八角莲组织培养研究

以八角莲种子为外植体,MS为基本培养基,通过不同的激素种类和浓度配比,对八角莲进行组织培养研究。结果表明:种子在MS+BA1.0mg/L+IBA0.5mg/L+GA34.0mg/L培养基上容易萌芽,发芽率为72.4 %;培养基MS+BA10.0mg/L+GA30.5 mg/L可诱导种子幼苗形成丛生芽;继代繁殖在MS+BA(8.0～10 .0)mg/L+GA32 .0mg/L与低浓度BA或无BA的培养基上进行循环培养效果较好;MS+NAA1.0 mg/L+AC0.2g/L适宜诱导生根获得再生植株,生根率100%。带叶叶柄在MS+BA1.0mg/L+2-ip(0.5～1.0) mg/L+NAA0.02 mg/L培养基上可诱导愈伤及根,直接形成再生植株。生根苗移栽成活率90 %。     

罗汉果叶片离体再生快繁技术

以罗汉果(Ssiraiti grosvenori)叶片为外植体,探讨培养方式、激素组合对愈伤组织诱导和不定芽分化的影响。结果表明:罗汉果叶片在培养基MS+BA 1.0 mg/L+IBA 0.7 mg/L上培养4周愈伤组织的诱导率达90%以上;罗汉果愈伤组织在培养基MS+BA 1.0 mg/L+IBA0.2 mg/L+赛苯隆(TDZ)0.1 mg/L上不定芽的分化率可达70%,平均出芽指数3.7;罗汉果试管苗在培养基MS+BA 2.0 mg/L+IBA 0.2 mg/L上茎芽增殖比较稳定,在培养基MS+IBA0.1 mg/L上培养2周开始分化不定根,其生根率在90%以上。     

矮生龙船花的组织培养和快速繁殖

矮生龙船花(IxoracoccineaL.)的带节茎段在MS 2,4D2.0mg/L培养基上产生大量的愈伤组织;在MS 6BA1.0mg/L NAA0.2mg/L培养基上芽的增殖系数达413,并产生少量的愈伤组织;在MS NAA0.2～2.0mg/L培养基上只产生芽而无愈伤组织形成。愈伤组织在MS 6BA0.5mg/L NAA0.5mg/L培养基上产生大量的不定芽,丛生芽在MS 6BA0.5mg/L NAA0.5mg/L培养基上生长较快并产生较多分枝,将分枝节下或切成段后在MS 6BA0.5mg/L NAA0.5mg/L培养基上能迅速生长并产生新的分枝。试管内小苗在1/2MS NAA0.5mg/L培养基上的生根壮苗效果较好。矮生龙船花试管苗成活率为935%。     

沙打旺原生质体培养再生植株

用1%半纤维素酶,0.4%纤维素酶,0.1%果胶离析酶,CPW9M酶液分离沙打旺无菌苗下胚轴和子叶原生质体。K8P原生质体培养基悬滴培养。下胚轴原生质体形成小细胞团后用琼脂糖包埋培养,形成小块愈伤组织后转入增殖培养基M1、M2(改良MS培养基)上形成大块愈伤组织。经过两次诱导分化,在分化培养基M3(MS 0.7mg/L BA 0.2mg/L NAA),M4(MS 0.5mg/L BA 0.5mg/L KT 0.5mg/L ZT 0.2mg/L NAA)和M6(MS 3mg/L ZT 0.2mg/L IAA)上分化出苗,再生植株。由子叶分离的原生质体未能形成愈伤组织。     

野生蔬菜椒蒿的组织培养及植株再生研究

把椒蒿种子接种在MS基本培养基上获得无菌苗,将其生长整齐一致的茎段接入不同激素浓度组合的MS培养基上进行继代增殖培养和生根培养。结果表明,茎段增殖的最佳培养基为MS BA0.1~0.2 mg/L IBA0.02~0.06 mg/L;适宜的生根培养基为MS IBA0.1~2 mg/L或MS NAA0.1 mg/L,生根率可达100%。     

青紫葛的组织培养

植物名称:青紫葛(Cissus discolor),又名青紫藤或花叶粉藤。培养材料:茎尖、茎节、节间及叶片。培养条件:基本培养基为MS培养基(无机盐减半),蔗糖2％,添加LH0.1mg/L,附加激素含量:(1)2,4-D 0.5mg/L(单位下同) BA0.2;(2)2,4-D 2.0 BA0.2;(3)BA1.0 NAA0.01;(4)DA2 NAA1.0。继代培养基为MS BA2     

美洲黑杨(中嘉8号)离体叶片再生研究

用中嘉8号杨[Populus deltoids(I-63×I-69)]试管苗叶片作外植体,在添加不同生长素和细胞分裂素浓度配比的1/2(N)MS培养基上,筛选出叶片直接分化不定芽的最适培养基1/2(N)MS 0.2 mg/L BA 0.02 mg/LNAA 25 g/L蔗糖 7 g/L琼脂,不定芽分化率为85%。同时发现,一定浓度的KT对生根具有促进作用,最适生根培养基为MS 0.08 mg/L KT 0.02 mg/L NAA 25 g/L蔗糖 8 g/L琼脂,生根率为82.2%。     

