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Ty1-copia group retrotransposons are ubiquitous and heterogeneous in higher plants. 总被引:16,自引:0,他引:16
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A J Flavell E Dunbar R Anderson S R Pearce R Hartley A Kumar 《Nucleic acids research》1992,20(14):3639-3644
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本研究根据Ty1-copia类反转录转座子反转录酶的保守区设计简并引物,通过PCR扩增,从裸燕麦(Avena nuda L.)品种‘品燕1号’基因组中分离获得23条Ty1-copia类反转录转座子序列,并对序列特征、系统发育关系及其转录活性进行分析。结果显示,23条Ty1-copia类反转录转座子存在较高的异质性,序列间的一致性为45%~98%,存在插入、移码和终止密码突变,但频率不高;系统发育分析结果表明,燕麦Ty1-copia类反转录转座子在进化过程中主要为垂直传递。本研究通过检索燕麦基因表达数据库,发现了5个有转录活性的Ty1-copia类反转录转座子。 相似文献
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Extreme heterogeneity of Ty1-copia group retrotransposons in plants 总被引:18,自引:0,他引:18
Andrew J. Flavell Donald B. Smith Amar Kumar 《Molecular & general genetics : MGG》1992,231(2):233-242
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对8个节瓜(Benincasa hispida var.chieh-qua How)品系基因组DNA中的Ty1-copia类逆转座子逆转录酶核苷酸序列进行扩增,并对品系A39FA的29个克隆产物的核苷酸序列及翻译的氨基酸序列的系统进化和同源性进行了分析,还对29条氨基酸序列进行了比对。扩增结果表明:8个节瓜品系的基因组DNA中均包含长度约260 bp的逆转录酶核苷酸片段;从品系A39FA中获得的29条Ty1-copia类逆转座子逆转录酶核苷酸序列(CqRt1至CqRt29)的长度为247~267 bp,同源率为46.2%~98.1%,而它们的氨基酸序列同源率为26.7%~98.8%。序列分析结果表明:节瓜Ty1-copia类逆转座子逆转录酶核苷酸序列中碱基A、T、G和C的数量分别为65~96、47~92、45~74和32~49,所有序列均富含碱基A和T,AT/GC比为1.35~2.33;缺失突变是造成节瓜Ty1-copia类逆转座子逆转录酶核苷酸序列长度差异的主要因素,在序列长度和碱基组成方面的明显差异表明节瓜Ty1-copia类逆转座子逆转录酶核苷酸序列具有高度异质性。翻译后的氨基酸序列中有21条序列存在终止密码子突变、12条序列存在移框突变,表明Ty1-copia类逆转座子是节瓜基因组内序列重组的热点。通过聚类分析可将29个逆转录酶核苷酸序列分为5个家族(Family),分别包括16、4、4、4和1条序列,其中Family 1可能是具有转座活性的逆转座子家族,但存在转录活性的逆转录酶序列仅占全部序列数量的20.69%。将每一家族中的1~2条序列与其他15种植物的Ty1-copia类逆转座子逆转录酶的氨基酸序列进行比对,显示出较高的同源性。研究结果表明:节瓜与其他植物的Ty1-copia类逆转座子可能有相同起源,而且Ty1-copia类逆转座子可在不同类群间横向传递。 相似文献
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The chromosomal distributions of Ty1-copia group retrotransposable elements in higher plants and their implications for genome evolution 总被引:3,自引:0,他引:3
J.S. Heslop-Harrison Andrea Brandes Shin Taketa Thomas Schmidt Alexander V. Vershinin Elena G. Alkhimova Anette Kamm Robert L. Doudrick Trude Schwarzacher Andreas Katsiotis Sybille Kubis Amar Kumar Steven R. Pearce Andrew J. Flavell Gill E. Harrison 《Genetica》1997,100(1-3):197-204
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Pearce SR Stuart-Rogers C Knox MR Kumar A Ellis TH Flavell AJ 《The Plant journal : for cell and molecular biology》1999,19(6):711-717
The terminal sequences of long-terminal repeat (LTR) retrotransposons are a source of powerful molecular markers for linkage mapping and biodiversity studies. The major factor limiting the widespread application of LTR retrotransposon-based molecular markers is the availability of new retrotransposon terminal sequences. We describe a PCR-based method for the rapid isolation of LTR sequences of Ty1-copia group retrotransposons from the genomic DNA of potentially any higher plant species. To demonstrate the utility of this technique, we have identified a variety of new retrotransposon LTR sequences from pea, broad bean and Norway spruce. Primers specific for three pea LTRs have been used to reveal polymorphisms associated with the corresponding retrotransposons within the Pisum genus. 相似文献
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