野生碧玉兰组培快繁技术

以云南野生碧玉兰（Cymbidium lowianum）种子无菌萌发的试管苗为试验材料,进行其丛生芽诱导增殖、生根的组培快繁技术体系研究。结果表明：适宜的增殖培养基配方为1/2MS＋6-BA 2.0 mg/L＋KT 0.5 mg/L＋NAA 0.2 mg/L,增殖率可达300%;生根培养基的配方为1/2MS＋NAA 1.5 mg/L＋6-BA 0.3 mg/L,其根数多,健壮。     

大花蕙兰组培快繁技术研究

选用大花蕙兰杂交新品种1053为外植体,采用1/2MS为基本培养基进行大花蕙兰组培快繁技术研究,结果表明：类原球茎诱导的最佳外植体为大花蕙兰鳞茎,培养基最佳激素浓度配比为0.5 mg/L 6-BA＋0.2 mg/L NAA;类原球茎增殖与分化芽最佳激素浓度配比为1.0 mg/L 6-BA＋0.3 mg/L NAA;幼芽增殖的最佳激素浓度配比为2.0 mg/L 6-BA＋0.5 mg/L NAA,最佳有机添加物为150 ml/L椰汁,幼芽增殖正交试验得出影响因素主次顺序：6-BA〉椰汁添加物〉NAA,优组合为2 mg/L 6-BA、0.5 mg/L NAA、添加物椰汁150 ml/L;诱导生根的最佳激素浓度配比为0.3 mg/L IBA＋0.2 mg/L NAA,添加香蕉泥100 g/L对幼苗根生长有显著的促进作用。优化后的大花蕙兰组培快繁技术参数,可为大规模工厂化生产提供参考。     

铁核桃离体培养与快速繁殖

以优良单株‘纳雍-1’的单芽茎段为外植体,建立了铁核桃（Juglanssigillata）离体培养与快速繁殖的体系。结果表明,附加6-BA1．0mg·L-1 ＋活·IgK（AC）3．0g·L-1的DKw培养基适宜铁核桃腋芽诱导;适宜铁核桃芽增殖的培养基为DKW＋6-BA1．0mg·L-1 ＋IBA0．02mg·L-1,40d后增殖系数可达7．33;试管苗的茎尖和茎段均可用于增殖培养;一步生根法（低浓度的生长素IBA持续诱导）不利于铁核桃试管苗嫩茎生根;采用二步生根法,生根率最高可达71．73％,其中,不同IBA浓度、暗培养时间、蔗糖浓度和AC含量对试管苗嫩茎生根影响显著,铁核桃试管苗在附]sulBA5,0mg·L-1的1／4DKW培养基中暗培养12d,再转移到不含IBA的1／4DKW培养基（附加AC 3g-L-1和蔗糖20g·L-1）中生根效果最好;生根试管苗采用珍珠岩和营养土两步炼苗,60d后成活率达到87．50％。     

安诺兰无菌播种组培快繁技术研究

安诺兰(Anota hainanensis)种子无菌播种试验表明:在MS+6-BA 0.1 mg/L培养基上种子能形成原球茎团;1/2 MS培养基有利于原球茎增殖,加6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L原球茎增殖效果较佳,增殖率达793.3%;在1/2 MS+IBA 1.0 mg/L+2.0 g/L活性碳+100 g/L香蕉匀浆+100 ml/L椰子水的培养基上,试管苗生根效果最好;试管苗移栽至椰糠上,成活率达91.4%。     

‘光叶蔷薇’器官间接再生体系的建立及GUS基因转化的初步研究

以‘光叶蔷薇’（Rosa wichuriana ‘Basye’s thornless’）无菌苗的顶生幼嫩小叶为外植体,探讨了其愈伤组织诱导及植株再生的方法。结果表明,高浓度的生长素NAA能诱导外植体产生愈伤组织;由NAA诱导的愈伤组织在附加TDZ的MS培养基上,先暗培养再进行光照培养可直接分化出不定芽。诱导愈伤组织的最佳NAA浓度是7.0 mg/L、暗培养时间为10 d,而最佳分化培养基是MS + 5.0 mg/L TDZ + 30 g/L葡萄糖 + 2.5 g/L GEL,分化率达18.34%。以诱导产生的愈伤组织为侵染受体,初步建立了‘光叶蔷薇’GUS基因转化体系。农杆菌菌液浓度OD₆₀₀值为0.5、侵染30 min、共培养2 d、乙酰丁香酮的浓度为50 μmol/L是'光叶蔷薇’愈伤组织转基因的最优条件。     

春兰根状茎离体培养与快速繁殖(简报)

