甜瓜试管苗继代培养玻璃化现象的研究

试管苗玻璃化现象是甜瓜组织基因转化过程中试管苗继代培养过程中的一大障碍,采用在培养基中提高糖和琼脂的浓度,添加适当的钙离子,细胞分裂素6-BA含量不超过0.2mg/L,生长素IAA用量控制在0.5mg/L,适当的光,光照强度和温度对克服甜瓜玻璃苗玻璃化现象有明显的效果.     

不同培养条件对薄荷试管苗玻璃化现象的影响

以江苏东台产薄荷(M entha haplocalyxB riq.)的茎尖为外植体,以MS为基本培养基,研究了培养基添加物和培养条件对薄荷试管苗玻璃化现象的影响。结果显示,导致薄荷玻璃化苗产生的主要因素是培养基中的6-BA、蔗糖和琼脂浓度以及培养温度和光照时间;当6-BA浓度为2 mg.L-1、蔗糖浓度为4%、琼脂浓度为0.70%、培养温度25℃、光照12 h.d-1(2 000 lx)时,薄荷试管苗的繁殖系数较高,玻璃化苗率较低。     

甜瓜离体再生继代培养中玻璃化现象的研究

为提高甜瓜离体培养的再生率和转基因效率,以优质甜瓜品种‘伽师瓜’(‘卡拉库赛’)离体再生不定芽为外植体,通过连续多代继代培养,对引起玻璃化苗现象的几个主要因素进行了研究。结果表明,在甜瓜离体再生继代培养中,外植体继代次数是影响玻璃化发生的主要因素,同时培养基中的6-BA浓度偏高、琼脂浓度偏低以及蔗糖浓度偏低或偏高等可导致玻璃化苗的增加。培养基中较低的6-BA浓度(0~0.2 mg/L),琼脂浓度为6 g/L,蔗糖浓度为25 g/L以及添加活性炭等措施可有效地降低甜瓜玻璃化苗的发生。     

百里香组织培养过程中玻璃化问题的研究

以百里香茎切段为外植体进行组织培养和快速繁殖试验研究,分化率很高,可达100%;但培养过程中玻璃化现象较为严重,解决这一问题的途径,主要是在增殖倍数较高的培养基MS+KT 2.0 mg/L+IBA 0.2 mg/L的基础上,加入0.3 mg/L的GA3,增加蔗糖浓度为50 g/L,琼脂8 g/L,可有效控制玻璃化苗的比例和玻璃苗的逆转。     

中国石竹离体快繁与试管苗玻璃化研究

研究了培养基组成成分对中国石竹品种Diana F1 White组培程序中种子萌发、诱芽增殖、试管苗玻璃化及生根等重要环节的影响。结果表明:(1)种子适宜的萌发培养基为1/2MS,在此培养基中种子萌发率为83.33%,播种后30d时无菌苗高度达6.99cm,叶片数达26.7。(2)在芽诱导阶段玻璃化苗发生率最高可达53.85%。将光照强度提高至2000lx后,采用培养基MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.3mg/L+琼脂8.0g/L+蔗糖8.0g/L进行诱芽培养,玻璃化苗发生率降至3.33%,外植体出芽率达到90%,单个外植体出芽数达到7.2个。(3)适宜的生根培养基为1/2MS+1.0mg/LIBA+琼脂8g/L+蔗糖40g/L,培养30d时生根率为100%,平均根条数达到24.7条,平均根长度达到4.7cm。试管苗在消毒后的腐殖土中移栽,成活率达95%。该研究结果为DianaF1试管苗的快速繁殖提供科学依据。     

巴戟天种质离体保存研究

以巴戟天试管苗为材料,研究不同浓度的无机盐、蔗糖和四种植物生长调节剂(CCC、PP333、ABA、MH)对巴戟天试管苗保存的影响。结果表明:巴戟天试管苗在无生长调节剂的MS、1/2MS、1/4MS三种无机盐浓度培养基上均能保存培养360d,存活率达90%;蔗糖浓度为20~40g/L时,植株生长健壮,能延长保存时间;四种生长调节剂均能诱导试管苗侧芽的生成,抑制顶芽和叶片的生长。其中以PP333促进壮苗效果最好,能提高试管苗素质,在1/2MS+PP3330.5~1.0mg/L+蔗糖30g/L培养基上,试管苗能保存480d,存活率达100%。     

