楸子的离体繁殖

植物名称:楸子(Malus prunifolia)。材料类别:选用8年生植株上的春季幼梢,切取5cm左右的顶端,按常规方法消毒后,在无菌条件下切成0.3～0.5cm的茎尖和带芽茎段作为外植体。培养条件:外植体的建立培养基为MS附加BA1.0mg/L(单位下同)、IBA0.5、蔗糖3％、琼脂0.6％、PVP(聚乙烯吡咯烷酮)0.25％。增殖和生长培养基为MS附加不同种类和浓度的激素,蔗糖3％,琼脂0.6％。生根培养基为1/2MS,附加不同浓度的IBA和三十烷醇,蔗糖1％,琼脂0.5％。pH值均为5.8,培养温度为25±2℃,光照度3000Ix,     

不同浓度卡那霉素、潮霉素对楸树试管苗生长的影响

目的:将不同质量浓度的卡那霉素、潮霉素加入楸树培养基中,研究卡那霉素、潮霉素对楸树组培苗生长的影响,以确定抗生素对楸树茎段分化与生根的敏感质量浓度。方法:待楸树继代、生根培养基灭菌后温度降至30~50℃,将不同质量浓度的卡那霉素、潮霉素经抽滤式灭菌加入培养基中,在培养基中接入楸树组培无菌茎段培养,观测茎段继代(增殖芽数、芽长、叶数等)、生根(发根数、根长、芽长等)生长指标并统计分析。结果:楸树组培继代培养基添加卡那霉素质量浓度为100 mg/L时组培瓶苗生长缓慢,浓度为150 mg/L时叶片大部分发白并干枯,茎段基部无愈伤组织形成,瓶苗基本停止生长,楸树继代瓶苗对卡那霉素耐受性范围为100~150 mg/L;添加潮霉素质量浓度为5 mg/L时瓶苗生长较为缓慢,浓度为10 mg/L时叶片开始干枯,茎段基部愈伤组织较小,瓶苗基本停止生长,楸树继代瓶苗对潮霉素耐受性范围为10 mg/L左右。楸树组培生根培养基添加卡那霉素质量浓度为100 mg/L时大部分茎段干枯,少部分为绿但未分化芽与根,浓度为150 mg/L时大部分茎段干枯,极少上部为绿,基部干枯,但未分化芽与根,楸树组培瓶苗生根培养苗对卡那霉素耐受性范围为100~150 mg/L;添加潮霉素质量浓度为5 mg/L时少部分茎段干枯,浓度为10 mg/L时大部分茎段干枯,少部分为绿,茎段未出现芽的分化与根的萌发现象,楸树组培瓶苗生根培养苗对潮霉素耐受性范围为5~10 mg/L。结论:卡那霉素、潮霉素对楸树组培苗生长有明显的抑制作用且与抗生素浓度呈负相关,但低质量浓度(1 mg/L)的潮霉素对楸树继代分化芽数有促进作用;同一抗生素对楸树不同无性系间组培苗生长的影响无显著差异。     

何首乌的组织培养

植物名称:何首乌(Polygonum multiflorum)材料类别:茎尖和带有腋芽的嫩茎段。培养条件:茎尖和去叶茎段用0.1％HgCl_2消毒4～6分钟,无茵水冲4～5次,切成0.5～1.5cm长。茎段要求带有一个腋芽并在腋芽以下留有0.5cm左右的茎段。生芽培养基MS+BA1～2(单位:mg/L;下同)+NAA0.02～0.04。生根培养基MS减半+NAA4。蔗糖3％,琼脂0.6％,温度24±2℃,光照度1000～2000lx,日照8～10小时。     

三色绿萝的组织培养和植株再生

植物名称:三色绿萝(Epipremnum aureum cv.Tricolor)。材料类别:茎尖、幼嫩的茎段。剪取三色绿萝的顶芽约1cm长,用70％酒精和0.1％升汞表面消毒后,在无菌操作下剥离茎尖约1～2 mm,同时横切茎段1～2mm作为外植体。培养条件:诱导不定芽的培养基:MS+BA 1～2 mg/L(单位下同)+NAA 0.2;诱导愈伤组织培养基:MS+NAA2+BA 0.5;诱导芽分化培养基:MS+BA2+GA_30.1+IAA 0.05;生根培养基:1/2 MS+IBA 1。培养基均为蔗糖3％(生根培养基     