发根农杆菌诱导甘薯发根条件的优化

通过诱导甘薯(徐薯18)发根的条件进行优化,分别时侵染时间(10min、20min和30min)、培养基[MS、MSJ(MS BA0.1mg/L NAA0.2mg/L)和MSS(MS BA0.2mg/L NAA0.1mg/L)]、诱导材料(叶片、叶柄和茎切段)和除菌药物剂量(羧苄青霉素浓度0.5mg/L、1.0mg/L和1.5mg/L)进行优化.试验按L9(34)正交设计,每个处理3次重复.然后通过PCR检测徐薯18和其发根中的rol基因.结果表明用发根农杆菌A4经20min侵染,通过MSJ活化的徐薯18的茎切段生成发根的发根诱导率最高,最佳的除菌羧苄青霉素浓度为1.0mg/L.PCR检测证明得到的发根是发根农杆菌诱导产生的.在此优化条件下诱导的发根诱导率高,得到发根的可靠性强,且生成的发根粗壮、生长迅速、分支众多.     

从麻疯树上胚轴外植体再生植株

以麻疯树上胚轴为实验材料在MS添加IBA和BA的培养基上进行离体培养实验.结果表明,在IBA O.1 mg/L与BA 0.2～0.7 mg/L组合的条件下,不定芽从上胚轴外植体的表面直接被诱导分化,其中以在MS IBA 0.1 mg/L BA 0.5 mg/L上的诱导率最高.从愈伤组织来源的植株再生需要IBA 0.5 mg/L与BA 0.1 mg/L、IBA 0.5 mg/L与BA0.2mg/L以及IBA1.0mg/L与BA0.5mg/L的激素组合,其分化的最佳培养基是MS IBA1.0 mg/L BA0.5 mg/L.生长健壮的不定芽和再生植株能在无激素的MS基本培养基上生根.发育良好的再生苗可成功地转移到温室栽培而没有可见的变异.     

茎用芥菜的离休培养及植株再生

植物名称:茎用芥菜(Brassica juncea var.tumida)。材料类别:幼叶、子叶。培养条件:以MS为基本培养基,诱芽培养基为:(1)MS BA 2mg/L(单位下同) NAA 0.2;(2)MS BA2 NAA0.5;(3)M8 BA4 NAA0.1.(4)MSS BA4 NAA 0.2;(5)MS BA4 NAA 1.0。生根培养基为:(6)MS NAA 0;(7)MS NAA 0.1;(8)MS NAA 0.5;(9)MS     

茎用芥菜细胞质雄性不育系子叶原生质体培养和高效植株再生

利用茎用芥菜细胞质雄性不育系原生质体培养获得了再生植株,并研究了影响原生质体培养的因素.结果表明,子叶是茎用芥菜原生质体培养最佳的外植体,10 d苗龄的子叶原生质体在改良MS培养基上培养3 d后发生第1次细胞分裂,6 d后发生第2次分裂,3周后形成细胞团,5周后形成肉眼可见的小愈伤.培养基中缺少NAA或2,4-D都会降低愈伤组织的再生能力.在含一定浓度的NAA(0.25 mg/L)和2,4-D(0.25 mg/L)培养基上诱导的愈伤组织质地致密且有光泽,芽的分化能力高;在MS+BA l mg/L+NAA 0.2 mg/L的培养基上芽的分化频率高达近29%,再生芽在1/2MS+NAA0.1 mg/L培养基上生根,形成完整植株.     

日本高杆青花菜组织培养初探(简报)

以日本高杆青花菜(スティックセニョール)茎段及带叶腋芽为外殖体,接种于MS BA 3.0mg/L NAA 0.5mg/L 培养基上培养20d,腋芽萌发生长成2～3cm 高的芽苗,而茎段则膨大后从切口生长出淡绿色愈伤组织,并分化出大量丛生芽。将幼苗转接到MS BA2.0mg/L NAA0.2mg/L 培养基上进行增殖培养,繁殖系数为4～6,待芽长2～3cm 时再分切成单株于1/2MS NAA0.2mg/L IBA0.1mg/L 培养基上进行生根培养,25d 后,生根率可达86%。在温度20～25℃条件下,移栽成活率82%。     

茎用芥菜细胞质雄性不育系子叶原生质体培养和高效植株再生（英文）

利用茎用芥菜细胞质雄性不育系原生质体培养获得了再生植株,并研究了影响原生质体培养的因素.结果表明,子叶是茎用芥菜原生质体培养最佳的外植体,10 d苗龄的子叶原生质体在改良MS培养基上培养3 d后发生第1次细胞分裂,6 d后发生第2次分裂,3周后形成细胞团,5周后形成肉眼可见的小愈伤.培养基中缺少NAA或2,4-D都会降低愈伤组织的再生能力.在含一定浓度的NAA(0.25 mg/L)和2,4-D(0.25 mg/L)培养基上诱导的愈伤组织质地致密且有光泽,芽的分化能力高;在MS+BA l mg/L+NAA 0.2 mg/L的培养基上芽的分化频率高达近29%,再生芽在1/2MS+NAA0.1 mg/L培养基上生根,形成完整植株.     

