外源脱落酸抑制花生种子发芽的生理机制

花生品种'汕油523'种子用10-3mol·L-1脱落酸(ABA)浸泡12 h后,种子发芽显著受抑制,胚α-淀粉酶活性降低,内源ABA水平提高.5 mmol.L-1ABA合成抑制剂钨酸钠处理的种子发芽率和活力指数提高,胚根增长,α-淀粉酶活性提高,内源ABA含量降低.据此认为ABA对种子萌发的抑制作用可能与α-淀粉酶活性和ABA含量有关.     

AhCYCB1基因的克隆和在ABA抑制花生侧根发生过程中的表达

根据水稻、拟南芥和玉米等植株的CYCB基因序列设计引物,以花生根系成熟区总RNA逆转录得到的cDNA为模板,用PCR扩增克隆花生CYCB1基因片段,命名为AhCYCB1（GenBank登录号为GQ868755）。该基因编码的蛋白具有CYCB1蛋白序列的特征区,与拟南芥的AtCYCB1蛋白聚类关系最近。半定量RT-PCR分析表明,ABA处理后,侧根起始部位的AhCY-CB1基因表达水平降低,ABA合成抑制剂萘普生（naproxen）处理使AhCYCB1基因表达水平明显上调。推测ABA抑制侧根发生与其降低侧根发生部位由G2期进入M期的细胞数目有关。     

白旗兜兰种子非共生萌发与试管苗快速繁育

对我国极小种群野生植物白旗兜兰的种子非共生萌发与试管苗快速繁育开展研究,对比了不同培养基、预处理、种子成熟度及光照对种子萌发的影响。白旗兜兰种子萌发的最适条件是授粉后270 d的种子,在1/4MS+10%椰汁培养基上,用1%Na OCl溶液处理种子40 min并在播种后的前4周进行黑暗培养。最适合原球茎转化幼苗的培养基是3.0 g·L-1花宝一号+1.0 mg·L-1NAA+0.5 g·L-1活性炭+10%香蕉匀浆,而最佳幼苗生根壮苗的培养基是3.0 g·L-1花宝一号+1.0 mg·L-1NAA+1.0 mg·L-16-BA+0.5 g·L-1活性炭+10%香蕉匀浆。     

橙黄玉凤花种子萌发培养及小苗组培快繁研究

对橙黄玉凤花Habenaria rhodocheila种子进行无菌萌发培养以获得大量原球茎,并对原球茎组培,建立其快繁体系。结果表明,橙黄玉凤花种子以0.1%升汞消毒15 min为最佳处理。种子萌发培养基中,添加0.2%活性碳(AC)有利于种子萌发。种子萌发的最佳培养基为1/2MS＋NAA 0.5 mg·L-1＋AC 0.2%,原球茎增殖分化最佳培养基为1/2MS＋NAA 0.2 mg·L-1＋ZT 3.0 mg·L-1＋AC 0.2%;生根最佳培养基为1/2MS＋NAA 0.1 mg·L-1＋6-BA 2.0 mg·L-1＋AC 0.2%。     

留兰香组织培养及快速繁殖条件的优化

以留兰香(Menthaspicata L.)茎尖为实验材料,对外植体消毒、不定芽增殖和试管苗移栽生根的最佳条件进行研究。结果表明,最佳外植体消毒方法为:用体积分数75%乙醇浸泡30s,再用1.0g·L-1HgCl2浸泡10min,培养7d后外植体生长状况良好。正交实验结果表明,在附加0.2mg·L-16-BA和0.02mg·L-1NAA的MS培养基中,留兰香不定芽的增殖倍数最高,试管苗生长状况最好。在含25mg·L-16-BA和50mg·L-1NAA的混合溶液中浸泡1h,移栽试管苗的生根率可达100%,且根较长。     

