RAPD分析用白花丹参叶片DNA的提取方法

本研究采用改良CTAB法和SDS法提取新鲜白花丹参叶片的基因组DNA,初步筛选RAPD扩增引物。结果表明改良CTAB法提取的DNA较SDS法质量好,随机引物p2扩增条带相对较为清晰。再利用p2随机引物对2种方法提取的DNA进行RAPD检测比较,结果显示仅改良CTAB法能扩增出有效条带,说明改良CTAB法更适合用于白花丹参基因组DNA的RAPD检测分析。本文将为白花丹参叶片DNA的提取提供方法学参考。     

湖泊沉积物基因组DNA的提取方法比较研究

水体沉积物为一新型微生物种质资源库,不依赖于培养的菌种多样性研究的首要条件是获取优质的基因组DNA。本研究以改进的氯仿异戊醇法、蛋白酶K+SDS法、玻璃珠+蛋白酶K+SDS法提取湖泊基因组DNA,并与试剂盒提取结果进行比较,为沉积物分子生态学的研究提供参考和借鉴。结果表明,改进后的氯仿异戊醇法提取的DNA纯度较低,腐殖质明显,纯化后PCR产量较低;蛋白酶K+SDS法获得的DNA完整性较好,浓度高,PCR扩增应用效果最好;玻璃珠+蛋白酶K+SDS法提取的基因组DNA效果次之;试剂盒法提取的基因组DNA浓度较低,片段长度略小。蛋白酶K+SDS法为除试剂盒外适合于湖泊沉积物基因组DNA提取的较好方法。     

蔓茎堇菜基因组DNA 3种提取方法的比较研究

以SDS作为解离剂,采用常规SDS法、改进的SDS法及SDS高盐低pH法分离提取蔓茎堇菜基因组DNA.比较3种方法的提取效果,结果表明：常规SDS法DNA得率高但完整性及纯度较差;改进的SDS法DNA质量好但得率相对较低;只有SDS高盐低pH法是最为理想的提取方法,不同组织提取的DNA相对分子质量均大于48 kb,260 nm/280 nm光密度比值在1.7～1.9之间,产率为479.0～543.9μg/g,所得DNA可直接用于限制性内切酶酶切,并适于进行RAPD分析.     

适合于胞质基因组扩增的红麻成熟叶片DNA提取改良方法

为了从成熟红麻叶片中提取高质量、高产量的基因组DNA,针对红麻成熟叶片中多糖、多酚含量较高的特性,利用改良CTAB法及改良SDS法分别提取红麻品种福红952成熟叶基因组DNA,并通过琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计测定进行DNA质量检测。结果表明:改良CTAB法提取的基因组DNA电泳时点样孔干净,条带整齐无拖带,OD260/OD280为1.9左右,产率可达1.84μg/g,其质量、产量都高于改良SDS法,所提取的DNA可用于红麻RAPD分子标记、线粒体DNA、叶绿体DNA通用引物PCR扩增。改良CTAB法是提取成熟红麻叶片DNA的有效方法,并且可用于红麻分子标记及胞质基因组学研究。     

金丝小枣基因组DNA的优化提取方法

采用SDS和CTAB两种方法分离提取金丝小枣基因组DNA,并比较其提取效果。结果表明,改进后的CTAB法可获得高质量、高得率的基因组DNA,可用于金丝小枣的各种分子生物学研究。     

单粒干燥大豆种子基因组DNA提取的有效方法

大豆基因组DNA的提取是进行大豆分子生物学研究的基础.以大豆干燥的种子为材料,将SDS法和CTAB法结合在一起并进行了一定的改进,有效的提取了基因组DNA.通过电泳、紫外分光光度计检测和ISSR标记分析验证这种方法是提取大豆干种子基因组DNA的有效方法.     

小型昆虫DNA提取时匀浆方法的改进

应用改进的方法方便地提取了高质量的单头蚜虫基因组DNA ,有助于解决小型昆虫研究工作中单头虫体的DNA提取困难问题     

油用牡丹‘凤丹’叶片DNA提取方法研究

以新鲜的牡丹叶片为材料,采用CTAB法、SDS法以及改良CTAB法提取基因组DNA,通过紫外光谱分析法、琼脂糖凝胶电泳等检测方法对牡丹基因组DNA的提取方法进行筛选。在这三种DNA提取方法中,SDS法略好于CTAB法。SDS法DNA得率虽低,但其纯度高,去糖去蛋白等杂质比较干净,且在未加RNA酶的情况下,RNA污染较少。改良CTAB法浓度比CTAB法增大,但纯度仍低于SDS法。所以,牡丹叶片DNA的最佳提取方法为SDS法。     

