DGGE技术在动物胃肠道微生物研究中的应用

变性梯度凝胶电泳(DGGE)是通过聚丙烯酰胺凝胶中变性剂浓度梯度的不同,将序列不同的DNA分开。目前,该技术已广泛应用于瘤胃微生物、肠道微生物等多样性研究。综述了变性梯度凝胶电泳技术的基本原理、优缺点及其在动物营养中的应用。     

变性梯度凝胶电泳技术在微生物分子生态学研究中的应用

变性梯度凝胶电泳在微生物分子生态学研究中的应用日益广泛,已成为研究微生物多样性和动态变化的有力工具.对变性梯度凝胶电泳技术中存在的问题,如基因片段的选择、共迁移、背景色和异源双链分子的形成等作了综述,以期为进一步更好地利用该技术进行微生态的研究奠定基础.     

PCR-DGGE技术在农田土壤微生物多样性研究中的应用

变性梯度凝胶电泳技术(DGGE)在微生物生态学领域有着广泛的应用。研究采用化学裂解法直接提取出不同农田土壤微生物基因组DNA,并以此基因组DNA为模板,选择特异性引物F357GC和R515对16S rRNA基因的V3区进行扩增,长约230bp的PCR产物经变性梯度凝胶电泳(DGGE)进行分离后,得到不同数目且分离效果较好的电泳条带。结果说明,DGGE能够对土壤样品中的不同微生物的16S rRNA基因的V3区的DNA扩增片断进行分离,为这些DNA片断的定性和鉴定提供了条件。与传统的平板培养方法相比,变性梯度凝胶电泳(DGGE)技术能够更精确的反映出土壤微生物多样性,它是一种有效的微生物多样性研究技术。     

变性梯度凝胶电泳（DGGE）在微生物多样性中的研究

变性梯度凝胶电泳（DGGE）技术能够再现微生物菌群多样性,从而获得微生物的动态信息,并解决了传统方法的片面性,在分析环境微生物群落多样性方面的应用发展迅速。通过对DGGE图谱的分析,可获得待测样品的生物信息。因此充分了解DGGE技术在微生态领域的利用,有助于检测和分析丰富的微生物多样性结构,提高微生物资源开发。     

DGGE/TGGE技术及其在微生物分子生态学中的应用

变性梯度凝胶电泳(DGGE)和温度梯度凝胶电泳(TGGE)是近些年微生物分子生态学研究中的热点技术之一。由于DGGE／TGGE技术具有可靠性强、重现性高、方便快捷等优点,被广泛地应用于微生物群落多样性和动态性分析。文章对DGGE／TGGE技术原理与关键环节、局限性和应用前景进行了综述。     

DNA指纹图谱技术在土壤微生物多样性研究中的应用

土壤中的微生物多样性是十分丰富的,传统培养方法对土壤微生物多样性的研究有很大局限性。近年来,各种基于16S rDNA基因的指纹图谱分析技术取得了长足的进步,并广泛应用于土壤微生物多样性的研究。这些技术主要有变性梯度凝胶电泳(DGGE)/温度梯度凝胶电泳(TGGE)、单链构象多态性(SSCP)、随机引物扩增多态性DNA(RAPD)、限制性片段长度多态性(RFLP)和扩增核糖体DNA限制性分析(ARDRA)等。对这些技术近年来在土壤微生物多样性研究领域的应用予以简短综述,并初步探讨未来几年土壤微生物分子生态学发展的方向。     

现代分子生物学技术在冰川微生物生态研究中的应用

研究冰川中微生物的多样性对于揭示环境气候变迁,研究生物进化,开发微生物资源具有重要意义,现代分子生物学的发展为研究冰川微生物的多样性提供了行之有效的方法.简要综述了16S rDNA文库构建、变性梯度凝胶电泳、限制性片段长度多态性和荧光原位杂交等技术的原理及在冰川微生物生态研究中的应用现状.     

利用变性梯度凝胶电泳分析微生物的多样性

综述了不依赖于培养的变性梯度凝胶电泳技术 (DGGE)分析微生物多样性的原理 ,并列举它的应用实例。DGGE和传统方法相比有很多优点 ,若将DGGE和其他方法结合起来 ,效果更好 ,应用更广泛。     

不同覆土基质微生物结构特征研究及其对双孢蘑菇产量的影响

覆土是影响双孢蘑菇产量、质量和出菇整齐度的重要因子,利用现代分子生态学的方法快速、准确地对不同覆土基质微生物结构特征进行检测,以进一步了解微生物群落与双孢蘑菇相互作用关系。测定了不同覆土的理化特性,应用PCR技术对不同覆土材料提取总DNA,扩增细菌16S rDNA和真菌28S rDNA,运用变性梯度凝胶电泳技术对PCR产物进行分析,研究双孢蘑菇不同覆土基质微生物结构特征。结果表明：不同处理的覆土材料微生物群落的基因具有多样性,其中细菌群落基因多样性存在差异,使用纯泥炭与粉碎稻草处理差异最大,相似性仅为62%;通过真菌28S rDNA变性梯度凝胶电泳结果显示,粉碎稻草处理多样性指数最高,达3.576,但随着泥炭比例的提高,覆土处理中真菌群落的多样性相对减少;栽培试验发现,双孢蘑菇子实体形成量、总产量可能与覆土中的真菌群落多样性呈负相关。     

论分子生物学技术在环境微生物研究中的应用

随着分子生物学技术在新时期的高速发展,越来越多的新方法、新技术被应用于环境微生物研究,本文简要介绍了荧光原位杂交、变性梯度凝胶电泳、末端限制性酶切片段长度多态性分析、基因芯片技术等在环境微生物研究中的应用,不仅可以在环境微生物研究中最大限度的获取微生物遗传信息,并可以对环境中微生物的多样性进行全面分析。     