马尾松胚乳愈伤组织发生的初步研究

为获取马尾松(Pinus massoniana)单倍体材料，建立其胚乳组织培养体系，对马尾松胚乳不同的消毒方法进行筛选，并分析不同基本培养基、生长调节剂配比和热激处理对愈伤诱导的影响。结果表明，胚乳的最佳消毒方式为75%酒精处理30 s+2% NaClO消毒15 min，外植体污染率为0，死亡率仅为15.56%；生长素可促进愈伤诱导且是必需的；细胞分裂素浸泡种子可代替培养基中的细胞分裂素，并能取得比较好的胚乳愈伤诱导效果，1.0 mg·mL-1 6-BA浸泡30 min处理的效果最佳，在培养基WPM+NAA 2.0 mg·L-1+2,4-D 1.0 mg·L-1+蔗糖30 g·L-1+琼脂7 g·L-1中，愈伤诱导率高达87.78%；培养基DCR+NAA 2.0 mg·L-1+6-BA 1.0 mg·L-1+蔗糖30 g·L-1+琼脂7 g·L-1的胚乳愈伤诱导率最高(68.75%)；热激处理可提高胚乳愈伤的诱导率和质量，以相对湿度85%下45 ℃热激10 min最佳，总愈伤诱导率为66.25%，成团愈伤诱导率达8.75%；增殖培养以培养基WPM+NAA 0.1 mg·L-1+6-BA 2.0 mg·L-1+蔗糖30 g·L-1+琼脂7 g·L-1最佳，增殖率达83.33%。     

浙皖粗筒苣苔的组织培养和快速繁殖

1植物名称浙皖粗筒苣苔（Briggsia chienii Chun）。2材料类别种子及无菌苗叶片。3培养条件MS为基本培养基。诱导种子发芽培养基：（1）MS＋6-BA 1.0 mg·L-（-1）（单位下同）＋NAA 0.5;诱导叶片分化培养基：（2）MS＋6-BA 2.0＋NAA 0.5;增殖继代培养基：同（1）;壮苗培养基：（3）MS＋6-BA0.1＋NAA 0.05;生根培养基：（4）1/2MS＋0.1%活性炭。以上培养基均含30 g·L-（-1）蔗糖和7.0 g·L-（-1）琼脂,pH 5.8。培养温度为（25±2）℃;     

影响茎用芥菜愈伤组织诱导和植株再生的因素

茎用芥菜子叶培养在MS 0.25 mg·L-1NAA 0.5 mg·L-16-BA 0.25 mg·L-12,4-D培养基上,可获得较高质量的愈伤组织.愈伤组织培养在MS 1～1 mg·L-16-BA 0.2 mg·L-1NAA培养基上分化频率为8.3%,而在加有羧苄青霉素和头孢霉素的培养基上,最高分化频率可达52.4%.将获得的再生植株转移到1/2MS 0.1 mg·L-1 NAA的生根培养基中,可获得完整植株.     

梳唇石斛成熟胚的离体培养和植株再生

1植物名称梳唇石斛(Dendrobium strongylanthum Rchb.f.). 2材料类别成熟种子. 3培养条件以MS和1/2MS为基本培养基.(1)种子萌发培养基:MS NAA 0.2 mg·L-1(单位下同) 6-BA 0.4 马铃薯汁200g·L-1;(2)原球茎诱导增殖培养基:1/2MS 6-BA 0.5;(3)原球茎分化培养基:1/2MS 6-BA 0.5 NAA 0.5 椰子汁200g·L-1 ;(4)壮苗及生根培养基:1/2MS NAA 0.5 香蕉泥100g·L-1 .上述培养基均附加20 g·L-1 蔗糖、8 g·L-1琼脂,pH 5.5～5.8.培养温度为(24±2)℃,光照时间12 h·d-1,光照度1 000～2000 lx.     

