转抗虫基因欧美黑杨离体快繁技术研究

以抗虫欧美黑杨的叶,带腋芽茎段为外植体进行离体快繁技术研究。最佳接种时间为8月份,新芽生长迅速。基本培养基为MS,较适初培养基为MS＋6－BA0.5mg/L（以下单位同）＋NAA0.01mg/,附加30g/L,蔗糖,7g/L琼脂。愈伤组织诱导并同时分化出新芽培养基为MS＋6－BA1.5 NAA0.3,附加40g/L蔗糖,6g/L琼脂。继代增殖培养基为MS 6-BA1.0 NAA0.1 GA2.0,附加30g/L蔗糖,5g/L琼脂。生根培养基为MS＋IBA2．0。     

不同因素对濒危药用植物美花石斛壮苗的影响

本研究以濒危药用植物美花石斛种子萌发苗为外植体,考察不同基本培养基、植物生长激素、天然添加物、蔗糖浓度和活性炭对其壮苗构建的影响。研究结果表明:无菌萌发100 d左右的美花石斛种子苗,其最佳的壮苗培养基配方是1/2 MS+0.5 mg/L NAA+30%椰汁+30 g/L蔗糖+1 g/L活性炭+琼脂7 g/L,p H为5.8。     

苹果优良品种的离体培养及快速繁殖

以苹果(Malus pumila)品种是北斗、乔纳金、秋伏1号的茎尖为材料。诱导分化及继代增 殖培养基如下:(1)MS BA 1mg/L(单位下同);→(2)MS BA 0.5;(3)MS BA 1 IAA 0.1;→(4)MS BA 0.5 IAA 0.2,附加蔗糖3%,LH300,琼脂0.5%。生根培养基为:(5)1/3MS NAA 0.1;(6)1/3MS IAA 0.3 IB(?) 0.5;(7)1/3MS IAA 1 IBA 0.1;(8)1/3MS IAA 0.1 IBA 0.1 NAA 0.05;(9)IAA 1.5 NAA 0.1。附加 CH100,蔗糖1.5%,琼脂用量为0.45%。以上培养基 pH     

正交实验法在香果树种质离体保存中的应用

以香果树带芽茎段为外植体,采用正交实验法研究活性炭、琼脂、封口材料和培养容器对香果树试管苗离体保存的影响。结果表明,香果树带芽茎段用200 ml三角瓶,无菌培养容器封口膜封口,保存于MS+KT 2.0 mg/L+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+30 g/L蔗糖+0.5 g/L活性炭+7.5 g/L琼脂培养基上6个月后,成活率可达86.3%。离体保存的试管苗没有发生遗传变异。     

库克点百合的组织培养

培养条件:材料用0.1％HgCl_2消毒8分钟,无菌水冲洗3次,切成0.5～1.0cm长。诱导愈伤组织培养基:(1)MS十BA0.5mg/L(单位下同)十NAA0.2+2真4-D0.2;诱导芽分化培养基:(2)MS十BA1.5+NAA0.5;生根培养基:(3)MS+IBA0.2～1.0。蔗糖3％,琼脂0.8％,温度25士2℃,光     

不同植物生长调节剂对铁皮石斛(Dendrobium candidum)再生的影响

本实验以铁皮石斛无菌苗茎段为外植体,通过添加不同浓度的植物生长调节剂,诱导铁皮石斛愈伤组织形成与分化,建立铁皮石斛组织培养再生体系。结果表明,外植体接种5 d后,在改良MS培养基上添加2 mg/L PBU和0.05 mg/L IAA,可达到100%的愈伤诱导率。将愈伤组织接种在MS培养基上,添加0.1 mg/L NAA和0.5 mg/L 6-BA,不定芽诱导率为90.8%。适合铁皮石斛芽增殖培养基为:MS+7 g/L琼脂+30 g/L蔗糖+100 mg/L Vc+0.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA。PBU浓度为0.5 mg/L,NAA浓度为0.05 mg/L时,芽苗生长情况良好,最适合用于不定芽伸长。铁皮石斛最适生根的培养基为:MS+7 g/L琼脂+30 g/L蔗糖+100 mg/L Vc+0.5 mg/L IBA,生根率可高达94.1%。本研究成功建立了铁皮石斛高效再生体系。     

