台盼蓝活体染色教学实验的改进

台盼蓝活体染色教学实验的改进台盼蓝（ｔｒｙｐａｎｂｌｕｅ）是教学实验中最常用的活体染色材料。传统的方法虽然有效果良好等特点,但作为教学实验有３个弱点;（１）是费时,台盼蓝注射一般需要３～５天,由于其它课程的时间限制往往不能按计划进行;（２）是费钱,１...     

内耳整块染色石蜡包埋制片法

内耳制片常用的是火棉胶——石蜡双重包埋H-E片染法。此法制片步骤较多,不易掌握。我采用Bouin氏固定液固定,H-E整块染色、石蜡包埋法制片,操作简便,易于成功,内耳的基本结构(前庭膜、盖膜、毛细胞都完好无损,如取材适当,可在同一切片同时显示壶腹嵴。染色液的配制: 1.苏木精染液的配制: 苏木精 25毫克硫酸铝钾 1.25克碘酸钠5毫克蒸馏水 75毫升由于以上药品称量很小,故需称的较准确。配出来的液体若呈现混浊,则是因为以上药品(主要是碘酸钠)称得不准造成的,这种混浊染色液不能用。 2.复制伊红染色液的配制: 将伊红(Y或B均可)0.5克溶于3毫升蒸馏水中,溶解后将冰醋酸—滴—滴加于其中,边滴边搅动,     

活体染色

活体染色(vital staining)一般是指用无毒或毒性很小的染料,在不影响细胞的正常生命活动的前提下而使活细胞的某些结构着色的一种实验方法。最早进行活体染色的是Paul Ehrlich(1885)他把刚切下的新鲜组织浸泡在亚甲基蓝(美蓝)溶液中,再用显微镜来观察尚处在生活状态下的活细胞结构。当时荷兰植物生理学家Pfeffer(1887)也用活体染色的方法对水绵、蕴藻及浮萍叶的细胞进行了观察。但他们的研究没有引起人们的普遍重视,未能深入地开展     

马蛔虫卵染色制片复染法的一些改进

马蛔虫卵染色制片复染法的一些改进邓迎达,高榕（山东省济南生物工程研究院２５０００２）马蛔虫卵是观察动物细胞有丝分裂的最佳材料。一般方法只用铁明矾苏木精染色,但往往由于对比度不强和难以掌握染色深浅而不易获得理想效果。我室采用桔黄Ｇ－丁香油复染的方法,所...     

爱氏苏木精整体染色制片复染法的一些改进

爱氏苏木精整体染色制片复染法的一些改进采用爱氏苏木精（Ｅｈｒｌｉｃｈ）对植物花药、子房、根尖等材料进行整体染色制片,其最大优点在于材料先染色,后包埋,切片后只需脱蜡即可封片。这样,可在较短时间内获得效果较好、数量较多的切片。但这种制片方法在有些植物中...     

抗酸染色后不同复染方法的比较

目的 比较抗酸染色后3种复染剂的染色效果,选择更适于抗酸菌感染临床病理诊断的复染剂种类.方法 用确诊结核菌或麻风菌的病例进行抗酸染色后用Mayer氏苏木精、亚甲蓝、甲基绿分别复染.结果 用Mayer氏苏木精进行衬染的阳性位置定位清楚,对比清晰,背景干净.结论 用Mayer氏苏木精复染有利于病理医生的观察,对提高抗酸菌阳...     

石碳酸－碱性品红染色液配方的改进

石碳酸－碱性品红染色液配方的改进陆长旬（中国农科院蔬菜花卉研究所北京１０００８１）１９２１年Ｂｅｌｌｉｎｇ创立的染色体压片技术已有７０余年历史，它已成为植物染色体研究中广泛采用的常规技术，推动了植物染色体的深入研究。植物染色体压片技术流程之一是染色，...     

活体染色观察线粒体的方法

线粒体普遍存在于各种动、植物的需氧氧化细胞。它在活体细胞中是可见的,并有特殊的染色性。因此利用活体染色的方法,观察线粒体的形态,是比较简便而生动的方法之一。我们根据线粒体的活体染色原理进行了一些改进,取得了较好效果。     

微小生物的活体染色方法

活体染料可以使生物体在活体状态下被染上色,从而有利于研究活体状态下细胞内及其附属物的某些构造及生理机能。活体染色的基本方法是:在干净的载玻片中心滴上1—2滴某种活体染料,在室温下自然干燥,结果载玻片上留下一层均匀薄膜,将制好的玻片暂存在载玻片盒内。使用时,将原生动物、细菌、酵母菌等生物培养物或组织细胞直接滴入制好的玻片上,活     

大鼠活体注射台盼蓝后肝和肾的组织学与组织化学变化的观察

大鼠连续4天腹腔注射1%台盼蓝后,观察隔天、隔周、隔二周后肝和肾的组织结构及PAS、AlP、AcP、G-6-Pase、Mg~(2+)-ATPase和SDH的活性变化。结果发现:肝细胞和肾小管的上皮细胞中有台盼蓝颗粒;肝PAS反应阴性;隔天后肝AlP、AcP、G-6-Pase和SDH活性增强,Mg~(2+)-ATPase活性减弱;肾的上述组化反应活性都减弱;隔二周后肝和肾的上述组化反应接近对照。实验结果提示:活体注射台盼蓝对肝和肾未构成实质性损伤,隔天后的组化变化可能是一种生理适应性反应。     