太子参快繁技术的优化及同源四倍体的诱导与鉴定

以太子参〔Pseudostellaria heterophylla(M iq.)Pax〕二倍体组培苗为实验材料,运用正交实验设计和组织培养方法,对太子参试管苗快速繁殖技术进行优化,并进行了同源四倍体的诱导与鉴定。结果表明,太子参最佳的繁殖培养基为含1.0 mg.L-16-BA和0.2 mg.L-1NAA的MS培养基;最佳生根培养基为含0.1 mg.L-1IAA、0.2mg.L-1NAA和1.0 mg.L-1ABT或0.2 mg.L-1IAA、0.2 mg.L-1NAA和1.0 mg.L-1ABT的1/2MS培养基。诱导同源四倍体的最佳处理方法为:用0.2%秋水仙素处理22 h或用0.3%秋水仙素处理12 h,所诱导的同源泉四倍体染色体数目为2n=4x=64条。     

Involvement of G1-to-S transition and AhAUX-dependent auxin transport in abscisic acid-induced inhibition of lateral root primodia initiation in Arachis hypogaea L

Previous study indicated that increasing endogenous abscisic acid (ABA) level could inhibit the lateral root (LR) formation of peanuts. In this study, we investigated the mechanisms by which ABA regulated lateral root primordia (LRP) initiation in peanuts (Arachis hypogaea L). Results suggested that ABA inhibited LRP initiation through blocking G1-to-S transition in seedlings and mature roots: e.g. 5.8% increase in the proportion of G1 phase and 18% decrease in the proportion of S phase after ABA treatment for 6 days. Further study of the expression of the cell cycle marker gene for G2-to-M transition in peanut roots suggested that AhCYCB1 expression was regulated by ABA. We also investigated the cooperative regulation of LRP initiation by ABA and indole-3-acetic acid (IAA). ABA treatment greatly reduced the effects of endogenous IAA on mature roots. The expression of the IAA polar transport gene AhAUX1 appeared to be regulated by ABA since ABA inhibited auxin-mediated LRP initiation by suppressing AhAUX-dependent auxin transport in peanut roots. We further examined the effect of ABA on the expression of DR5::GUS and AtAUX1 in the model plant Arabidopsis. The results of Arabidopsis were consistent with that of the peanut.     

甜高粱再生体系的建立

利用甜高粱成熟种子和成熟胚作为外植体, 通过愈伤组织再生途径建立了植株再生体系。结果表明, 成熟种子在添加1.38 g.L-1脯氨酸、500 mg.L-1水解酪蛋白和3.0 mg.L-1 2, 4-D的MS培养基上可以较快地诱导出生长状态良好的愈伤组织;成熟胚在添加1.38 g.L-1脯氨酸、500 mg.L-1水解酪蛋白、2.5 mg.L-1 2, 4-D和0.1 mg.L-1KT的MS培养基上也能诱导出生长良好的愈伤组织。将愈伤组织转移到MS+1 mg.L-1 IAA + 0.5 mg.L-1 6-BA培养基上诱导芽, 然后再转移到MS+3 mg.L- 1IBA培养基上生根后, 可发育成为完整的植株。     

植物生长物质对大花红景天愈伤组织诱导及苗再生的影响

以大花红景天植物的茎、叶、芽、种子为材料,采用DPS软件正交设计法,通过添加不同植物生长物质,考察其对大花红景天愈伤组织形成及苗再生的影响,为低海拔条件下建立大花红景天植株再生体系提供数据基础。结果表明：种子和芽是诱导愈伤组织最适宜的外植体;植物生长物质对愈伤组织形成的影响大小为6-BA〉KT〉2,4-D〉NAA〉IAA,愈伤组织形成的最佳培养基为MS＋6-BA 4.0 mg.L-1＋KT 0.1 mg.L-1＋NAA 0.1 mg.L-1＋IAA 0.2 mg.L-1;不定芽分化的最佳培养基为MS＋TDZ 0.5 mg.L-1＋NAA 0.5 mg.L-1,诱导率达63.14%,不定芽数平均为11.4。本试验获得的最佳培养基配方,适宜在低海拔条件下进行快速诱导大花红景天的愈伤组织和植株再生。     