罗汉果组培繁殖的技术要点

报道罗汉果组培繁殖的各项主要技术要点,包括组培条件、培养基的配制、外植体的选取与消毒、接种与培养、种源保存、炼苗与移栽、苗木包装与运输等。提出了5种培养基参考配方,即茎段诱导培养:MS+BA0.5～1.0mg/L+IAA(NAA)0.05～0.1mg/L+白糖3%+琼脂4.5g/L,pH5.8;茎尖诱导培养:MS+BA0.5～1.0mg/L+NAA0.05～0.1mg/L+椰子水100mL+白糖3%+琼脂4.5mg/L,pH5.8;继代培养(丛生芽方式):MS+BA0.3～0.7mg/L+NAA0.05/IAA0.1mg/L+白糖3%+琼脂4.5mg/L,pH5.8;继代培养(微型扦插方式):MS+BA0.1mg/L+IAA0.3mg/L+活性炭0.07g/L+白糖3%+琼脂4.5mg/L,pH5.8;生根培养:MS+BA0.07mg/L+IBA0.15mg/L+IAA0.1mg/L+活性炭0.1g/L+白糖3%+琼脂4.5mg/L,pH5.8。分析了外植体培养过程中可能出现的不良状况的原因并提出预防措施,明确了炼苗移栽的适宜条件并制定出相应的管理方法。形成了一套较为完整的罗汉果组培苗繁殖生产技术规程。     

抗茎枯病芦笋品种离体培养的研究北大核心CSCD

选用芦笋(Asparagus officinalis)茎枯病高抗品种格兰蒂为材料,研究各种生长素及细胞分裂素对其茎尖诱导的愈伤组织、不定芽增殖和生根的效果。实验结果表明,最适芦笋茎尖诱导愈伤组织的培养基为:MS+6-BA0.3 mg/L+2,4-D 1.5 mg/L+蔗糖25 g/L+琼脂7 g/L,pH 5.8;最适愈伤组织增殖诱导、分化不定芽的培养基为:MS+NAA 0.3 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂7 g/L,pH 5.8;最适生根培养基为:1/2 MS+0.5 mg/L IBA+1 mg/L PP333+0.3 mg/L 6-BA+蔗糖30 g/L+琼脂7 g/L,pH 5.8。     

秦美猕猴桃叶片最佳再生系统的建立

利用正交等试验,系统开展了秦美猕猴桃叶片再生系统建立研究,确定了秦美猕猴桃叶片不定芽诱导最佳培养基及激素配比为MS＋6－BA 5mg/L NAA 0.1mg/L,不定芽诱导生根最佳培养基及激素配比为1／2MS＋NAA 0．01mg/L IBA0.5mg/L GA 1mg/L,该实验结果为通过叶盘法开展农杆菌介导的猕猴桃遗传转化奠定了良好基础。     

米槁组织培养不定芽发生与继代增殖

该研究以米槁的带腋芽茎段为实验材料,建立米槁不定芽诱导及增殖培养体系,探究不同消毒时间、取材时间及不同激素种类和浓度配比条件对米槁带芽茎段不定芽诱导及增殖的影响。结果表明：(1)外植体最适消毒方式为75%酒精30 s + 0.1% HgCl₂ 6.5 min,11月为外植体取材进行消毒的最佳时期。(2)最适不定芽诱导培养基为MS + 3.0 mg/L 6 BA + 0.3 mg/L IBA + 6.5 g/L琼脂+ 30 g/L蔗糖,不定芽诱导率可达到81.24%;6 BA和NAA均能促进米槁不定芽的增殖,且NAA是不定芽增殖的主要影响因素。(3)最适不定芽增殖培养基为MS + 0.1 mg/L 6 BA + 1.0 mg/L NAA + 0.3 g/L AC + 6.5 g/L琼脂 + 30 g/L蔗糖,不定芽平均增殖系数达到2.79。该研究基本建立了米槁不定芽诱导及增殖培养体系,为其深层次的资源开发、利用及快速繁殖提供了一条新的路径。     