枯枝牡丹的组织培养

植物名称:枯枝牡丹(Paeonia suffruticosa)材料类别:(1)采用盐城卞仓的枯枝牡丹植株的腋芽,于消毒后剥取长约2—3mm的茎尖。(2)将枯枝牡丹种子无菌萌发后,切取上胚轴,长约3mm。培养条件:以MS为基本培养基。(1)腋芽茎尖的诱导培养基.附加BA2mg/L(单位下同),NAA0.2,LH500,蔗糖50g,琼脂粉5g;(2)胚轴的诱导培养基:附加BA2,NAA0.2,LH500,蔗糖80g,琼脂粉5g;(3)生根培养基为1/2MS,附加IAA1,IBA1,蔗糖20g,琼脂粉5g。     

文心兰花梗茎段植株再生培养的影响因子研究

应用正交试验设计法研究基本培养基、植物生长调节剂种类及浓度对文心兰花梗茎段芽再生丛生芽诱导、增殖和生根培养的影响。筛选出最佳基本培养基为1/2 MS;最佳诱导培养基为1/2 MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖20 g/L;最佳增殖培养基为1/2 MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖30 g/L;最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 0.05 mg/L+NAA 0.3 mg/L+香蕉泥100 g/L+蔗糖20 g/L。     

尾叶桉茎段再生系统的建立

本文以尾叶桉(Eucalypt urophylla)U6的无菌苗茎段为材料,选用MS培养基为基本培养基,研究不同IAA浓度对尾叶桉茎段愈伤组织诱导,不同IAA、6-BA浓度对尾叶桉茎段愈伤组织诱导芽、生根的影响。结果表明,当外植体的接种数一样,IAA的浓度为20.0mg/L时,愈伤组织诱导率达到最高,为95%,且此浓度下,出芽率、生根率最高,分别达43.3%和100%,而添加0.5mg/L6-BA则会抑制芽的再生、不能产生根。因此最适合诱导尾叶桉愈伤组织、再生芽和再生根的培养体系是MS+20.0mg/L IAA+30g/L蔗糖+8g/L琼脂。该再生系统的建立将为转基因技术改良桉树性状提供前提条件。     

硷茅的组织培养

植物名称:硷茅(Puccinellia chinamhoensic)。材料类别:两年生4～6叶期植株的茎段和叶片。培养条件:1.以MS为基本培养基。2.诱导愈伤组织培养基和分化培养基为(1)MS 2,4-D0.1mg/L(单位下同);(2)MS 2,4-D0.5。3.生根培养基为1/2MS IAA0.5。4.蔗糖3％,琼脂粉0.5％,pH5.8,培养温度25±2℃,每日光照10小时,光照度2000lx。生长与分化情况:剪取硷茅幼嫩的茎段和叶片,用2％安替福尼溶液消毒15分钟,再用无菌水漂洗3～4次,切取0.5cm左右的切段,接种在培养基(1)     

杜仲芽培养形成完整植株

植物名称:杜仲(Eucommia ulmoides)材料类别:从生长健壮的成龄树上,取下当年生幼枝,除去叶片,经0.1％升汞液消毒9分钟,无菌水冲洗几次后,切成带1～2个腋芽的茎段。培养条件:繁殖培养芽采用加有BA 2mg/L(单位下同)和NAA0.2的MS培养基,蔗糖3％,琼脂0.8％,培养基pH值为5.8。生根用1/2MS(大量元素减半)+IBA 1.5+活性炭0.2g+蔗糖20g     

预暗培养对苹果离体不定根形成期间游离氨基酸含量的影响

为了查清预暗培养促进生根的原因,取由茎尖培养获得的苹果(Malus pumila)品种“长富-2”新梢,接于1/2Ms并附加0.5 mg/L IBA,1％蔗糖,0.5％琼脂,pH 5.8的培养基中生根。其中一半置于光照下培养(照光16 h/d,光照度2000 lx),另一半先在黑暗条件下培养6 d后转入相同光照下培养,培养温度为25℃。游离氨基酸用80％乙醇研磨提取,滤液于70℃水浴上蒸干,再用2％磺基水杨酸复溶,离心后取上     