变性梯度凝胶电泳在微生物生态学中的应用

变性梯度凝胶电泳(denaturing gradient gel electrophoresis,DGGE)是目前在微生物生态学上应用比较广泛的技术之一,具有简便、准确可靠和重复性好等优点。对DGGE的原理、流程、各项技术要点和在微生物生态学上的应用等方面进行了详细地论述,同时归纳和总结了DGGE的优缺点和局限性。     

应用DGGE研究微生物群落时的常见问题分析

变性梯度凝胶电泳(DGGE)是通过核酸片段对微生物群落进行研究,可以监测未培养细菌及其功能基因,被广泛地应用于微生物群落多样性和动态分析,并成为微生物分子生态学研究中的重要手段之一。文中论述了DGGE操作过程中遇到的常见问题,并提出了相应的解决方法。全面分析了样品预处理过程和PCR扩增效果对DGGE分析的影响,探讨了DGGE图谱的优化过程和图谱分析方法,并对DGGE的应用前景进行了综述。     

PCR-DGGE技术在土壤微生物多样性研究中的应用

DGGE是一种有效的微生物多样性研究技术。本文简要介绍了DGGE(denaturing gradient gel electrophoresis)的基本原理,及其在研究土壤微生物类群多样性中的应用,并对该技术自身存在的缺陷进行了评价。     

污染土壤微生物群落结构多样性及功能多样性测定方法

土壤微生物在促进土壤质量和植物健康方面发挥着重要的作用,土壤微生物群落结构和组成的多样性及其变化在一定程度上反映了土壤质量.为了更好地了解土壤健康状况,非常有必要发展有效的方法来研究污染土壤微生物的多样性、分布以及行为等.回顾了近年来国内外污染土壤微生物群落结构多样性及功能多样性的测定方法,包括生物化学技术和分子生物学技术,现将它们的原理、优缺点、实用性及其发展动态作一阐述,同时指出结合这两种技术可为微生物群落分析提供一个更全面的、精确的方法.     

PCR-DGGE技术及其在微生物生态学中的应用

现代分子生物学技术PCR-DGGE是一种分析微生物群落的有效工具,可以用于研究生态系统中微生物多样性和群落动态性。本文简要介绍了PCR-DGGE技术原理及其在微生物生态学领域的应用,并对该技术的局限性进行了评价。     

Efficiency of DNA extraction methods on the evaluation of soil microeukaryotic diversity

The evaluation of microbial molecular diversity has been mainly based on the extraction of total DNA from environmental samples. The indirect extraction methods, which have been used for prokaryotes, have never been used to recover soil microeukaryotic DNA. We evaluated the efficiency of an improved indirect DNA extraction protocol developed herein and the direct lysis (the sodium dodecyl sulfate (SDS)-based method and commercial DNA extraction kit) on estimating the molecular diversity of soil microbial eukaryotes. DNA quality and quantity as well as denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) profiles were determined using three soil samples from different stations. The indirect method detected the highest DGGE bands in spite of the low DNA yield. The commercial kit detected a lower number of DGGE bands than the indirect method. The SDS-based method produced the lowest DGGE bands and DNA purity but the highest yield. Using the indirect method, we further evaluated the effect of freezing and air-dried preservations on estimating the microeukaryotic diversity. In spite of the low DNA yield obtained from the air-dried preservation, no significant differences were found in either the number of DGGE bands or the DNA purity between two manners. Our results indicate that the improved indirect method could obtain a high purity of intracellular DNA and high efficiency in the estimation of molecular diversity of soil microbial eukaryotes.     

Microbial community analysis of rectal methanogens and sulfate reducing bacteria in two non-human primate species

Background  Methanogenesis by methanogenic Archaea and sulfate reduction by sulfate reducing bacteria (SRB) are the major hydrogenotrophic pathways in the human colon. Methanogenic status of mammals is suggested to be under evolutionary rather than dietary control. However, information is lacking regarding the dynamics of hydrogenotrophic microbial communities among different primate species.
Methods  Rectal swabs were collected from 10 sooty mangabeys ( Cercocebus atys ) and 10 baboons ( Papio hamadryas ). The diversity and abundance of methanogens and SRB were examined using PCR-denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) and real-time quantitative PCR (qPCR).
Results  The DGGE results revealed that intestinal Archaea and SRB communities differ between mangabeys and baboons. Phylogenetic analyses of Archaea DGGE bands revealed two distinct clusters with one representing a putative novel order of methanogenic Archaea. The qPCR detected a similar abundance of methanogens and SRB.
Conclusions  Intestinal Archaea and SRB coexist in these primates, and the community patterns are host species-specific.     

Use of order-specific primers to investigate the methanogenic diversity in acetate enrichment system

The applicability of order-specific primers in minimizing the possible underestimation of microbial diversity was evaluated via denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) analysis of a lab-scale anaerobic digester. Initially, a population analysis with real-time quantitative PCR demonstrated the existence of three methanogenic orders—Methanobacteriales, Methanomicrobiales, and Methanosarcinales—throughout the reaction period. DGGE analyses with three pairs of order-specific primers yielded eight operational taxonomic units (OTUs), whereas DGGE analysis with two independent Archaea-specific primers identified only five. Moreover, the order-specific primers amplified at least one OTU affiliated with each order, whereas no members of Methanobacteriales or Methanomicrobiales were identified with Archaea-specific primers in most samples. These findings provide evidence that order-specific analysis can detect the diversity of methanogens in greater detail than conventional Archaea-specific analysis.