牡丹试管苗玻璃化的研究

以MS为基本培养基,研究品种、琼脂、6-BA、大量元素、蔗糖、光照等因素对牡丹试管苗玻璃化的影响。结果显示：不同品种的牡丹试管苗在组织培养的过程中,出现不同程度的玻璃化,增加培养基中琼脂浓度、降低细胞分裂素6-BA的浓度、降低大量元素的浓度和增加光照强度或采用自然光照均可以有效地降低试管苗玻璃化。     

培养条件对澳蜡花‘舞后’试管苗玻璃化的影响

以澳蜡花‘舞后’的试管苗为试验材料,研究了培养条件对其试管苗玻璃化的影响。结果表明,当以1/2MS为基本培养基,附加0.2mg·L-16-BA、0.01mg·L-1IBA、4%蔗糖、0.8%琼脂并在以塑料封口膜为封口材料的三角瓶内培养时,试管苗的增殖系数较高,玻璃化率较低。     

不同植物生长调节剂对铁皮石斛(Dendrobium candidum)再生的影响

本实验以铁皮石斛无菌苗茎段为外植体,通过添加不同浓度的植物生长调节剂,诱导铁皮石斛愈伤组织形成与分化,建立铁皮石斛组织培养再生体系。结果表明,外植体接种5 d后,在改良MS培养基上添加2 mg/L PBU和0.05 mg/L IAA,可达到100%的愈伤诱导率。将愈伤组织接种在MS培养基上,添加0.1 mg/L NAA和0.5 mg/L 6-BA,不定芽诱导率为90.8%。适合铁皮石斛芽增殖培养基为:MS+7 g/L琼脂+30 g/L蔗糖+100 mg/L Vc+0.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA。PBU浓度为0.5 mg/L,NAA浓度为0.05 mg/L时,芽苗生长情况良好,最适合用于不定芽伸长。铁皮石斛最适生根的培养基为:MS+7 g/L琼脂+30 g/L蔗糖+100 mg/L Vc+0.5 mg/L IBA,生根率可高达94.1%。本研究成功建立了铁皮石斛高效再生体系。     

多基因型黑果枸杞高效快繁体系的建立

旨为建立适用于不同种源多基因型的黑果枸杞高效稳定的组培再生体系,为工厂化育苗与大面积推广奠定基础。收集7个不同种源地的黑果枸杞种子并制备无菌苗,利用植物组织培养技术,研究不同种类、不同浓度植物生长调节剂对黑果枸杞生根和分化的影响。在黑果枸杞的茎段诱导分化培养基筛选过程中,针对黑果枸杞培养过程中容易出现的玻璃化现象,通过多种培养基比较,确定了一种最适合不同种源多基因型黑果枸杞茎段分化的培养基MS+蔗糖30 g/L+琼脂7 g/L+6-BA 0.1 mg/L;在黑果枸杞的叶片诱导分化培养基筛选过程中,通过调节生长素类物质及细胞分裂素的浓度,获得一种适合于不同基因型的黑果枸杞叶片分化的培养基MS+蔗糖30 g/L+琼脂6 g/L+NAA 0.5 mg/L+6-BA 0.5 mg/L;在黑果枸杞生根培养基的筛选过程中,通过改变生长素浓度,获得了一种最适合于不同种源多基因型黑果枸杞生根的培养基1/2MS+蔗糖30 g/L+琼脂7.5 g/L+IBA0.25 mg/L。在大规模试验的基础上,克服了不同种源黑果枸杞使用一种培养基时在生根分化过程中常出现的玻璃化、不生根、不发芽等问题,建立了适宜不同种源多基因型黑果枸杞高效稳定的组织培养再生体系。     

正交实验法在香果树种质离体保存中的应用

以香果树带芽茎段为外植体,采用正交实验法研究活性炭、琼脂、封口材料和培养容器对香果树试管苗离体保存的影响。结果表明,香果树带芽茎段用200 ml三角瓶,无菌培养容器封口膜封口,保存于MS+KT 2.0 mg/L+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+30 g/L蔗糖+0.5 g/L活性炭+7.5 g/L琼脂培养基上6个月后,成活率可达86.3%。离体保存的试管苗没有发生遗传变异。     