多基因型黑果枸杞高效快繁体系的建立

旨为建立适用于不同种源多基因型的黑果枸杞高效稳定的组培再生体系,为工厂化育苗与大面积推广奠定基础。收集7个不同种源地的黑果枸杞种子并制备无菌苗,利用植物组织培养技术,研究不同种类、不同浓度植物生长调节剂对黑果枸杞生根和分化的影响。在黑果枸杞的茎段诱导分化培养基筛选过程中,针对黑果枸杞培养过程中容易出现的玻璃化现象,通过多种培养基比较,确定了一种最适合不同种源多基因型黑果枸杞茎段分化的培养基MS+蔗糖30 g/L+琼脂7 g/L+6-BA 0.1 mg/L;在黑果枸杞的叶片诱导分化培养基筛选过程中,通过调节生长素类物质及细胞分裂素的浓度,获得一种适合于不同基因型的黑果枸杞叶片分化的培养基MS+蔗糖30 g/L+琼脂6 g/L+NAA 0.5 mg/L+6-BA 0.5 mg/L;在黑果枸杞生根培养基的筛选过程中,通过改变生长素浓度,获得了一种最适合于不同种源多基因型黑果枸杞生根的培养基1/2MS+蔗糖30 g/L+琼脂7.5 g/L+IBA0.25 mg/L。在大规模试验的基础上,克服了不同种源黑果枸杞使用一种培养基时在生根分化过程中常出现的玻璃化、不生根、不发芽等问题,建立了适宜不同种源多基因型黑果枸杞高效稳定的组织培养再生体系。     

青钱柳的快速繁殖技术

该文以青钱柳幼嫩茎段为外植体,研究其种苗快速繁殖技术。结果表明:青钱柳最佳采样时间为4月—6月,最佳外植体为轻微木质化茎段;最佳的外植体表面消毒方法为用0.1%HgCl_2浸泡5～7 min,消毒成功率54.1%,无菌外植体存活率88.7%;初代芽诱导培养基为MS+6-BA 2.0 mg·L~(-1)+IBA 0.2 mg·L~(-1)+蔗糖30.0 g·L~(-1),芽诱导率80.5%,培养21 d初代芽苗平均高度3.0 cm;最佳继代增殖培养基为MS+6-BA 0.5mg·L~(-1)+IBA 0.05 mg·L~(-1)+TIBA 0.02 mg·L~(-1)+蔗糖30.0 g·L~(-1),培养35 d,增殖系数7.0/35 d,平均苗高4.5cm,芽苗健壮且无玻璃化;生根前的壮苗培养基为MS+6-BA 0.5 mg·L~(-1)+IBA 0.05 mg·L~(-1)+蔗糖30.0 g·L~(-1),培养35 d,长出的芽苗高大健壮,平均苗高6.0 cm;生根培养基为1/2WPM+IBA 1.5 mg·L~(-1)+5-NGS 4.5mg·L~(-1)+蔗糖20.0 g·L~(-1),培养40 d,最高生根率83.3%;生根苗较适合的移栽基质为泥碳土,较好的移栽季节为3月—5月和10月—11月,移栽后在遮光度70%的大棚中培养40 d,移栽成活率为54.3%～65.6%。该研究为其优良无性系的规模化繁育奠定基础。     

荻的组织培养

植物名称:获(Miscanthus sacchariflorus)。材料类别:茎尖。培养条件:MS为基本培养基,附加激素如下:(1)诱导愈伤组织附加2,4-D0.5～1.5mg/L(单位下同)+6-BA0.5;(2)分化苗附加KF0.5～1+NAA0.5+6-BA0.5～1.5;(3)诱导生根用1/2MS+NAA0.5或IAA0.5。蔗糖浓度(1),(2)培养基中为3％,在(3)培养基中为1％。琼脂均为0.7％,pH5.8。培养温度25±1℃每日光照10～12小时,光照度1500～20001x。生长与分化情况:均取约1mm长的茎尖接种     

太子参‘柘参1号’离体快繁试验

以太子参‘柘参1号’叶片、茎段为外植体进行离体快繁试验,结果表明：带腋芽的茎段能够诱导出丛生芽,且诱导率较高,最佳诱导培养基为MS + 6-BA 1.0 mg/L + NAA 0.2 mg/L +蔗糖30 g/L;增殖培养基为MS + 6-BA 1.0 mg/L + NAA 0.2 mg/L +蔗糖30 g/L;生根培养基为MS + NAA 0.2 mg/L +蔗糖30 g/L。     

毛樱桃的离体培养

植物名称:毛樱桃(Prunus tomentosa) 材料类别:茎尖及带腋芽茎段培养条件:基本培养基为L(Lepoivre),其成份(mg/1)NH_4NO_3,400;KNO_3,1800; Ca(NO_3)_2·4H_2O,1200;KH_2PO_4270; MgSO_4·7H_2O,360;MnSO_4·4H_2O,1.0;KI,0.08;其余同MS。诱导芽增殖而附加的激素为玉米素(ZT)和IBA,其浓度各为0.5,1.0。蔗糖 3％。诱导生根为 1/2L,附加NAA0.1～1.0,蔗糖 2％。琼脂均为 0.6％,温度25°±2℃,光强 1500～20001ux,16小时光照。生长与分化情况:接种10天左右,即可见到茎尖明显生长。不管外植体的初次培养还是以后的继代培养均以ZT1.0、IBA1.0mg/1效果较好,其增殖比率为1.1～3.0。适于生根的有效新梢为41～58％。将培养的1厘米以上的新梢转入生根培养基,     