风铃草的组织培养

植物名称:风铃草(Campanulaefragilis)。材料类别:叶片。培养条件:培养基为(1)MS+BA2.0mg/L(单位下同)+NAA0.05;(2)MS+BA1.0+NAA2.0;(3)MS+BA1.0+NAA0.1;(4)MS+NAA0.05;(5)MS+BA0.5+NAA0.05。每日光照12小时,光照度2000lx,培养温度18～25℃,蔗糖3％,琼脂0.55％,pH值5.8。生长与分化情况:嫩叶片经常规方法灭菌后,     

四倍体石刁柏的组织培养和快速繁殖

1 植物名称石刁柏(Asparagus officinalis)。 2 材料类别二倍体“UC72”品种种子经秋水仙素溶液处理诱导成四倍体的侧枝茎尖。 3 培养条件芽分化培养基为:(1)MN+NAA 0.1 mg/L(单位下同)+BA 0.1,蔗糖3％,琼脂0.6％;(2)MS+NAA0.1+BA0.05,蔗糖3％,琼脂0.6％;生根培养基为(3)MS+NAA 5.0+BA 0.05,蔗糖4％的液体培养基(内有海绵碎块作支撑物,下同):     

六角果鸢尾离体快繁技术体系的构建

为构建六角果鸢尾(Iris hexagona)的离体快繁体系,以其幼嫩根状茎为外植体,研究了培养基和植物生长调节剂对不定芽诱导、增殖和植株生根的影响。结果表明,根状茎用0.1%Hg Cl2消毒13 min的效果较佳;不定芽诱导最适培养基为MS+6-BA 1.5 mg L–1+NAA 0.5 mg L–1+蔗糖30 g L–1+琼脂7.5 g L–1,不定芽增殖的适宜培养基为MS+6-BA 0.5 mg L–1+NAA0.2 mg L–1+KT 0.3 mg L–1+蔗糖30 g L–1+琼脂7.5 g L–1;在MS+IBA 1.5 mg L–1+蔗糖30 g L–1+琼脂7.5 g L–1培养基上不定芽生根率可达100%;腐殖土和珍珠岩+泥炭土+蛭石(1∶2∶1)均可作为组培苗移栽的适宜基质,移栽成活率可达100%。     

大绣球的组织培养

植物名称:大绣球(Viburnum macrocephalum),别名:绣球、木绣球、木本绣球、斗球。材材类别:秋季带有饱满侧芽的枝条。培养条件:基本培养基为MS,生长分化培养基附加:(1)BA 2.0mg/L(单位下同)+NAA0.05、(2)BA1.0+NAA 0.1;(3)BA 2.0+NAA 0.2;(4)BA1.0+NAA 0.025;(5)BA 1.5+NAA 0.1。以上蔗糖3％,琼脂0.5％。生根培养基附加:(6)     

龟背竹的组织培养快速繁殖

植物名称:龟背竹(Monstera deliciosa)材料类别:茎尖及腋芽。培养条件:茎尖及腋芽切下后用0.1％HgCl_2消毒8～10 min,然后用无菌水冲洗4～5次,在无菌条件下剥去外层芽苞接种到附加有BA2mg/L和IAA1mg/L的固体MS培养基上培养。生根培养基用1/2MS附加NAA0.5mg/L,活性炭0.2％。培养基均用糖30g/L,琼脂5.5g/L,pH5.8～6.0;     