以当年春兰的根状茎为材料进行离体快速繁殖体系研究。结果表明：（1）根状茎的诱导最佳培养基为1/2MS＋6-BA 2.0 mg/L(单位下同)＋NAA 0.5＋花宝1号1 g/L＋花宝2号2 g/L;（2）根状茎继代增殖培养基为1/2MS＋6-BA 0.5＋NAA 0.01＋花宝1号1 g/L＋椰子100 g/L＋活性碳(AC) 1 g/L,50 d为一继代周期,增殖系数达30～50倍;（3）根状茎壮苗生根培养基为1/2 MS＋IBA 1.5＋AC 1 g/L,培养50 d后生根率达95%。将生根苗移栽入小颗粒兰石中,盖膜保湿,成活率95%。     

斑花杓兰试管苗根茎繁殖

为保护斑花杓兰Cypripedium guttatumu种质、实现栽培,以其根茎为材料,采用组织培养方法,进行试管苗培养、根茎继代繁殖培养、试管苗扦插和定植研究。结果表明：1/2MS＋蔗糖16 g/L＋ABT 2号10 mg/L＋IAA 0.4 mg/L是根茎试管苗培养的理想培养基,且这种以炉灰渣为支持物的培养基也是试管苗根茎继代繁殖培养的理想培养基;在温室苗床上试管苗根茎段扦插成活率为96.5%,繁殖速度比移栽提高2.2倍;根茎扦插试管苗定植的成活率为96.8%。定植成活的根茎试管苗保持了野生斑花杓兰的所有植物学性状。     

香附子块茎试管苗繁殖

以香附子块茎为材料,用组织培养的方法,进行试管苗繁殖研究。结果表明,1/3MS+炉灰渣培养基是块茎生长芽培养的适宜培养基;1/2MS+ZT 0.6 mg/L+NAA 0.1 mg/L是生长芽分化和继代分化繁殖培养的适宜培养基;1/2MS+ABT 2号6 mg/L+IAA 0.4 mg/L是生根和试管苗微型块茎培养的适宜培养基。培养30 d试管苗移栽成活率96%;培养60 d试管苗移栽成活率89.7%;种植的块茎发芽率99.8%;试管苗和微型块茎定植的成活率在99%以上;定植试管苗保持了香附子的植物学特征。     

‘红皮’马铃薯试管苗培养和微型薯诱导

以‘红皮’马铃薯块茎上的芽为材料进行试管苗诱导、增殖及试管微型薯诱导研究。结果表明：在MS + 6-BA 0.5 mg/L +活性炭0.17% + 蔗糖20 g/L培养基中培养30 d,试管苗增殖系数达8.6;MS + 6-BA 0.5 mg/L +活性炭0.17% +蔗糖100 g/L培养基中试管微型薯诱导效果较好,30 d后诱导率达62.5%,试管薯平均直径为4.2 mm。     

多花兰种子无菌萌发及离体快繁研究

以多花兰种子为材料,研究了无机盐浓度、植物生长调节剂和光照条件对多花兰种子非共生萌发的影响,在此基础上,通过研究原球茎增殖和分化、芽苗壮苗和生根的培养基配方及培养条件,建立多花兰组培快繁技术体系.结果表明:多花兰种子萌发培养基为1/6 MS十NAA0.5 mg·L-1+6-BA 2.0 mg· L-1+马铃薯泥50g·L-1+AC 1.0g·L-1,光照度为1.25μmol·m-2·s-1,萌发率63.6％;原球茎增殖继代培养基为1/4 MS+6-BA2.0 mg·L-1+NAA 0.5 mg· L1+AC 1 g·L-1+PE 200 g·L-1,繁殖倍数6.5倍/60 d,芽分化率60.2％;再生芽分化培养基为1/4 MS十6-BA2.0mg·L-1+NAA 0.2 mg· L-1+AC 1 g·L-1+PE 200g· L-1,繁殖倍数4.0倍/60 d,芽分化率85.0％;芽苗壮苗和生根培养基为1/6 MS+6-BA 3.0 mg·L-1+NAA 1.0 mg·L-1+AC 1 g·L-1+蔗糖20g·L-1 +PE 200 g·L-1和1/4 MS+6-BA 2.0 mg·L-1+NAA1.2 mg·L-1+AC1 g·L-1十蔗糖20g·L-1+PE200g· L-1,生根率达100％,生根苗移栽成活率90％.此技术可用于多花兰种苗繁育和种质资源保护.     