DPC浸种对花生幼苗根系和叶片生理功能的影响

在田间条件下,研究了DPC浸种对花生（Arachis hypogaeaL.)幼苗根系和叶片生理功能的影响。结果表明,DPC可提高花生幼苗根系中IAA和Z ZR的含量,促进根系的生长,提高根系活力;DPC可促进花生苗期叶片叶绿素的合成,提高叶绿素含量,提高苗期叶片的光合速率。在实践中,用150mg/LDPC浸种是取得花生壮苗丰产的有效措施。     

影响喜树组织培养苗离体生根的因素

为了建立有效的喜树(Camptotheca acuminata)组培苗生根系统,提高其移栽成活率及适应性,用不同生长素种类及浓度、不同蔗糖浓度及不同培养基对喜树组培苗不定根形成影响以及移栽初期根系发育状况进行了研究.结果发现:1)生长素种类和浓度明显影响喜树组培苗不定根形成,在含有IBA0.5 mg·L-1培养基中取得了最佳生根效果,生根率达到了98%,外植体平均生根数为5.9条/株;2)不同浓度蔗糖对喜树组培苗生根也有一定影响,在10～30 g·L-1范围内,随着蔗糖浓度增加,生根百分率和生根数量都有增加,蔗糖浓度达到30 g·L-1时,生根百分率为95%,外植体平均生根数为5.4条/株;蔗糖浓度在40 g·L-1时,表现出对生根抑制作用;3)在基本培养基对喜树组培苗生根影响研究中发现,MS培养基对根形成表现出一定抑制作用;1/2MS和WPM培养基均适合喜树组培苗生根;4)根系发育正常的喜树组培苗移栽后成活率可达96%,但组培苗根系根毛系统发育较差.组培苗单位叶面积根尖数量显著低于对照实生苗,而且此参数与叶片气孔导度呈显著正相关.这种较差根系发育导致叶片气孔导度过低可能是组培苗叶片光合能力较低的重要原因.     

影响喜树组织培养苗离体生根的因素

为了建立有效的喜树(Camptotheca acuminata)组培苗生根系统,提高其移栽成活率及适应性,用不同生长素种类及浓度、不同蔗糖浓度及不同培养基对喜树组培苗不定根形成影响以及移栽初期根系发育状况进行了研究。结果发现: 1)生长素种类和浓度明显影响喜树组培苗不定根形成,在含有IBA0.5 mg.L-1培养基中取得了最佳生根效果,生根率达到了98%,外植体平均生根数为5.9条/株; 2)不同浓度蔗糖对喜树组培苗生根也有一定影响,在10~30 g.L-1范围内,随着蔗糖浓度增加,生根百分率和生根数量都有增加,蔗糖浓度达到30 g.L-1时,生根百分率为95%,外植体平均生根数为5.4条/株; 蔗糖浓度在40 g.L-1时,表现出对生根抑制作用; 3)在基本培养基对喜树组培苗生根影响研究中发现,MS培养基对根形成表现出一定抑制作用;1/2MS和WPM培养基均适合喜树组培苗生根; 4)根系发育正常的喜树组培苗移栽后成活率可达96%,但组培苗根系根毛系统发育较差。组培苗单位叶面积根尖数量显著低于对照实生苗,而且此参数与叶片气孔导度呈显著正相关。这种较差根系发育导致叶片气孔导度过低可能是组培苗叶片光合能力较低的重要原因。     

Induction of root and shoot formation from root meristems ofPetunia hybrida

Summary A procedure has been developed for the induction of root or shoot formation from root meristems of germinated seeds ofPetunia hybrida. Root formation was obtained on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with a combination of 6-benzylaminopurine (BA) (0–0.5 mg/l) and naphtaleneacetic acid (NAA) (0.05–2.0 mg/l). Induction of predominantly shoot formation was obtained on MS medium containing the following combinations of hormones (in mg/l): 0.05–0.5 NAA and 0.25–2.0 BA. Complete plant formation was obtained after rooting of the shoots on MS medium supplemented with IAA (0–2.0 mg/l) or NAA (0-0.5 mg/l).     