野葛试管苗茎尖玻璃化法超低温保存及植株再生

对野葛茎尖玻璃化法超低温保存技术的研究结果表明,H号野葛茎尖较佳的保存技术体系是:继代生长30 d的野葛无菌苗置于4℃冰箱炼苗5 d;在无菌条件下切取含1~2个叶原基(1.5~2.5 mm)的茎尖,转至含5% DMSO+5%蔗糖的MS培养基内,置于4℃冰箱预培养1 d;用60%、100% PVS₂(30%甘油+15%乙二醇+15% DMSO+13.7%蔗糖)分别在0℃下过渡和脱水各30 min,随即迅速投入液氮;保存24 h后,在40℃水浴中快速化冻90 s,用含41.1%蔗糖的MS培养液洗涤2次,每次停留10 min;转至再生培养基(MS+6-BA 2 mg/L+NAA 1 mg/L)暗培养7 d,然后光下培养,再生率可达60%以上。再生苗与常温苗形态指标差异不显著。     

观音莲的组织培养研究

通过观音莲的茎尖培养获得无菌试管苗,研究了生长调节剂和椰乳(CM)组合对芽增殖的影响,探讨了生长调节剂和多效唑(MET)组合对生根的影响,并对移栽基质进行了筛选。结果表明:观音莲增殖的适合培养基为MS+6-BA 4.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+CM 15%~20%;适合观音莲生根的培养基为1/2MS+NAA 0.5 mg/L+MET 0.5 mg/L;最佳的移栽基质为珍珠岩,移栽成活率达100%。     

怀山药种质资源的包埋玻璃化超低温保存与植株再生

通过对怀山药（Dioscorea opposita）种质资源的包埋玻璃化超低温保存与植株再生进行研究,结果表明：将低温下锻炼7天的怀山药试管苗带芽茎段放入预培养基中,低温下培养3天,然后在室温下用3%的海藻酸钠和0.5mol·L-1CaCl2包埋,包埋珠用MS＋0.2mol·L-1蔗糖＋2mol·L-1甘油＋50g·L-1二甲基亚砜在0°C下装载60分钟,用30%甘油＋15%乙二醇＋10%二甲基亚砜＋15%聚乙二醇＋0.4mol·L-1蔗糖在0°C下脱水60分钟,迅速投入液氮,24小时后立即用40°C水浴快速化冻,再用MS＋0.5mol·L-1蔗糖溶液洗涤2次,转入再生培养基中培养,可获得再生植株。再生植株成活率因基因型而异,铁棍山药、太谷山药、怀庆1号山药和B号山药的成活率分别为64.29%、49.21%、13.11%和39.81%。     

An efficient regeneration system via somatic embryogenesis in mango ginger (Curcuma amada Roxb.)

A reproducible protocol for somatic embryogenesis was established for mango ginger (Curcuma amada Roxb.)—an important horticultural aromatic rhizomatous plant. Embryogenic callus induction was obtained from leaf sheath explants of in vitro raised plants on Murashige and Skoog (MS) agar medium containing 2.0 mg/L 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and 0.5 mg/L 6-benzyladenine (BA). Embryogenic callus proliferation, somatic embryo (SE) formation and subsequent plantlet conversion occurred under optimal culture conditions. The effects of MS medium strength, sucrose and BA on SE formation were also evaluated. Half strength MS liquid medium necessary for SE formation and optimal sucrose concentration was found to be 3.0 %. BA at 0.3 mg/L produced the highest number (84.71 %) of SEs from leaf sheath explants. Secondary somatic embryos originated from primary somatic embryos on the same medium supplemented with 0.4–0.6 mg/L BA. Stereo microscopic and scanning electron microscopic observation revealed that the globular and torpedo shaped somatic embryos resulted in suspension culture during development. Mature somatic embryos germinated readily and developed into normal plantlets after 3 weeks on half strength MS basal agar medium under dark condition. Well rooted plantlets were successfully acclimatized at the survival rate of 70 %.     

