矮生龙船花的组织培养和快速繁殖

矮生龙船花(IxoracoccineaL.)的带节茎段在MS 2,4D2.0mg/L培养基上产生大量的愈伤组织;在MS 6BA1.0mg/L NAA0.2mg/L培养基上芽的增殖系数达413,并产生少量的愈伤组织;在MS NAA0.2～2.0mg/L培养基上只产生芽而无愈伤组织形成。愈伤组织在MS 6BA0.5mg/L NAA0.5mg/L培养基上产生大量的不定芽,丛生芽在MS 6BA0.5mg/L NAA0.5mg/L培养基上生长较快并产生较多分枝,将分枝节下或切成段后在MS 6BA0.5mg/L NAA0.5mg/L培养基上能迅速生长并产生新的分枝。试管内小苗在1/2MS NAA0.5mg/L培养基上的生根壮苗效果较好。矮生龙船花试管苗成活率为935%。     

非洲紫罗兰叶片体细胞胚培养及快繁技术研究

以非洲紫罗兰叶片为材料进行胚状体诱导及快繁技术研究.结果表明:.在MS NAA0.1mg/L BA0.1 mg/L 2,4-D1.0 mg/L的培养基上培养15d利于诱导胚性细胞分化,起始黑暗培养5～10d可提高胚性细胞分化率;在MS BA0.05～1mg/L的培养基上可诱导胚状体大量发生;在MS NAA0.1mg/L十BA0.1 mg/L的培养基上能够获得茎芽快速增殖;在1/2MS NAA0.01mg/L的培养基上可以生根.     

樱桃砧木Colt离体叶片再生

以樱桃砧木Colt试管苗的叶片为外植体 ,通过先诱导愈伤组织分化不定芽以及叶片直接分化不定芽两种途径诱导再生。结果表明 :在MS附加NAA 1 0mg/L、KT3 0mg/L、ZT0 2 5mg/L培养基中 ,愈伤诱导率可达 1 0 0 % ;诱导的愈伤在MS附加NAA 0 2mg/L、IAA0 5mg/L、6 BA 0 5mg/L、KT 1 0mg/L、GA 0 5mg/L培养基中 ,不定芽分化率为 2 1 3% ;在MS附加 6 BA 6 0mg/L、NAA 1 0mg/L、GA 0 5mg/L中 ,叶片 -叶柄不定芽诱导率可达 48 3%。     

皂质芦荟的组织培养

将皂质芦荟的茎段及幼苗作为外植体进行组织培养,试验结果表明：皂质芦荟的茎段经40d左右可诱导形成愈伤组织,再经20d萌生再生芽：幼苗培养需要30d左右基部直接分化再生芽。同时经试验筛选出愈伤组织形成、再生芽分化和生根的最适培养基为：MS＋6－BA 2.0mg/L NAA 0.1mg/L、MS 6-BA 3.0mg/L NAA 0.1mg/L和MS NAA 0.3mg/L。     

丽格海棠的离体快繁

取丽格海棠幼叶为外植体,在诱导培养基MS＋BA 0．5mg/L NAA 1.0mm/L上培养20d左右,开始分化花芽,培养40d丛生芽长满整个外植体,丛生芽的增殖培养以MS＋BA 0．5mg/L为佳,芽长得大且粗壮,粗壮芽转入无激素的1／2MS生根培养基,生根率达100％。     

木立芦荟组织培养pH分化特性及快速繁殖的研究

以木立芦荟的叶片、叶鞘、带腋芽的茎段为外植体进行试管培养 ,结果叶鞘和茎段可诱导形成愈伤组织 ,腋芽直接萌生。经试验筛选出各培养阶段最适宜的培养基为 :( 1 )愈伤组织诱导 ,MS BA 2 .5mg/L NAA0 .1 5mg/L ;( 2 )腋芽萌生 ,MS BA 2 .0mg/L NAA 0 .1 5mg/L ;( 3 )丛生芽分化及继代 ,MS BA 2 .0mg/L NAA0 .1 0mg/L ;( 4)生根 ,MS BA 0 .3～ 0 .5mg/L IBA 0 .2mg/L 活性碳 0 .5%。研究还发现 ,培养基酸碱度对木立芦荟组织培养分化效果的影响非常显著。     