松科植物基因组总DNA提取方法的比较

目的:研究对比了用不同方法提取红松、樟子松和红皮云杉等3种松科植物叶片基因组DNA的效果,以寻找适合提取松科植物叶片基因组DNA的方法。方法:分别比较了用传统的CTAB法、SDS法以及3种改良的CTAB法提取的上述3种松科植物叶片基因组DNA的电泳、纯度和酶切效果。结果:采用不同方法提取的3种松科植物叶片基因组DNA的质量差异较大。结论:常规CTAB法和SDS法无法提取出高质量松科植物基因组DNA,而改良后的CTAB法的提取效果较好。     

香菇基因组高分子量DNA的提取

介绍了一种简便快速提取香菇基因组DNA的方法,该法是对提取真菌DNA的SDS和CTAB法进行改进而成,经过修改后的SDS-CTAB法可在较短时间内高效地提取香菇基因组总DNA.制备物经琼脂糖凝胶电泳检测到大于20kb的DNA主带,基本无DNA碎带;OD260/280值显示产物纯度高,完全符合AFLP分析的要求。     

银杏DNA提取及RAPD分析

采用SDS裂解液和苯酚/氯仿/异戊醇提取液从银杏叶中提取银杏总DNA,并进行DNA样品分光光度测定和琼脂糖凝胶电泳分析。通过引物筛选和反应参数优化,选用3个随机引物对DNA样品进行RAPD扩增,获得较为清晰并有一定多态性差异的扩增谱带,初步摸索出适合于以银杏叶为材料的DNA提取方法和RAPD扩增程序,为研究银杏遗传多态性及种质资源研究提供一种实用的分析方法。     

一种经济高效提取实蝇基因组DNA的方法

单头实蝇高质量基因组DNA的获得为实蝇分子生态学研究奠定了重要基础。本文提出一种经济高效的实蝇基因组DNA提取方法,该方法广泛适用于不同虫态、不同保存条件的实蝇标本,与传统的CTAB法和SDS法相比操作简单、耗时短,得率高。     

一种基于PCR分析多样性的小鼠肠道微生物宏基因组提取方法

目的建立一种基于PCR分析分子多样性的小鼠肠道菌群宏基因组提取方法。方法比较、综合国内外小鼠肠道菌群宏基因组的提取方法后建立一种新方法,小鼠肠道内容物经丙酮洗涤,差速离心,溶菌酶、SDS裂解,CTAB处理,酚／氯仿抽提后可得到高质量的DNA,通过紫外分光光度计、琼脂糖凝胶电泳、细菌通用引物PCR和扩增核糖体限制性酶切片段分析（ARDRA）等检测该方法的实用性。结果该方法获得的小鼠肠道菌群宏基因组DNA大小在23kb左右,A260／A280在1．8—2．0,经细菌通用引物PCR后能得到适用于ARDRA的目的产物。结论该方法经济适用性较强,具备一定的应用价值。     

扬子鳄鞣制皮革和鳞片的DNA提取方法

运用一种改进的提取方法 ,作者从鞣制皮革中成功地提取了总DNA ,同时还对尾尖皮、鳞片、盐腌生皮等皮质进行了DNA提取 ;用 12SrRNA基因扩增的通用引物、扬子鳄鉴别引物、微卫星引物及RAPD引物进行PCR扩增 ,并对部分扩增结果进行测序 ,以检验提取效果。结果证明 ,几种皮质标本都可提取出DNA ,其中尾尖皮和鳞片的提取效果较好 ,用四种引物都可扩增出明显亮带 ;盐腌生皮和鞣制皮提取结果也很好 ,并且用12SrRNA通用引物、扬子鳄鉴别引物扩增的亮带较明显 ,可进行扬子鳄皮质用品等的分子鉴定及部分序列的扩增和测序研究     

适于涡虫基因组DNA快速制备的改良的CTAB法

提取得到高质量的DNA样品是进行分子生物学研究的必要前提。为了找到一种适用于提取涡虫基因组DNA的常规方法,我们以东亚三角头涡虫为材料,分别用改良的CTAB法、SDS法、SDS-蛋白酶K法对涡虫的基因组DNA进行了制备,并对3种方法制备的涡虫基因组DNA进行了检测与比较。根据比较结果,我们认为改良的CTAB法最适合于涡虫基因组DNA的快速制备,为涡虫的分子生物学研究打下了基础。     

小叶锦鸡儿基因组DNA的提取及AFLP反应体系的建立

以小叶锦鸡儿幼嫩叶片为材料,采用改良的SDS法提取其基因组DNA,通过优化AFLP技术体系中的几个主要因素,建立了适合小叶锦鸡儿的AFLP银染反应体系。改良的SDS法能通过在提取液中加入β-巯基乙醇防止氧化、加入PVP去除酚类等物质,获得满足AFLP分析要求的纯度高、完整性好的基因组DNA;用EcoRⅠ和MseⅠ37 ℃双酶切4 h后可以将500 ng的基因组DNA完全切开。酶切产物和接头经16℃连接过夜后,用带有1个选择性碱基的引物和带有3个选择性碱基的引物分别进行预扩增和选择性扩增,扩增产物经变性聚丙烯酰胺凝胶电泳分离,用AgNO₃染色,得到了清晰的指纹式样。小叶锦鸡儿AFLP反应体系的建立为利用该技术研究小叶锦鸡儿的遗传多样性奠定了实验基础。     