春石斛优良品种‘森禾2006’组培快繁体系的建立

本文研究了春石斛‘森禾2006’的拟原球（PLBs）诱导、增殖、分化及壮苗和生根,建立了其组培快繁体系。结果表明：‘森禾2006’PLBs最适诱导培养基为1／2MS＋TDZ0．5mg·L-1＋水解酪蛋白2．0gL-1;PLBs增殖培养基为1／2Ms＋水解酪蛋白2．0gL-1;PLBs分化培养基为1／2MS＋KT1．0mg·L-1＋NAA0．1mg·L-1;壮苗生根培养基为Ms＋IBA0．5mg·L-1＋NAA0．1mg·L-1＋香蕉泥100．0g．L-1。     

金线莲组织培养(简报)

以金线莲茎段为外植体进行离体快速繁殖体系研究。结果表明：芽诱导最佳培养基为1/2MS+6-BA 1.5 mg·L^-1+NAA 0.2 mg·L^-1;增殖培养基为1/2MS +6-BA 2.0 mg·L^-1+NAA 0.5 mg·L^-1+香蕉100 g·L^-1;增殖系数达6～8倍;生根培养基为1/2MS + IBA 1.0 mg·L^-1+NAA 0.5 mg·L^-1+活性炭0.2 g·L^-1,生根率可达95%。将生根苗移栽入滤水性好的细兰石与炭渣混合基质中,盖膜保湿。成活率可达90%。     

杂交兰类原球茎增殖中芽分化的控制和快速繁殖

以‘玉女杂交兰’为材料,研究了培养时间、活性炭、切块大小和外源生长调节物质对类原球茎增殖和分化的影响。结果表明,培养时间、活性炭和切割处理对类原球茎增殖和分化影响显著,在培养基中添加活性炭或对类原球茎进行切割均能有效控制增殖过程中的芽分化。将类原球茎切成直径2~3 mm的小块接种到培养基MS＋1.0 mg.L-16-BA＋0.2 mg.L-1NAA＋0.3 g.L-1AC＋30 g.L-1蔗糖＋5.5 g.L-1琼脂中培养40 d,类原球茎增殖率为384.23%。将增殖后的类原球茎接种到培养基1/2MS＋1.5 mg.L-16-BA＋0.1 mg.L-1NAA＋20 g.L-1蔗糖＋5.5 g.L-1琼脂中培养40 d,芽分化率为463.06%。将分化的芽转入培养基1/2MS＋0.5 mg.L-1NAA＋0.5 g.L-1AC＋20 g.L-1蔗糖＋100 g.L-1土豆汁＋5.5 g.L-1琼脂中培养,生根率为100%,平均根分化数为2.80条.株-1。以泥炭土为基质,组培苗的移栽成活率可达97.78%。     

大花斑叶兰种子无菌萌发及快繁技术研究

对大花斑叶兰（Goodyera biflora）成熟种子无菌萌发、原球茎分化及根诱导进行了研究。结果表明：黑暗或弱光照培养有利于大花斑叶兰种子萌发,而较强的光照对形成健壮的原球茎有利;1/2MS＋NAA0.2mg/L培养基较为适合大花斑叶兰种子的萌发;MS＋KT1.0mg/L＋NAA0.5mg/L＋活性炭2.0g/L对原球茎增殖形成类原球茎有较好效果;1/2MS＋6-BA2.0mg/L＋NAA0.5mg/L＋2.0g/L活性炭对根诱导效果较为理想。     

黄花蒿组织培养研究

目的：筛选黄花蒿组织培养的配方,以寻求黄花蒿生长的最佳自然条件。方法：在MS基本培养基中添加不同激素,制备不同培养配方,筛选黄花蒿愈伤组织诱导与分化的最适培养基配方。结果与结论：诱导黄花蒿愈伤组织形成的最佳培养基配方为MS＋6-苄氨基嘌呤（6-BA）（2．0mg／L）＋激动素（KT）（2．0mg／L）;诱导黄花蒿愈伤组织分化的最佳培养基配方为MS＋6-BA（1．0mg／L）＋吲哚乙酸（IAA）（1．0mg／L）。叶片诱导愈伤组织出愈时间最慢,出愈率较低,但其愈伤组织为胚性愈伤组织,后期愈伤组织的分化率、出苗率都很高,且不易产生褐变;带腋芽的茎段诱导愈伤组织形成最快,但分化率不及叶片愈伤组织,易褐变,适于快速转入生根培养基中直接用于快繁;花序基本不形成肉眼可见愈伤组织,直接形成幼苗。     