茎用芥菜的离休培养及植株再生

植物名称:茎用芥菜(Brassica juncea var.tumida)。材料类别:幼叶、子叶。培养条件:以MS为基本培养基,诱芽培养基为:(1)MS BA 2mg/L(单位下同) NAA 0.2;(2)MS BA2 NAA0.5;(3)M8 BA4 NAA0.1.(4)MSS BA4 NAA 0.2;(5)MS BA4 NAA 1.0。生根培养基为:(6)MS NAA 0;(7)MS NAA 0.1;(8)MS NAA 0.5;(9)MS     

杉木再生系统的比较研究

通过对杉木(Cunninghamia lanceolata Hook)再生系统的比较研究,建立了子叶、下胚轴、茎段和针叶等四个再生体系。子叶在附含1mg/L BA和0.1mg/L NAA的DCR培养基中再生频率为93.7%±0.45%,平均芽数为3.76±0.25;下胚轴在附含2mg/L BA和0.2mg/L NAA的DCR培养基中再生频率为96.2%±0.35%,平均芽数为17.4±0.18;茎段在附含1mg/L BA和0.1mg/L NAA的DCR培养基中再生频率达100%,平均芽数为3.28±0.11;针叶在附含1.5mg/L BA和0.1mg/L NAA的DCR培养基中再生频率达84.5%±0.45%,平均芽数仅为1.42±0.08。不定芽在附含0.2mg/L BA和0.02mg/L NAA的DCR培养基中有效伸长。芽苗经预处理后在附含0.3mg/L IBA的1/2 DCR培养基中生根效果最佳。     

泡桐愈伤组织再生植株的诱导与培养

首先以MS为基本培养基从18个不同浓度的NAA和BA组合中,找出了毛泡桐（Paulownia tomentosa）、南方泡桐（Pauiownia australis）、白花泡桐（Paulownia fortunei）、兰考泡桐（Paulownia elongata）和豫杂一号泡桐(Paulownia tomentosa×P.fortunei)叶片愈伤组织诱导芽分化最适培养基分别为MS+0.3NAA+12 BA、MS+0.3NAA+12 BA、MS+0.5NAA+12 BA、MS+0.5NAA+12 BA和MS+0.7NAA+12 BA;然后,筛选出了5种泡桐芽诱导根的最适培养基（分别为1/2MS+0.1NAA、1/2MS+0.1NAA、1/2MS、1/2MS+0.3NAA和1/2MS+0.5NAA）。这些结果为利用不同种泡桐的原生质体融合培育泡桐新品种奠定了一定的基础。     

小舌凤梨的组织培养

植物名称:小舌凤梨(Guzmania minor)。材料类别:无菌实生苗。培养条件:1/5MS为种子培养基。丛生芽诱导培养基:MS+BA2mg/L(单位下同)+NAA0.2。继代增殖培养基:①MS+BA1+NAA1+椰乳10％;②MS+BA1+NAA1。生根和壮苗培养基MS+NAA0.2～0.5。培养室温度25～30℃,光照度2000lx,每天光照12小时。     

无融合生殖油菜AMR—1花托离体培养的研究

报道了不同激素浓度对无融合生殖没菜花托器官分化效果的研究,结果显示：（１）以ＭＳ为基本培养基,以带有子房和花柄的花托为外植体离体培养,花托、花柄切口部位直接芽诱导的最佳激素配比为４．０ｍｇ／Ｌ６－ＢＡ＋０．０１ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ,频率为５８．８２％,花托、花柄部位先形成愈伤组织,继而分化出丛生芽的最佳激素配比为５．０ｍｇ／Ｌ ６－ＢＡ＋０．５ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ,频率为８４．００％;（２）腋芽增殖的最佳     

