高速逆流色谱法从斑唇马先蒿中分离两种黄酮类化合物

建立了从斑唇马先蒿中分离木犀草素和麦黄酮的高速逆流色谱分离方法,即:采用两相溶剂系统正己烷-乙酸乙酯-甲醇-水(10∶12∶9∶12,v/v/v/v),上相作固定相,下相作流动相,在流速2 mL·min-1,转速950 rpm,温度25℃下实现了对上述两种化合物的分离。该方法稳定、高效、回收率高,分离出的化合物纯度均大于99%,可以被用于体内体外活性试验。     

高速逆流色谱法分离制备花生壳中的黄酮类化合物

应用高速逆流色谱法首次从花生壳中分离制备了3种黄酮类化合物。以正己烷-乙酸乙酯-甲醇-水-冰醋酸(5:3:3.5:5:0.25,v/v)为两相溶剂系统,在主机转速800 r/min、流速2 mL/min、检测波长275 nm条件下进行分离制备,纯度用HPLC法测定,各化合物结构经质谱和核磁共振氢谱、碳谱鉴定。结果表明,100 min内从70 mg花生壳粗提物中一步分离制备得到木犀草素11.0 mg,香叶木素2.2 mg,5,7-二羟基色原酮5.2 mg,其纯度均达96.0%以上。利用该方法可以对花生壳中的黄酮类化合物进行快速的分离和纯化。     

木豆种子萌发和幼苗生长过程中的芹菜素与木犀草素含量变化

在木豆种子萌发和幼苗生长过程中,芹菜素与木犀草素含量呈波动型上升,各个器官中的木犀草素含量均高于芹菜素。种子萌发过程中,芹菜素与木犀草素最高含量分别是其在干种子的3．04和4．47倍。幼苗生长过程中,根中芹菜素和木犀草素含量高于茎和叶,芹菜素最高含量是茎和叶的1．5和1．6倍,木犀草素最高含量是茎和叶的4．4和4.2倍。二者在茎和叶中的含量及其变化趋势都基本上相似,平缓上升。     

HPLC同时测定药用白菊花中绿原酸、木犀草素、芹菜素和金合欢素

采用高效液相色谱法(HPLC)建立同时测定药用白菊花中绿原酸、木犀草素、芹菜素和金合欢素含量的方法,样品采用离子液体分散液相微萃法提取。采用Phenomenex C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5μm);流动相:甲醇-0.2%冰醋酸溶液(65∶35);检测波长350 nm;柱温35℃;流速0.8 mL/min。绿原酸、木犀草素、芹菜素和金合欢素的质量浓度与峰面积分别在0.0005~100(r=0.9999)、0.00095~190(r=0.9999)、0.0008~160(r=0.9997)、0.00061~122μg/mL(r=0.9996)呈良好的线性关系;回收率分别为90.52%~100.44%、90.88%~98.58%、94.40%~98.82%、93.68%~100.54%。该方法快速,简便,重复性好,适合于同时测定药用白菊花中绿原酸、木犀草素、芹菜素和金合欢素的含量。     

高速逆流色谱法分离纯化茶黄素

首次应用高速逆流色谱法分离纯化茶黄素单体成分,溶剂系统为乙酸乙酯－正己烷－甲醇－水（３：１：１：６）,优化了分离茶黄素的条件。同时与ＳｅｐｈａｄｅｘＬＨ－２０柱色谱法梯度洗脱对比,结果表明,高速逆流色谱法分离时间相对较短,可进行较大量的分离制备。高速逆流色谱法较之ＳｅｐｈａｄｅｘＬＨ－２０柱色谱法还有一个突出的优点,即无不可逆吸附污染及不会导致样品化学变性。     

高速逆流色谱法分离纯化青皮中六种多甲氧基黄酮

应用高速逆流色谱法(HSCCC)分离制备了青皮中6种多甲氧基黄酮类(Polymethoxyflavones,PMFs)化合物。以正己烷-乙酸乙酯-甲醇-水(体积比为4∶6∶4∶6)为两相溶剂系统,在主机转速800 r/min、流动相流速2mL/min、检测波长254 nm条件下进行分离制备,460 min内从270 mg青皮粗提物中一步分离制备得到甜橙素(1,sinensetin)3.5 mg,5,7,8,4-四甲氧基黄酮(2)13.9 mg,川陈皮素(3,Nobiletin)51.3 mg,3,5,6,7,8,3′,4′-七甲氧基黄酮(4)9.5 mg,橘皮素(5,Tangeretin)44.7 mg,5-去甲川陈皮素(6,5-O-DesmethylNobiletin)11.2 mg,纯度均达97%以上,各化合物结构经质谱和核磁共振氢谱、碳谱鉴定。利用该方法可以对青皮中的黄酮类化合物进行快速的分离和纯化。     