文心兰花梗茎段植株再生培养的影响因子研究

应用正交试验设计法研究基本培养基、植物生长调节剂种类及浓度对文心兰花梗茎段芽再生丛生芽诱导、增殖和生根培养的影响。筛选出最佳基本培养基为1/2 MS;最佳诱导培养基为1/2 MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖20 g/L;最佳增殖培养基为1/2 MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖30 g/L;最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 0.05 mg/L+NAA 0.3 mg/L+香蕉泥100 g/L+蔗糖20 g/L。     

中粒种咖啡花药培养成完整植株

1 植物名称中粒种咖啡(coffea robusta)。 2 材料类别花药。 3 培养条件基本培养基为MS,(1)诱导愈伤组织培养基附加KT0.8 mg/L(单位下同)、2,4-D 0.8、NAA1、蔗糖5％、琼脂0.5％,pH 5.8。(2)诱导胚状体培养基附加BA 2、KT 0.5、NAA 0.2、CH 500、蔗糖3％、琼脂0.6％,pH 5.8。(3)胚状体分化成苗培养基为3/4MS附加BA0.5、NAA0.8、GA0.1、活性炭0.1％、蔗糖2.5％、琼脂0.7％,pH 5.8。培养温度25     

甜椒花药培养及再生植株技术体系的研究

为建立甜椒(Capsicum annuum var.grossum)花药培养及再生植株技术体系,对影响花药胚状体诱导和分化的因素进行了研究。结果表明,培养基组成对胚状体诱导率的影响以NAA基本培养基椰乳KT,最佳胚状体诱导培养基为NTH+0.1 mg L–1 NAA+10%椰乳+1 mg L–1 KT+50μmol L–1 Ag NO3+30 g L–1蔗糖+5 g L–1琼脂+2 g L–1活性炭。花药经过24 h低温预处理和8 d高温预培养后,胚状体诱导率可达23.38%。植物生长调节剂对胚状体出芽率的影响为6-BANAAIAA,最佳胚状体分化培养基为NTH+1 mg L–1 6-BA+0.3 mg L–1 NAA+0.1 mg L–1 IAA+30 g L–1蔗糖+5 g L–1琼脂。胚芽转入1/2MS+0.5 mg L–1 IBA+30 g L–1蔗糖+5 g L–1琼脂培养基后,生根率可达92.5%。     

达摩兰组织培养适宜培养基的研究

以达摩兰的原种苗茎段为外植体进行组织培养研究,筛选出最适培养基(1)原球茎诱导:MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 1.0 mg/L+香蕉肉250 g/L;(2)丛生芽诱导:1/2 MS+6-BA 3 mg/L+NAA 2.0 mg/L+AC 2.5 g/L+蔗糖3%+香蕉肉200 g/L;(3)芽增殖:1/2 MS+6-BA 3 mg/L+NAA 2.0 mg/L+AC 2.5 g/L+蔗糖3%+香蕉肉150 g/L;(4)根诱导:1/2 MS+6-BA 0.3 mg/L+IBA 0.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L+AC 2.5 g/L+蔗糖3%。采用珍珠岩、细石与树皮的混合物为培养基质,移栽成活率达95%以上。     

薰衣草的组织培养和植物再生(摘编)

薰衣草(Lavandulaspica L.)种子诱导培养基:(1)MS+2,4-D1.0mg·L-1(单位下同)+NAA0.5+KT0.2;(2)MS+6-BA2.0+NAA0.2。分化与增殖培养基:(3)MS+6-BA2.0+NAA0.1;(4)MS+6-BA1.0+NAA0.1。生根培养基:(5)H+I BA0.5+I AA0.5;(6)H+6-BA0.3+IBA0.5+NAA0.5。上述培养基(1)~(4)加入3%蔗糖和0.9%琼脂,(5)和(6)加入2%蔗糖、0.2%活性碳和0.75%琼脂,pH5.8。培养温度(23±2)℃,光照度1500~2000lx,光照时间为14h·d-1。将种子装入干燥、无菌的消毒瓶中,在超净工作台上,先在70%的乙醇中浸泡10s,然后用无菌水冲洗2~3次,再用0.1%HgCl2消毒1…