石斛离体培养中ABA对诱导花芽形成的影响

由兰科植物铁皮石斛（Ｄｅｎｄｒｏｂｉｕｍ ｃａｎｄｉｄｕｍ Ｗａｌｌ．ｅｘ Ｌｉｎｄｌ．）种子诱导形成的愈伤组织,在光照下置于ＭＳ附加０．３ ｍ ｇ／ＬＮＡＡ 的培养基上繁殖,可以形成原球茎。将原球茎转入ＭＳ含２ ｍ ｇ／Ｌ ６－ＢＡ 和０．５ ｍ ｇ／ＬＮＡＡ 的培养基上,花芽形成频率为２７．０％ 。原球茎先在０．５ ｍ ｇ／ＬＡＢＡ的培养基上预培养１５ ｄ,再转入含２ ｍ ｇ／Ｌ６－ＢＡ 的ＭＳ培养基上培养,花芽形成频率明显提高,可达８４．４％ ,而且每株植株花的数目增加;但是在仅有ＡＢＡ 的ＭＳ培养基上培养的原球茎再生的植株未见花芽形成     

Tissue Culture and Plant Regeneration of Jatropha curcas (Euphorbiaceae)

In this paper , plumules, cotyledons, hypocotyls, blades, petioles and stalks of physic nut ( Jatropha curcas L. ) were used as explants, and callus induction and plant regeneration were studied on MS medium contained different concentrations of 6-BA and NAA. The results showed that the MS medium with 5.0 mg/L BA and 1.0 mg/L NAA was the best for callus induction, and with 5.0mg/L BA and 0.1mg/L NAA, for formation of adventitious bud, and with 1.0mg/L BA and 1.0 mg/L NAA, for bud growth, and that 1􊄯2 MS medium with 1.0 mg/L NAA was the best for formation and growth of adventitious root .     

罗汉果组培繁殖的技术要点

报道罗汉果组培繁殖的各项主要技术要点,包括组培条件、培养基的配制、外植体的选取与消毒、接种与培养、种源保存、炼苗与移栽、苗木包装与运输等。提出了5种培养基参考配方,即茎段诱导培养:MS+BA0.5～1.0mg/L+IAA(NAA)0.05～0.1mg/L+白糖3%+琼脂4.5g/L,pH5.8;茎尖诱导培养:MS+BA0.5～1.0mg/L+NAA0.05～0.1mg/L+椰子水100mL+白糖3%+琼脂4.5mg/L,pH5.8;继代培养(丛生芽方式):MS+BA0.3～0.7mg/L+NAA0.05/IAA0.1mg/L+白糖3%+琼脂4.5mg/L,pH5.8;继代培养(微型扦插方式):MS+BA0.1mg/L+IAA0.3mg/L+活性炭0.07g/L+白糖3%+琼脂4.5mg/L,pH5.8;生根培养:MS+BA0.07mg/L+IBA0.15mg/L+IAA0.1mg/L+活性炭0.1g/L+白糖3%+琼脂4.5mg/L,pH5.8。分析了外植体培养过程中可能出现的不良状况的原因并提出预防措施,明确了炼苗移栽的适宜条件并制定出相应的管理方法。形成了一套较为完整的罗汉果组培苗繁殖生产技术规程。     

马可波罗百合的组织培养和离体快繁

以马可波罗百合的鳞片、茎段和茎尖为外植体 ,成功建立了快速无性繁殖系。诱导鳞片产生丛芽的最佳培养基为 :MS +0 .3～ 0 .8mg/LBA +0 .0 5mg/LNAA ;茎尖的最佳诱导培养基为 :MS +2mg/LBA +0 .0 5mg/LNAA ;茎段的最佳诱导培养基为 :MS +0 .8mg/LBA +0 .1mg/LNAA。丛芽增殖培养基 :MS +0 .2mg/LBA +0 .1mg/LNAA和MS +0 .2mg/LBA +0 .1mg/LIAA。生根诱导最佳培养基为 1 /2MS +0 .2mg/LKT +0 .0 5～ 0 .5mg/LNAA。     