几种生长素对木薯体细胞胚发生和植株再生的作用

木薯（ＭａｎｉｈｏｔｅｓｃｕｌｅｎｔａＣｒａｎｔｚ）嫩叶外植体在含２,４－Ｄ（１－１６ｍｇＬ－１）或ＮＡＡ（４０ｍｇＬ－１）的诱导培养基上能直接诱导初生体细胞胚胎发生,而低活性的生长素ＩＢＡ或ＩＡＡ（４０ｍｇＬ－１）或低浓度的２,４－Ｄ（０．１ｍｇＬ－１）则不能。而以木薯初生体细胞胚切段为外植体时,次生体细胞胚的诱导对生长素的活性或浓度的要求降低。降低生长素浓度或活性能缩短体细胞胚诱导时间并促进根的形成,有利于提高体细胞胚的再生频率。体细胞胚外植体在诱导培养基上的培养时间对下一步体细胞胚胎发生的诱导产生影响。通过石腊切片观察,在含２,４－Ｄ诱导培养基上,木薯体细胞胚不能形成芽分生组织。结果表明,２,４－Ｄ等生长素类物质对诱导木薯体细胞胚胎发生是关键因子,但对体细胞胚的进一步发育和植株再生起抑制作用。     

海滨锦葵胚轴愈伤组织诱导及植株再生

以海滨锦葵(Kosteletzkya virginica)胚轴为外植体, 在9种不同激素配比的培养基上进行愈伤组织诱导、继代培养、不定芽分化及生根培养, 确定了植株再生的最适培养条件: (1)愈伤组织诱导最适培养基为MS + IAA 1.0 mg.L-1 + KT 0.3 mg.L-1 + sucrose 30 g.L-1 + agar 8 g.L-1, 愈伤组织诱导率为93.94%; (2)不定芽诱导最适培养基为MS + IAA 0.1 mg.L-1 + ZT 0.5 mg.L-1 + sucrose 30 g.L-1 + agar 8 g.L-1, 不定芽诱导率为65.83%; (3)生根最适培养基为MS + sucrose 30 g.L-1 +agar 8 g.L-1, 生根率为96.67%。炼苗移栽后, 成活率可达85%。     

An abscisic acid-sensitive checkpoint in lateral root development of Arabidopsis

Lateral root (LR) formation displays considerable plasticity in response to developmental and environmental signals. The mechanism whereby plants incorporate diverse regulatory signals into the developmental programme of LRs remains to be elucidated. Current concepts of lateral root regulation focus on the role of auxin. In this study, we show that another plant hormone, abscisic acid (ABA), also plays a critical role in the regulation of this post-embryonic developmental event. In the presence of exogenous ABA, LR development is inhibited. This occurs at a specific developmental stage, i.e. immediately after the emergence of the LR primordium (LRP) from the parent root and prior to the activation of the LR meristem, and is reversible. Interestingly, this inhibition requires 10-fold less ABA than the inhibition of seed germination and is only slightly reduced in characterised abi mutants, suggesting that it may involve novel ABA signalling mechanisms. We also present several lines of evidence to support the conclusion that the ABA-induced lateral root inhibition is mediated by an auxin-independent pathway. First, the inhibition could not be rescued by either exogenous auxin application or elevated auxin synthesis. Secondly, a mutation in the ALF3 gene, which is believed to encode an important component in the auxin-dependent regulatory pathway for the post-emergence LR development, does not affect the sensitivity of LRs to ABA. Thirdly, ABA and the alf3-1 mutation do not act at the same developmental point. To summarise, these results demonstrate a novel ABA-sensitive, auxin-independent checkpoint for lateral root development in Arabidopsis at the post-emergence stage. In addition, we also present data indicating that regulation of this developmental checkpoint may require novel ABA signalling mechanisms and that ABA suppresses auxin response in the LRPs.