沿阶草叶片愈伤组织的诱导及其植株再生

植物名称:沿阶草(Ophiopogon japonicus)。材料类别:幼苗叶片。培养条件:种子萌发培养基(1)MS 2,4-D2mg/L(单位下同) BA 0.5;诱导愈伤组织培养基(2)MS 2,4-D 8 NAA 4 IAA 4;分化培养基(3)MS NAA 0.2 BA 2;(4)MS IAA1 BA1 KT1;     

药蒲公英再生体系的建立和优化

通过愈伤组织诱导和直接不定芽再生途径 ,建立了药蒲公英的快速高效再生系统。叶片外植体在含0.2mg LIAA和1mg LTDZ的MS培养基中培养 2周后便产生大量的丛生芽 ,在含有 0.5mg/L 2 ,4D和2mg/L 6BA的MS培养基中培养 30d后 ,形成明显的愈伤组织 ,愈伤组织块在含10mg/L 6BA的MS培养基中成功再生。对 9株再生植株进行RAPD检测表明 ,部分植株在DNA水平上发生了变异。与对照相比 ,再生植株的主要抗氧化成分无明显变化 ,保证了有效成分的稳定。     

甜叶菊组培快繁与工厂化育苗技术

以甜叶菊优良品种的茎段为外植体,在MS基本培养基中添加不同浓度的6-BA和NAA,采用侧芽诱导法快速繁殖,研究了甜叶菊的组培快繁与工厂化育苗技术。结果表明,最佳启动培养基为MS+6BA1.5mg/L+NAA0.2mg/L,最佳增殖培养基为MS+6BA0.6mg/L+NAA0.2mg/L,增殖系数4-6,增殖周期15-20 d。最佳生根培养基为1/4MS+NAA0.2mg/L,生根率为100%,且根系发达。经过炼苗移栽,瓶苗移栽成活率在90%以上。     

北海道黄杨试管快速繁殖技术研究

以北海道黄杨的茎段为试材、研究其再生植株在不同外源激素配比下的适宜培养基。试验结果表明,北海道黄杨茎段初代培养的培养基以MS培养基附加BA1.5mg/L,NAA0.5mg/L较好。第一次继代培养的培养基以MS培养基（铁盐加倍）附加BA1.5mg/L,NAA0.5mg/L较为合话,第二次及往后的继代培养的培养基以MS培养基（铁盐加倍）附加BA1.0mg/L、IBA0.2mg/L较适宜,并且,随着继代次数的增加,继代苗的分生率提高,生根培养基为1/2MS（铁盐加倍） NAA0.2mg/L及1/2MS（铁盐加倍）移栽时,以蛭石;腐叶土（1:1）为移栽基质,成活率达100%。     

杉木再生系统的比较研究

通过对杉木(Cunninghamia lanceolata Hook)再生系统的比较研究,建立了子叶、下胚轴、茎段和针叶等四个再生体系。子叶在附含1mg/L BA和0.1mg/L NAA的DCR培养基中再生频率为93.7%±0.45%,平均芽数为3.76±0.25;下胚轴在附含2mg/L BA和0.2mg/L NAA的DCR培养基中再生频率为96.2%±0.35%,平均芽数为17.4±0.18;茎段在附含1mg/L BA和0.1mg/L NAA的DCR培养基中再生频率达100%,平均芽数为3.28±0.11;针叶在附含1.5mg/L BA和0.1mg/L NAA的DCR培养基中再生频率达84.5%±0.45%,平均芽数仅为1.42±0.08。不定芽在附含0.2mg/L BA和0.02mg/L NAA的DCR培养基中有效伸长。芽苗经预处理后在附含0.3mg/L IBA的1/2 DCR培养基中生根效果最佳。     

水塔花属三种植物的组织培养快速繁殖

植物名称:尖萼水塔花(Billbergia magnificavar.a utisepals)、玫瑰水塔花(Billbergia rosea)和斑马水塔花(Billbergia zebrina)。材料类别:幼嫩的无菌实生苗。培养条件:无菌播种培养基:MS。诱导丛生芽培养基:(1)MS BA1mg/L(单位下同) NAA1;(2)MS BA2 IAA0.2;(3)MS BA2 NAA0.2。继代增殖培养基:同(1)。壮苗和生根培养基:MS NAA0.3。采用0.7％琼脂固化培养,pH5.8,培养     

花叶芒毛苣苔茎尖培养和植株再生

植物名称:花叶芒毛苣苔(Aeschynanthus mar-moratus)。材料类别:幼嫩的茎尖。培养条件:培养基分别为(1)MS BA1mg/L(单位下同),(2)MS BA2,(3)MS BA1 NAA0.2,(4)MS BA0.05 B_11 AC0.5％。培养