根癌农杆菌介导蓝猪耳转化的影响因素研究

研究了根癌农杆菌介导蓝猪耳转化的影响因子。结果表明,以蓝色花类型蓝猪耳5~6周的叶片为外植体,在OD₆₀₀为0.5~0.6的活化菌液中浸染5~10min,暗培养4d后,在愈伤组织诱导培养基(MS+BA 1.0mg/L+2,4-D 0.1mg/L)上生长14d,获得抗性愈伤组织;经芽诱导培养基(1/2MS+BA 1.0mg/L+NAA 0.1mg/L)培养28d得到抗性芽;生根培养基(1/2MS)上培养14d得到抗性植株。经PCR检测证实外源基因已整合到蓝猪耳基因组中,转化率达13%~14%。Cef和Hyg浓度对转化影响较大,转化的不同阶段其适宜浓度不同。     

药用植物红根草种质资源的离体保存

以红根草试管苗为材料,研究了不同培养基(MS、1/2MS、1/4MS)、蔗糖浓度和植物生长抑制剂(CCC、PP333、ABA、MH)在红根草试管苗保存中的作用。结果表明:培养基1/2MS对红根草保存最好,保存270d后存活率最高。培养基中不添加蔗糖较添加一定浓度蔗糖时植株的形态和色泽差,但保存时间更长,转继代后能正常恢复生长。添加生长抑制剂能减缓生长速度,延长保存时间,最佳浓度分别为:CCC1.2～1.6mg/L;PP3331.6mg/L;ABA0.5～4.0mg/L;MH0.5mg/L。其中,ABA0.5～4.0mg/L对植株的生长最好,CCC浓度为1.2mg/L和1.6mg/L时,保存时间长,360d时,存活率达90%。     

Cryopreservation of in vitro-grown shoot tips of apple and pear by vitrification

In vitro-grown shoot tips of apples (Malus domestica Borkh. cv. Fuji) were successfully cryopreserved by vitrification. Three-week-old in vitro apple plantlets were cold-hardened at 5°C for 3 weeks. Excised shoot tips from hardened plantlets were precultured on a solidified Murashige & Skoog agar medium (MS) supplemented with 0.7 M sucrose for 1 day at 5°C. Following preculture shoot tips were transferred to a 2 ml plastic cryotube and a highly concentrated cryoprotective solution (designated PVS2) was then added at 25°C. The PVS2 contains (W/V) 30% glycerol, 15% ethylene glycol and 15% dimethylsulfoxide in medium containing 0.4 M sucrose. After dehydration at 25°C for 80 min, the shoot tips were directly plunged into liquid nitrogen. After rapid warming, the shoot tips were expelled into 2 ml of MS medium containing 1.2 M sucrose and then plated on agar MS medium. Direct shoot elongation was observed in approximately 3 weeks. The average rate of shoot formation was about 80%. This vitrification method was successfully applied to five apple species or cultivars and eight pear cultivars. This method appears to be a promising technique for cryopreserving shoot tips from in vitro-grown plantlets of fruit trees.Abbreviations DMSO dimethylsulfoxide - EG ethylene glycol - PVS2 vitrification solution - LN liquid nitrogen - BA 6-benzylaminopurine - NAA -naphthaleneacetic acid - SE standard error - ABA abscisic acid     

基于高遗传转化率及低幼苗玻璃化率的黑果枸杞叶片组合培养体系

【目的】建立高效稳定的黑果枸杞遗传转化体系,有效降低其再生幼苗玻璃化率,促进其基因功能研究和提高遗传改良效率。【方法】以黑果枸杞叶片作为外植体,利用农杆菌(LBA4404、EHA105)介导的遗传转化法,通过调整基础培养基类型并添加相应浓度的植物激素,筛选出最适愈伤组织诱导培养基、分化和选择培养基、生根诱导培养基,将黑果枸杞遗传转化率提高到65%以上,同时降低幼苗玻璃化率至10%以下。【结果】(1)黑果枸杞叶片高效组合培养体系中最佳农杆菌侵染浓度(OD₆₀₀)为0.6,侵染时间为25 min,在此条件下侵染叶片抗性愈伤诱导率达78.2%～96%;(2)黑果枸杞遗传转化中最适分化和选择培养基为：MS+肌醇50 mg/L+烟酸0.25 mg/L+维生素B₆ 0.25 mg/L+铁盐母液1 mL/L+甘氨酸1.0 mg/L+维生素B₁ 0.05 mg/L+6-BA 0.25 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂6 g/L+卡那霉素30 mg/L+特美汀300 mg/L (pH=6.0);最适生根诱导培养基为：WPM+IBA 0.2...