高速逆流色谱法分离制备丹酚酸B

采用高速逆流色谱法分离纯化丹参水溶性成分丹酚酸类物质,制备丹酚酸B化学对照品。分离采用的溶剂系统为正己烷-乙酸乙酯-水-甲醇(1.5:5:5:1.5),上相做固定相,下相做流动相,流速为1.7 mL/min,仪器转速850 rpm,进样量80 mg,纯度用HPLC方法测定。结果表明:一次分离可制备63.4 mg丹酚酸B,其纯度为98.6%。该方法操作简单,可作为高纯度丹酚酸B化学对照品的制备分离方法。     

离子液体优化高速逆流色谱法分离槐花中的黄酮类化合物

应用高速逆流色谱法首次从槐花中一步分离出2种黄酮类化合物,并利用离子液体提高分离效果。以正己烷-乙酸乙酯-乙醇-水-冰醋酸(1∶1∶1∶1∶0.05,v/v)为两相溶剂体系,从50 mg槐花粗提物中一步分离得到芦丁18.2 mg,槲皮素9.6 mg,其纯度均在97%以上。加入离子液体1-丁基-3-甲基咪唑六氟化硼酸([BMIM][PF6]),使出峰时间由原来的85 min提前到55 min,分离度由0.9提高到1.8,达到完全分离,分离效果得到明显提高,为离子液体在高速逆流色谱中的进一步应用提供依据。     

高速逆流色谱分离制备栀子苷

以栀子苷粗提取物为原料,采用高速逆流色谱法分离栀子苷,溶剂系统为A:乙酸乙酯∶正丁醇∶水(2∶1.5∶3)和B∶正丁醇∶水(1∶1),上相为固定相,下相为流动相,流速为2.0 mL/min,转速为850 r/min,温度控制在25℃,纯度用HPLC测定.结果表明,利用溶剂系统A和B进行HSCCC制备栀子苷,使栀子苷含量从50.75％(HPLC)分别提高至86.6％和91.8％,回收率分别为81.36％和78.12％.     

微生物发酵产辅酶Q10的高速逆流色谱法分离纯化

本文首次将高速逆流色谱法应用于微生物发酵液提取物中辅酶Q10的分离纯化,建立了一套可用于其制备分离的逆流色谱溶剂体系正庚烷－乙睛－二氯甲烷(12：7：3.5, v/v/v)。500mg发酵液粗提物经一步制备分离,可得到绝对纯度在98％以上辅酶Q10130mg。比较表明,该方法较传统的硅胶柱层析和结晶相结合的纯化方法在产物纯度、回收率及产率等方面都有一定的优势。     

青蕨根化学成分的研究

从青蕨根部的氯仿提取组分中分离得到5个已知化合物,在对其理化性质及波谱分析的基础上,分别将其结构鉴定为licoagrochalcone D(1),香草醛(2),檞皮素(3),dihydroechioidinin(4),β-谷甾醇(5)。化合物1,3和4为首次从该植物中分离得到。     

高速逆流色谱法从白芍中分离纯化五没食子酰基葡萄糖

本文建立高速逆流色谱(HSCCC)方法,从白芍粗提物中分离纯化五没食子酰基葡萄糖.分别采用正己烷-乙酸乙酯-甲醇-水体积比0.5∶5∶1∶5及0.5∶5∶0.5∶5混合溶剂作为两相溶剂体系,上相为固定相,下相为流动相,转速为800 rpm,流速为2.0 mL/min,用HPLC检测及ESI-MS进行验证.经过两次HSCCC分离纯化,得到五没食子酰基葡萄糖纯度为95.7％.     

HSCCC-ELSD法分离纯化青葙子中的皂苷

连接有蒸发光散射检测器的高速逆流色谱仪首次成功的应用于制备和分离青葙子中的皂苷celosins A和B.二氯甲烷∶正丁醇∶甲醇∶水(4∶0.3∶3∶2)+0.5％冰醋酸作为洗脱溶剂系统.从半制备型HSCCC收集到的组分进行HPLC分析,可以得到:celosin A纯度为98.9％,celosin B的纯度为98.1％.这是高速逆流色谱仪首次被用于纯化青葙子中的皂苷,两个化合物的结构通过碳谱和质谱来确定.     

高速逆流双水相色谱法纯化卵白蛋白

生物大分子的液_固色谱纯化过程中固相载体会产生产物吸附、变性等不良影响。高速逆流色谱无需固相载体 ,且具有高分便率和高回收率的优点 ,其中有机相 水相体系在分离天然产物中应用广泛 ,而应用双水相体系分离生物大分子尚处于研究阶段。双水相高速逆流色谱体系的建立与仪器设备及操作工艺条件密切相关 ,因此利用多分离柱高速逆流色谱仪 ,研究了PEG1000-无机盐双水相体系对标准蛋白质混合物以及卵白蛋白的分离。pH值和PEG浓度对不同种类蛋白质的分配系数影响不同 ,实验发现在pH9.2的150% (W/W)PEG1000 170% (W/W)磷酸钾盐体系中 ,细胞色素C、溶菌酶和肌红蛋白的分配系数差异较大 ,且分布合理 ,因而采用该体系在 0 8mL min流速 ,85 0r min转速的条件下 ,成功分离了细胞色素C、溶菌酶和肌红蛋白的混合物。实验也发现在pH9 2的 16 0 % (W/W)PEG10 0 0 17 0 % (W/W)磷酸钾盐体系中 ,鸡蛋清样品中的主要蛋白质成分:卵转铁蛋白、卵白蛋白和溶菌酶的分配系数差异最大 ,因而采用该体系在 1 8mL min流速、85 0r mi转速的条件下,200min内从鸡蛋清样品中成功分离卵白蛋白,其电泳纯度为100%,收率为95%.     