甘薯幼苗对NaCl胁迫的生理响应及外源钙的缓解效应

以甘薯品种‘徐薯22’为试验材料,研究了不同浓度NaCI胁迫对甘薯幼苗生根、叶片抗氧化能力、渗调物质含量、光合气体交换参数、荧光参数及叶片离子含量的影响及不同浓度Ca^2＋处理对300mmol·L^-1NaCl胁迫的缓解效应。结果表明,低浓度NaCl（50和100mmol·L^-1）胁迫对甘薯幼苗生根及叶片相对电导率和MDA含量影响较小,随着盐度的增加,叶片SOD活性呈先增加后降低趋势,脯氨酸和可溶性糖含量持续增加,叶片Pn、Tr、Gs、F√Fm、RC／CS0、TR0／CS0、ET0／CS0、ФE0及K^＋、Ca^2＋含量、K^＋／Na^＋不断降低,ФD0和Na^＋含量升高;高浓度NaCl（300mmol·L^-1）胁迫下,甘薯幼苗的正常生理代谢受到显著抑制。适当浓度外源ca2’能显著缓解Nacl胁迫对甘薯幼苗的毒害作用,能促进盐胁迫下甘薯幼苗生根,改善细胞的渗透平衡,提高渗透调节能力,降低膜脂过氧化程度,使甘薯叶片维持较高的Fv√Fm、RC／CS0、TR0／CS0、ET0／CS0、ФE0和较低的ФD0,增强光合作用和气孔蒸腾作用效率,说明外施Ca^2＋是提高甘薯耐盐性的一种有效方法。     

液体悬浮培养促进铁皮石斛原球茎高效诱导、增殖的研究

用正交设计方法对铁皮石斛原球茎具有高效增殖影响的激素（BA,NAA,KT,马铃薯汁）以及配比进行研究,结果表明：以茎段为外植体在培养基Ms＋BA2．0mg／L＋NAA2．0mg／L＋马铃薯汁10％＋糖3％,具有很好的原球茎诱导作用,50d后诱导率达95．20％;原球茎在1／2MS＋BA2．0mg／L＋NAA1．0mg／L＋KT0．5mg／L＋糖3％的培养基上,以液体悬浮培养,原球茎增殖达49．032g／50d。     

诱导子对藏红花悬浮培养细胞生产藏红花色素的影响

考察壳聚糖（chitosan）、壳寡糖（chitosanoligosaccharides,COS）、茉莉酸甲酯（methyljasmonate,MJ）、水杨酸（salicylicacid,SA）和Cu2＋等诱导子对藏红花悬浮培养细胞生长和藏红花色素合成的影响。结果表明：在实验考察浓度范围内,壳寡糖（1～500mg／L）和较低浓度壳聚糖（≤10mrdL）、MJ（≤10μmol／L）、SA（≤10μμmol／L）和Cu2＋（≤1μmoL／L）对细胞生长无显著影响;较高浓度壳聚糖（≥100mg／L）、MJ（≥100μmol／L）、SA（≥100μmoL／L）和cu“（≥10μmoL／L）显著抑制细胞生长。5种诱导子对藏红花色素合成的诱导效果不同,并且与诱导子作用浓度和添加时间有关。MJ诱导效果最好,在细胞培养第0天添加终浓度100仙moL／LMJ,藏红花色素含量（以1克干细胞计）达到28．57mg,比对照提高177．9％。其次是cu“,在细胞培养第4天添加终浓度500μmoL／LCu2＋,色素含量达到19．82mg,比对照提高108．2％。再次是壳聚糖和壳寡糖,在细胞培养第14天分别添加终质量浓度100mg／L壳聚糖和壳寡糖,色素含量分别达到18．33和17．39mg,比对照提高69．1％和69．0％。最后是SA,在细胞培养第14天添加终浓度10μmoL／LSA,色素含量达到14．65mg,比对照提高45．4％。     

In vitro propagation of <Emphasis Type="Italic">Paphiopedilum</Emphasis> orchid through formation of protocorm-like bodies

Paphiopedilum orchids are among the world’s most popular orchid due to their impressively beautiful flowers. Propagation of these orchid genera has been hampered by the naturally slow growth rate of the plant, which renders it very difficult to be propagated through conventional methods. In vitro culture techniques have provided a useful alternative technology for propagating this recalcitrant species. In this study, the propagation of P. rothschildianum was achieved through the in vitro formation of secondary protocorm-like bodies (PLBs) from the primary PLB that developed from stem-derived callus. The PLBs were cultured on half-strength MS medium supplemented with different concentrations (1.0, 2.0, 3.0, and 4.0 μM) of 6-benzyladenine (BA) and kinetin for the induction of secondary PLBs. The highest number of secondary PLBs formed was obtained on half-strength MS medium supplemented with 4.0 μM kinetin, with an average of 4.1 PLBs per explant after 8 weeks of culture. The secondary PLBs continued to proliferate further and formed 9.5–12.1 new PLBs per secondary PLB after being subcultured onto half-strength plant growth regulator-free MS medium supplemented with 60 g/L banana homogenate (BH). These tertiary PLBs were subcultured onto media containing different organic additives, such as BH, coconut water, potato homogenate, and tomato homogenate, for plantlet regeneration. Among the organic additives tested, the addition of 20% CW to half-strength MS medium resulted in the best average plantlet regeneration percentage from the PLBs, 67.9%, after 8 weeks of culture.