Effective DNA extraction method for fragment analysis using capillary sequencer of the kelp, Saccharina

Deoxyribonucleic acid (DNA) fragment analysis can become an effective tool to study genetic differences between species and individuals on saccharinan kelp from which the little genetic diversity has been reported. Here, extraction methods of DNA suitable for use in analysis with a capillary sequencer is examined on Saccharina japonica var. diabolica which contains abundant polysaccharide. When amplified fragment length polymorphism was performed using genomic DNA extracted by seven different methods: (1) commercial kit, (2) original cetyl trimethylammonium bromide (CTAB) method, (3)–(5) three types of modified CTAB method, (6) modified sodium dodecyl sulfate (SDS) method, (7) combination of CTAB method and SDS method, a high reproducible peak that was suitable for analysis was noticeable in the electropherogram in the experiment with the last combination method (7). It is considered that the pretreatment washing of polysaccharide and the subsequent purification for protein and ribonucleic acid in SDS method and for polysaccharide in CTAB method are effective to obtain the high-purity DNA.     

基于PIPE现象的质粒克隆位点序列设计与功能评价

分子克隆是现代生物学研究的核心技术之一,是基因工程、蛋白质工程中的重要手段。为提高分子克隆实验的操作效率,本研究设计并合成基于聚合酶引物不完全延伸（polymerase incomplete primer extension,PIPE）现象的质粒克隆位点序列。并以此为基础统一相关引物的设计方案,避免传统酶切--连接法中需针对不同载体MCS序列设计不同引物的缺点。该方案利用13 bp定长接头序列,在同一体系中使用2对引物、2种线性化模板同时扩增载体和插入片段,通过20个循环,在1次PCR过程中即合成可供转化使用的带缺口质粒产物。在NEB Q5酶系统中,利用此法将3种荧光素酶序列插入pET-15b及pET-21b(+)载体,均获得成功。且利用商品化感受态细胞（转化效率 > 5×108 cfu/μg）转化后所获得转化子数量均在300个以上,其中含插入片段的阳性克隆比例可达85%以上。基于本方案的设计及作用原理,可将其应用于10 kb以内载体和插入片段的快速重组。且具有通用性强、耗时少、阳性克隆得率高和成本低等优点,是传统DNA重组方法的有益补充,可作为各实验室的常规分子克隆手段之一。     

Simple and efficient genomic DNA extraction protocol for molecular characterisation of Phytophthora colocasiae causing taro leaf blight

Genomic DNA extraction protocol with relatively high quantity and purity is prerequisite for the successful molecular identification and characterisation of plant pathogens. Conventional DNA extraction methods are often time-consuming and yield only very poor quantity of genomic DNA for samples with higher mycelial age. In our laboratory, we have aimed at establishing an efficient DNA isolation procedure, exclusively for the oomycete pathogen Phytophthora colocasiae causing serious leaf blight disease in taro. For this a phenol free protocol was adopted, which involves SDS/Proteinase K-based inactivation of protein contaminants, extraction of nucleic acids using chloroform: isoamyl alcohol and later precipitation of genomic DNA using isopropanol and sodium acetate. The purity of the isolated DNA was analysed by A_260/280 and A_260/230 spectrophotometric readings and confirmed by restriction digestion with restriction enzyme Eco RI. In this study, a comparative assessment was done with CTAB method and the commercial genomic DNA purification kit (Thermo Fisher Scientific, Fermentas, EU). The extracted DNA was found to be suitable for further downstream applications like ITS amplification of the rDNA ITS region and PCR amplification with species-specific primers.     

A simple method for DNA extraction from marine bacteria that produce extracellular materials

We present a simple method for extracting DNA from the marine bacteria Hahella chejuensis, a Streptomyces sp., and a Cytophaga sp. Previously, DNA purification from these strains was hindered by the presence of extracellular materials. In our extraction method, the marine bacteria are lysed by freezing and grinding in liquid nitrogen, and treated with SDS. The extracted DNA is purified using a phenol/chloroform mixture, and precipitated in isopropanol. The extracted DNA is of high quality and suitable for molecular analyses, such as PCR, restriction enzyme digestion, genomic DNA blot hybridization, and genomic DNA library construction. We used this method to extract genomic DNA from several other marine bacteria. Our method is a reproducible, simple, and rapid technique for routine DNA extractions from marine bacteria. Furthermore, the low cost of this method makes it attractive for large-scale studies.