红景天叶片诱导再生植株

红景天片接种在ＭＳ培养基上,诱导形成愈伤组织,再稳定在ＭＳ附加６－ＢＡ２ｍｇ／１＋ＩＡＡ０．２５ｍｇ／ｌ的培养基上产生大量丛生芽,丛生芽培养于Ｂ５附加ＩＡＡ０．５ｍｇ／ｌ的培养基上可导生根形成完整植株。     

刺槐组织培养和植株再生

植物名称:刺槐(Robina pseudoacacia).材料类别:叶柄。培养条件:以MS为基本培养基。(1) 诱导愈伤组织和分化培养基附加BA2mg/L(单位下同)和不同浓度的NAA(0.1、0.5、1.0、1.5、2.0);(2) 生根培养基:① 1/2MS+IBA 0.5,② 1/2MS+IAA 1.5。③ 1/2MS+NAA 0.2。培养温度:15～20℃;自然散     

石榴叶片再生植株

植物名称: 石榴(Punica grnatum) 材料类别: 叶片     

水稻原生质体再生成熟植株

水稻原生质体培养一直是人们注意的问题,近年来这方面工作开始有了可喜的进展。本文简要报道用水稻种子成熟胚诱发的愈伤组织所制备的原生质体,经离体培养得到再生成熟植株的结果。     

毛刺槐的组织培养和植株再生

1　植物名称　毛刺槐 (Ｒｏｂｉｎｉａｈｉｓｐｉｄａ) ,别名毛洋槐、江南槐。2　材料类别　带腋芽的茎段。取自本校校园里的 1 0～ 2 0年生毛刺槐的当年生新梢。3　培养条件　培养基 :( 1 )ＭＳ 6 ＢＡ 2 .0ｍｇ·Ｌ-1(单位下同 ) ＮＡＡ 0 .0 5 ;( 2 )ＭＳ 6 ＢＡ 2 .0 ＮＡＡ 0 .1 ;( 3)ＭＳ 6 ＢＡ 1 .0 ＮＡＡ 0 .0 5 ;( 4)ＭＳ 6 ＢＡ 1 .0 ＮＡＡ 0 .1 ;( 5 )ＭＳ 6 ＢＡ 0 .5 ＮＡＡ 0 .1 ;( 6 )ＭＳ 6 ＢＡ 0 .5 ＮＡＡ 0 .0 5 ;( 7)ＭＳ。以上培养基均附加蔗糖 30 ｇ·Ｌ-1、琼脂 7ｇ·Ｌ-1,ｐＨ6 .0～ 6 .…     

油桐叶片愈伤组织诱导及植株再生

以油桐无菌苗叶片为试材,研究不同种类及浓度的植物生长调节剂对愈伤组织诱导、分化、增殖及生根的影响。结果表明：叶片愈伤组织的最佳诱导培养基为1／2MS＋2．omg·L-16-BA＋1．0mg·L～2,4-D,诱导率达100％;最佳分化培养基为1／2MS＋3．0mg·L～6-BA＋0．1mg·L-1。IBA＋0．05mg·L—IAA,分化率为86．36％;最佳继代增殖培养基MS＋3．0mg·L～6-BA＋0．05mg·L。IBA;最佳生根培养基为1／2MS＋O．1mg·L-1。IBA,生根率93．83％。炼苗后移栽到泥炭土：珍珠岩：蛭石=2：1：1的基质中,成活率达92％以上。     

百合叶片愈伤组织的诱导和植株再生

植物名称:百合(Lilium concolor)。材料类别:实生苗叶片切段。将百合种子(来源于日本TAKII种子公司)用水浸泡1d,经70％乙醇处理30s,0.1％升汞溶液灭菌15min,用无菌水淋洗5次后接种于MS培养基上。培养温度25±2℃,光周期12h光照/12h黑暗,光照度1500～2000lx。培养1月后种子萌发,40d后无菌苗高8～10cm,线形叶片宽度2～3mm,叶片淡绿色,于无菌条件下将叶片     

贯众叶片愈伤组织的诱导和植株再生

植物名称:贯众(Cyrtomium fortunei)。材料类别:幼叶片、叶柄。培养条件:诱导愈伤组织培养基为N_6 KT0.2～1.0mg/L(单位下同) 2,4-D 0.4～2.0,蔗糖4％,琼脂0.8％,pH5.8;丛芽分化培养基为MS BA0.1～0.4 NAA0.5～2.0;生根培养基为1/2MS IBA0.7 IAA0.6。培养温度24～28℃,每日光照12～14小时,光照度1700～2000lx左右。     

小麦叶片愈伤组织及其再生植株的诱导

小麦幼苗基部外植体在补加２,４－Ｄ的ＭＳ、Ｎ６、ＢＡ１（３）培养基上均可诱导出愈伤组织,２,４－Ｄ的最适浓度为２．０ｍｇ／Ｌ;愈伤组织的增殖速度与切段部位及基本培养基有关,其中在以ＭＳ补加２．０ｍｇ／Ｌ２,４－Ｄ的培养基上诱导出的愈伤组织增长速度最快;最后讨论了小麦愈伤组织幼苗诱导率低的原因及可能解决的方法。     

蜈蚣草叶片愈伤组织的诱导和植株再生

植物名称:蜈蚣草(Pteris wittata)。材料类别:幼叶、叶柄。培养条件:诱导愈伤组织培养基为N_6+KT0.2～0.4mg/L(单位下同)+2,4-D0.3～0.6,芽分化培养基为MS+BA0.2+NAA0.3+LH500;     