叶下珠组培快繁体系研究

以叶下珠Phyllanthus urinaria带节茎段为外植体,研究生长调节剂浓度、培养基对茎段诱导芽的影响,再以叶下珠无菌芽为材料,开展丛生芽增殖培养、生根培养和炼苗移栽技术研究。结果表明,适合叶下珠茎段诱导芽的培养基为1/2MS+6-BA 2.0 mg·L~(-1)+IBA 0.2 mg·L~(-1)+琼脂7.5 g·L~(-1)+蔗糖30 g·L~(-1)+活性炭0.5 g·L~(-1)(pH 5.8~6.0),诱导率达100%;适合叶下珠芽增殖的培养基为1/2MS+6-BA 1.0 mg·L~(-1)+IBA 0.2 mg·L~(-1)+琼脂7.5 g·L~(-1)+蔗糖30 g·L~(-1)(pH 5.8~6.0),平均增殖倍数为3.8;生根适宜培养基为1/2MS+IBA 0.5 mg·L~(-1)+琼脂7.5 g·L~(-1)+蔗糖20 g·L~(-1)(pH 5.8~6.0),生根率达100%;最佳炼苗时间为闭盖2 d后开盖3 d,移栽成活率86.6%。     

虎杖的茎段培养

植物名称:虎杖(Polygonum cuspidatum)。材料类别:多年生植株当年抽出的嫩茎。培养条件:以MS为基本培养基。生芽培养基为:MS+6BA1.5mg/L(单位下同)+NAA0.05。生根培养基为:(1)1/2MS;(2)1/2MS+NAA0.5～7.5+KT0.5;(3)1/2MS+IAA0.2～2.0+BA0.1。蔗糖浓度为3％,琼脂为0.6％,培养基pH值为5.8,培养温度为25士2℃,每日光照10小时,光照度1000～2000Ix。生长及分化情况:取带节外植体消毒后切成长0.5～1.0cm的切段,按极性生长方向插入住芽培养基上,使腋芽刚好接触培养基。外植体接种10天后,腋芽即开始萌动生长;同时,与培养基接触的基部茎     

竹节蓼茎段组织培养

植物名称:竹节蓼Homalocladium platycla-dum)。材料类别:带腋芽的幼嫩茎段。培养条件:基本培养基为MS。长芽培养基中的激素成分为(Mg/1下同):2.4-D1、KT1、Zt0.5、BA0.5。蔗糖浓度为3％。诱导生根培养基为1/2MS,每升附加①Zt0.2、IAA0.4;②Zt0.2、IBA0.6。蔗糖浓度为2％。培养温度为25～28℃,自然光照。生长和分化情况:将带有腋芽的茎段插入长芽培养基中,以节部刚接触培养基为宜。10天后腋芽迅速萌发,同时在茎的节部开始形成愈伤组织。接     

沙棘的组织培养和植株再生

植物名称:沙棘(Hippophae rhamnoides) 材料类别:(1)成年植株休眠茎段。(2)休眠枝条经水培萌发的腋芽。(3)幼嫩叶片。培养条件:所用外植体按常规方法消毒。(1)诱导茎段腋芽生长和生根的培养基为1/2B_5(无机盐减半),附加IBA0.2mg/L(单位下同) IAA0.2或IBA0.4,蔗糖1.5％,琼脂0.46％。(2)。诱导愈伤组织和芽分化的培养基为1/2B_5(大量元素减半)附加6-BA0.1～0.5 IBA1.0～2.0。蔗糖     

白网纹草的化学诱变与快速繁殖

1 植物名称白网纹草(Fittonia verschaffelti). 　　2 材料类别茎尖、茎段. 　　3 培养条件基本培养基为MS.(1)丛生芽诱导分化及快繁培养基:MS 6-BA 0.1 mg*L-1(单位下同) IBA 0.1.(2)生根培养基:1/2MS NAA 0.1.以上培养基均添加30.0 g*L-1蔗糖(生根培养基蔗糖减半)、 6.0 g*L-1琼脂,pH 5.8.培养温度为25～27℃,光照10～12 h*d-1,光照度1 000～1 500 lx. 　　在培养基中加入化学诱变剂NaN3 进行诱变处理.根据试材对不同浓度NaN3的试验结果,选用1 mmol*L-1 NaN3作为处理浓度,在培养基分装前加入,然后进行正常灭菌.……