大果良种沙棘愈伤组织诱导及植株再生的研究

大果良种沙棘的幼嫩茎尖,茎段外植体接种在MS,1／2MS附加不同浓度配比的IAA,IBA,BA,NAA培养基上可诱导茎尖及腋芽生长,将诱导产生的无性系芽接种在MS或1／2MS附加BA0．3－0．5mg/L,NAA0．05mg/L的培养基上可形成丛生芽,同时在小叶片和嫩茎上诱导产生愈伤组织,继续培养愈伤组织表面形成大量的绿色突起,进一步分化成不定芽,在相同培养基上,不定芽上可直接产生不定芽,从而形成多达数百个的不定芽族,不定芽长至3cm时切下转至1／2MS附加IAA或IBA 0．2mg/L的培养基上可生根而形成完整 的再生植株。     

不同生长调节剂对丹参快速繁殖的影响

探讨了丹参(Salvia miltiorrhiza Bunge)快速繁殖过程中不同生长调节剂的影响.实验表明:MS 6-BA 2.0mg/L NAA 0.05 mg/L是诱导初代培养的芽产生大量丛生芽的最佳培养基,其诱导生芽率为100%;最佳的丛生芽增殖培养基为MS 6-BA 1.0 mg/L NAA 0.01 mg/L,其增殖倍数为15倍;MS 6-BA 0.5～2.0 mg/L是诱导大量不定芽的最佳培养基,其诱导生芽率为100%,最佳的不定芽增殖培养基为MS 6-BA 1.0 mg/L,其增殖倍数为24倍;诱导生根较好的培养基为1/2MS IBA 0.1 mg/L,生根率为98%,移栽成活率为100%.     

激素对贯叶连翘器官分化的影响

贯叶连翘 (ＨｙｐｅｒｉｃｕｍｐｅｒｆｏｒａｔｕｍＬ .)为多年生草本 ,中国民间主要用于止血、抗炎、妇科病等[1] ,欧洲民间用于治疗创伤也有相当长的历史。近年来 ,欧、美等国家和地区将其应用于抑郁症的治疗 ,取得了很好的疗效。 80年代后期 ,由于发现该植物体内含有显著抗     

小桐子的组织培养和植株再生

以小桐子（Jatropha curcas）的胚芽、子叶、下胚轴、叶柄、叶片和茎段作为外植体,用不同浓度的6-苄基腺嘌呤（6-BA）和α-萘乙酸（NAA）对其进行愈伤组织的诱导和植株再生的研究。结果表明：在MS培养基中加入5．0mg／L6-BA和1．0mg／LNAA对愈伤组织的诱导效果最好;加入5．0mg／L6-BA和0．1mg／LNAA对不定芽的诱导最为有效,加入0．1mg／L6-BA和1．0mg／LNAA有利于芽的生长;加入1．0mg／LNAA的1／2MS培养基对生根最为有利。     

中国野生葡萄组织培养研究

对中国野生山葡萄左山—1、左山—2、燕山葡萄燕山—1和秋葡萄平利—7的叶片、叶柄、茎段及单芽茎段进行了离体培养研究。诱导左山—1叶片分化出不定芽的培养基为MS BA 5．0mg／L NAA0．1mg／L,诱导率2．5％;诱导平利—7叶柄分化出不定芽的培养基为MS BA7．0mg／L NAA0．1mg／L,诱导率1．95％;诱导左山—1、燕山—1和平利—7茎段分化出不定芽的培养基与叶柄相同,但诱导率相对较高,分别为8．25％、4．88％和6．49％;应用这一培养基对平利—7、左山—2的单芽茎段进行培养,丛状不定芽的诱导率均为100％。不定芽继代培养基为MS BA0．5mg／L IBA0．2mg／L;生根培养基为1／2MS IBA0．1—0.2mg／L。