茜素红活体染色制作鸡胚透明骨骼标本

在筛选致畸胎药物试验中,骨骼是重点的检查项目之一。过去制作透明鸡胚骨骼标本的传统方法是:先将鸡胚浸在茜素红染液中染色24小时,再用透明液使着了色的软组织退色24小时,经脱水透明24小时后,置于纯甘油中保存,整个制作过程至少需3天时间。 为对大批实验材料同时作处理,这种整胚染色法的操作不仅麻烦,费时间和药品,而且对幼龄胚的骨化中心标本制作,更显有不足之处。染色后,再用透明液进行退色时,若时间短,软     

中国鲎变形细胞活体观察、活体染色及其对细菌感染反应的研究

目前,国外应用鲎变形细胞提取物(或称溶解物,简称鲎试剂)于医药、卫生和食品等行业检测内毒素和致热原(Jorgensen 1973;Weary,1980),具有灵敏度高,快速和操作简便等优点。近年来,国内某些单位已开始研制应用。     

活体电穿孔法基因导入技术

活体电穿孔法(invivoelectroporation)可将外源基因有效导入靶组织或器官,导入效率较高,并且可在多种组织器官上应用。近年来活体电穿孔法用于转基因研究的报道不断增多,在基因治疗方面的优势也日趋显著,是一种很好的活体基因导入方法 。     

简易霉菌活体标本制片法

青、曲霉活体标本制片方法如下: 1.载片的夹法取宽2—3厘米刨平木板条(长度视选用器皿内径长度而定),每组四根,用胶筋先将每二根一端扎好固定,然后将干净的载片夹入中间,载片每端夹入3—5毫米。载片安排好后,再分别将木条的另一端用胶筋固定好(如图示)。     

沉积物中活体底栖有孔虫的虎红染色方法比较研究

在有孔虫生态学研究中,区分底栖有孔虫活体与死亡壳体多使用虎红染色方法,但关于具体的染色时长、处理方式等方法描述比较简单,如仅有"采用虎红酒精染色",其具体方法常语焉不详,影响了研究结果比较的可靠性。为探求不同染色方法到底对实验结果产生多大偏差、有多少影响,本文利用经钙黄绿素培养的潮间带底栖有孔虫进行虎红酒精溶液方法对底栖有孔虫进行染色实验,结合活体有孔虫壳体生活时吸收的钙黄绿素能产生荧光效应,评估了不同保存条件下染色溶液的浓度、染色时间等处理方法下的染色效果。研究结果显示,2‰浓度的虎红酒精溶液适合区分活体与死亡底栖有孔虫壳体的染色要求,可以识别97%的活体底栖有孔虫;活体底栖有孔虫可以从一两个房室到多个房室被显著染色、呈现鲜艳的玫瑰红色,且这些被染色部分可以分布在早期、中期和后期房室。而实验保存处理方式以采集样品后立刻进行染色为佳,若条件限制则可使用纯酒精浸泡或冷冻保存处理后,尽快进行染色。染色时间一般在24小时以上较为合适,但对较长时间保存的样品则建议增加染色时长——两天以上,以达到染色效果。比较而言,酒精浸泡或冷冻保存比福尔马林浸泡样品具有较好的染色效果。     

活体染色显微技术和绿色荧光蛋白在本科实验教学中的应用

激光扫描共聚焦显微镜的原理和使用是本科生细胞生物学实验教学中的重要内容。目前,在细胞生物学实验教学中常使用绿色新鲜的植物叶片作为实验材料,在激光扫描共聚焦显微镜下对叶绿体的自发荧光进行观察。叶绿体的自发荧光信号强而且范围广,使学生难以清晰地理解特异性的荧光信号。该文通过对转p35S::Naa10-GFP基因拟南芥幼苗的根尖进行活体染色[碘化丙啶(propidium iodide,PI)和4′,6-二脒基-2-苯基吲哚(4′,6-diamidino-2-phenylindole,DAPI)染色],在不同的激发光下,收集相应的荧光信号,通过计算机辅助成像,获得不同颜色叠加的特异荧光信号图像。该实验设计简单可行,获得的图像清晰且便于观察,能够使初学者直观并且深刻理解激光扫描共聚焦显微镜的原理和使用方法,适合在高校细胞生物学实验教学中推广,同时也为研究其他蛋白质亚细胞定位提供技术参考。     

小鼠活体内制备姐妹染色单体互换(SCE)的初探

近年来,动物潘体内制备 SCE 的方法,在给药的途径和方式上计有:药物水剂腹腔注射,每小时一次,连续若干次,药物片剂皮下一次性埋植,腹腔一次注射活性炭吸附的药物。在给药的方式上如何做到简便,有效,是值得探讨的课题。本实验室试用药物-液体石蜡混合液皮下注射法,获得成功。     

简易快速骨骼染色透明法

我们经过一年多对胎儿和小动物标本的反复试验,掌握了简易快速骨骼染色透明法,制作出一些较满意的标本。现将制作方法介绍如下: (一)物品准备方形标本缸、药物天平、氢氧化钾、茜素红、95％酒精、甘油等。 (二)制作步骤 1.取材与腐蚀将死亡8小时以内的新鲜标本,去除内脏(胎儿标本需去脑),流水洗净血迹。然后将标本直接放入2—5％氢氧化钾液     

5-碘脱氧尿苷对活体中姐妹染色单体互换的一些效应

1976年,Vogel和Bauknecht报道了在活体中显示姐妹染色单体差别染色(SCD)的方法,此后,这种方法及姐妹染色单体互换(SCE)法便成为检测诱变剂和致癌物的有效手段。1980年,我们实验室成功地用5-碘脱氧尿苷(IdUrd)代替5-溴脱氧尿苷(BrdUrd),多次在小鼠腹腔注射后观察骨髓细胞的SCE,