玉米叶片愈伤组织的诱导及其植株再生

植物名称:玉米(Zea mays)品种小金黄。材料类别:幼叶。培养条件:以MS培养基为基本培养基,生长调节物质配比为:(1)2,4-D 4mg╱L(单位下同) NAA2 IAA2;(2)2,4-D8 NAA4 IAA4;(3)2,4—D 8 NAA4 IAA4 ZT0.5 BA0.5 区T 0.5:(4)2,4-DS NAA4 IAA4 ZTl     

远志叶片愈伤组织的诱导和植株再生

植物名称:远志(Polygala tenuifolia)。材料类别:叶片。培养条件:1.诱导愈伤组织的培养基为MS+NAA 0.5+6-BA0.1(单位均为ppm,下同),避光培养,温度为20～25℃;2.诱导愈伤组织再分化的培养基为MS+6-BA2+NAA0.2和MS+6-EA0.5,光照培养,温度为23～28℃;3.诱导小苗     

沿阶草叶片愈伤组织的诱导及其植株再生

植物名称:沿阶草(Ophiopogon japonicus)。材料类别:幼苗叶片。培养条件:种子萌发培养基(1)MS 2,4-D2mg/L(单位下同) BA 0.5;诱导愈伤组织培养基(2)MS 2,4-D 8 NAA 4 IAA 4;分化培养基(3)MS NAA 0.2 BA 2;(4)MS IAA1 BA1 KT1;     

大麦成熟胚愈伤组织的诱导和植株再生的研究

以10个大麦优良品种为实验材料,成熟胚为外植体,研究基因型、种子的不同切割方式、培养基、激素等对大麦成熟胚愈伤组织的诱导及植株再生的影响.结果表明,种子纵切后接种出愈率显著高于横切;改良MS培养基能提高出愈率;在愈伤组织诱导过程中,不同品种对激素2,4-D与Dicamba的反应表现不同;初代愈伤组织经过3次继代培养后会转变为两种类型的胚性愈伤组织;不同品种的植株再生在不同浓度有机添加物的分化培养基上表现不同;长时间的继代培养,一些品种在植株再生过程中出现一定数量的白化苗.供试材料均能进行愈伤组织诱导,但是只有部分品种能再生植株.本实验筛选出愈伤组织诱导频率和绿苗分化率均较高,适合于遗传转化的受体材料,如87-3175、87-0053、97-4010、97-6004及208813-509.     

花生（Arachis Hypogaea）叶片愈伤组织的诱导与植株再生组织的诱导与植株再生

在农业生产上应用植物组织培养技术对有 些作物来说,有可能加速良种的繁殖、优良突变 体的选择以及克服一些常规育种难以解决的问 题等等^[1]。因此,在农业生产上正在逐步为人 们所接受,并在许多大田作物上成功地诱导出 再生植株^[2-4,7]。本文报道花生叶组织诱导植株 再生的结果,以探索组织培养在花生生产上应 用的可能性。     

TDZ高效诱导蝴蝶兰叶片不定芽及植株再生

以蝴蝶兰（Phalaenopsis）无菌幼苗叶片为材料,研究添加TDZ（噻重氮苯基脲）条件下不同基因型、激素组合、叶片大小、暗培养时间对不定芽发生和再生植株的影响。结果表明：在相同培养条件下,不同基因型外植体芽诱导率差异显著,‘红天使’最高,达81.5%,‘汕农姑娘’等2个品种为0,‘满天红’等4个品种为9.2%～34.9%;添加TDZ芽诱导率显著高于6-BA;单独添加TDZ或6-BA芽诱导率显著高于NAA与TDZ或6-BA的组合。叶片越小不定芽诱导率越高;短时间暗处理有利于不定芽的发生。以1～2 cm长叶片为材料、15 d暗处理、在1/2 MS添加3 mg/L TDZ培养基中,‘红天使’的叶片外植体芽诱导率和平均不定芽数分别可达100.0%和18.2个。研究发现,在继代培养中TDZ对芽的伸长有抑制作用。     

夹竹桃叶片培养再生植株

植物名称:夹竹桃(Nerium indicum) 材料类别:幼嫩叶片培养条件:叶片用0.1％升汞消毒后剪成0.5～1.0cm大小的组织块,在MS附加1mg/1IAA,0.5mg/1 2,4-D,0.5mg/1KT固体培养基中培养。培养温度为28℃,每天光照10小时,光照度为4000lx。生长和分化情况:培养7天左右在叶片伤口处产生白色的愈伤组织,1个月左右愈伤组织长至直径1～2cm。这时可以看到两种不同类型的愈伤组织,一种是乳白色的,开始分化出根系,但一直未     

铁棒锤叶片愈伤组织的诱导与植株再生

植物名称:铁棒锤(Aconitum pendulum)。材料类别:根状茎及叶片。试验材料于1984年6月采自陕西太白山北坡海拔3000m左右的林中空地上。接种前将材料置于3～5℃低温条件下保存一周。取根壮茎经表面消毒后切成长5mm的小段接种在含各种激素成份的MS培养基上。经过一个月培养,在MS+NAA0.05+BA1.0(单位为mg/l,下同)的培养基上,根     

圆叶海棠叶片愈伤组织的诱导及其植株再生

植物名称:圆叶海棠(Malus prunifolia)。材料类别:试管苗不同叶位的叶片。培养条件:(1)诱导培养基:LS BA 5mg/L(单位下同) 2,4-D 0.1,琼脂含量0.8％;(2)增殖培养基:LS BA 5 2,4-D 0.2,琼脂含量0.7％;(3)再分化培养基:LS BA 5 2,4-D 0.05,琼脂含量0.7％。(1)～(3)三种培养基为蔗糖浓度0.3％,pH 5.7～5.8的倾斜培养基。(4)发根处理液:IBA 0.3 蔗糖1.5％;(5)发根床采用岩石纤维或蛭石。培养温度25℃左右;暗培养与24h光照(光照度2000lx)培养