高速逆流色谱法分离纯化丹参并尝试制订中药指纹图谱

用国产高速逆流色谱（HSCCC）分离纯化中草药——丹参,选用正己烷乙醇水体系,固定相保留率达到788%。采用分步洗脱,3个产地丹参各分离得到12个洗脱组分,经高效液相色谱仪和紫外光谱仪检测证明3张HSCCC洗脱图谱中对应洗脱峰为同一组分。HSCCC洗脱图谱不包含非共有峰,并且对应洗脱峰保留时间的相对标准偏差RSD<3%,符合国家标准关于制订指纹图谱方法学考察资料的技术参数。因此,HSCCC作为制订指纹图谱的方法之一具有可行性。     

高速逆流色谱分离制备甘草中的甘草苷和芒柄花苷

应用高速逆流色谱分离制备甘草中的甘草苷和芒柄花苷。将甘草乙酸乙酯提取物经聚酰胺柱粗分后,30%乙醇洗脱物用高速逆流色谱进一步分离,所用两相溶剂系统为乙酸乙酯-水(5∶5,v/v),转速850 rpm,流速2.0 mL/min,检测波长254 nm,从50 mg30%乙醇洗脱物中得到甘草苷8.7 mg、芒柄花苷4.2 mg,纯度分别为99.5%和97.3%。所得产物的结构经核磁共振谱(NMR)鉴定。利用该方法可以对甘草中的甘草苷和芒柄花苷进行快速的分离和纯化。     

High Levels of Genetic Divergence among Populations in a Weedy Fern, Pteris multifida Poir.

Abstract Intragametophytic selfing in the homosporous ferns has been viewed as an advantageous mechanism permitting colonization of distant, open habitats. However, there is little evidence for the generality of colonization through intragametophytic selfing. In this study, the genetic structure of Pteris multifida was determined using Wright's F-statistics in order to detect the occurrence of this type of colonization. A high level of genetic divergence among populations (F_ST= 0.543) was found in P. multifida. This genetic divergence seems to be caused by frequent occurrences of colonization through intragametophytic selfing.     

高速逆流色谱结合半制备液相色谱制备甘青青兰中3种活性成分

采用高速逆流色谱（HSCCC）结合液相色谱法制备甘青青兰（Dracocephalum tanguticum Maxim.）中绿原酸、胡麻甙-6″-乙酯、迷迭香酸,建立快速分离制备甘青青兰中活性成分的方法。采用半制备型高效液相色谱（SP-HPLC）富集甘青青兰乙酸乙酯萃取物中绿原酸、胡麻甙-6″-乙酯、迷迭香酸,再用制备液相（Pre-HPLC）和HSCCC对富集物进行分离纯化,获得54 mg化合物Ⅰ、130 mg化合物Ⅱ和200 mg化合物Ⅲ,纯度分别为96.9%、97.9%和95.1%,经核磁共振碳谱（¹³CNMR）和氢谱（¹HNMR）分别鉴定为绿原酸、胡麻甙-6″-乙酯和迷迭香酸。本实验方法适用于甘青青兰乙酸乙酯萃取物中绿原酸、胡麻甙-6″-乙酯和迷迭香酸的分离制备,并避免了传统分离方法操作繁多、试剂消耗量大、不可回收等弊端,为分离甘青青兰活性成分、制备对照品等研究提供了参考依据。     

Sesquiterpenoids and flavonoids from Pteris multifida Poir.

Phytochemical research of Pteris multifida Poir. led to the isolation of fifteen compounds, including six flavonoids (1–6) and nine sesquiterpenoids (7–15). Their structures were characterized by NMR, MS, ORD and CD data. Compounds kaempferol 3-O-α-L-rhamnoside-7-O-β-D-glucoside (1), myricetin 3-O-β-D-glucoside (2), kaempferol 3-O-β-D-glucoside (4), luteolin-7-O-β-D-rutinoside (5), quercetin-3-O-α-L-rhamnopyranoside (6), (2S,3S)-12-hydroxypterosin Q (7), (2S,3S)-pterosin Q (8), 2-hydroxypterosin C (9) and (2S)-12-hydroxypterosin A (10) were first isolated from P. multifida, and compounds 1–2 and 10 were first isolated from the family Pteridaceae. Furthermore, the chemotaxonomic significance of the isolates was discussed.