2,4-D, or with 0.2 mg/L BA. In testing the potential for plant regeneration from shoot tips on various media, we found that the Nitsch medium, with I mg/L BA, was optimal for caulogenesis. The type of shoot development depended on the pH of the medium, with vigorous multiple-shoot devel-opment occurring at pH 6.0, and single shoots forming at pH 5.0. Finally, we were able to obtain rooted seedlings from the regenerated shoots that had been cultured on 1/4-strength Nitsch medium supplemented with 0.03 mg/L NAA.     

Mesophyll Protoplast Culture and Plant Regeneration of Oriental Planetree (Platanus orientalis)

Large populations of mesophyll protoplasts were released from the leaves of 1.5–2 month old sterile seedlings, with a high protoplast yield (3.7× 10 6g-1FW) after protoplast purification. The purified protoplasts were cultured in a modified K8p liquid medium supplemented with 0.5 mg/L 2,4-D, 1 mg/L NAA and 0.5 mg/L BA. Higher density (1× 106/ml) in the initial culture of protoplasts is favourable to the division of cultured mesophyll protoplasts of this woody species among the densities tested. The protoplasts started to divide after 6 days of culture, and achieved 26.8% division frequency by 14 days. Sustained divisions resulted in mass production of cell colonies and small calli in 8 weeks. The calli further grew to 2–3mm on the gelrite-solidified K8 medium supplemented with 0.2 mg/L NAA aud 0.5 mg/L BA. Then, they were transferred onto the MSB proliferation medium with 0.1 mg/L NAA and 0.25 mg/L BA, where compact and cream-coloured calli were formed. Shoot formation was initiated on MSB differentiation medium coraming 0.5 mg/L IAA, 1 mg/L each of BA and ZT. It was observed that the frequency of shoot formation was about 28.7%. Whole plantlets were regenerated upon transferring 3 cm shoots to 1/2MS medium with 0.5mg/L IBA and 0.1mg/L BA, from which they were already transplanted into pots and grew well in the phytotron of Shanghai Institute of Plant Physiology.