小桐子的组织培养和植株再生

以小桐子（Jatropha curcas）的胚芽、子叶、下胚轴、叶柄、叶片和茎段作为外植体,用不同浓度的6-苄基腺嘌呤（6-BA）和α-萘乙酸（NAA）对其进行愈伤组织的诱导和植株再生的研究。结果表明：在MS培养基中加入5．0mg／L6-BA和1．0mg／LNAA对愈伤组织的诱导效果最好;加入5．0mg／L6-BA和0．1mg／LNAA对不定芽的诱导最为有效,加入0．1mg／L6-BA和1．0mg／LNAA有利于芽的生长;加入1．0mg／LNAA的1／2MS培养基对生根最为有利。     

野葛的组织培养和植株再生

野葛〔Ｐｕｅｒａｒｉａｌｏｂａｔａ（Ｗｉｌｄ．）Ｏｈｗｉ〕为豆科多年生缠绕藤本植物,分布遍及全国,主产南方［１］,可药食两用,其块根肥厚,富含淀粉、蛋白质、钙、磷、铁及脂肪酸等,还含有多种异黄酮类化合物,对治疗心绞痛、高血压、冠心病,抑制肿瘤等效果显...     

不同生长调节剂对狗肝菜愈伤组织诱导和离体快繁的影响

目的 :研究不同生长调节剂对狗肝菜愈伤组织诱导和离体快繁的影响。方法 :狗肝菜不同外植体在附加不同生长调节剂的培养基上诱导愈伤组织 ,比较愈伤组织的诱导率 ;用 3因子 5水平的正交实验 ,比较不同生长调节剂对丛生芽诱导的影响 ;在附加不同生长调节剂的培养基上比较芽增殖倍数 ;附加不同浓度NAA的培养基上比较生根效果。结果 :愈伤组织诱导率相对以叶片最高 ,茎段次之 ,最后为叶柄 ;愈伤组织诱导的最佳培养基为MS 6-BA0 .5 NAA1 .5 ;不同激素对茎段芽诱导的影响次序为 6-BA>KT >NAA ,芽诱导的最佳培养基为MS 6-BA2mg/L KT1mg/L NAA0 .5mg/L ;芽继代增殖的最佳激素组合是MS 6-BA2mg/L NAA2mg/L ,增殖倍数达 3.0 0 ,影响芽继代增殖的因素次序为 6-BA >NAANAA0 .5mg/L的生根效果较好。结论 :附加一定的生长调节剂能提高狗肝菜愈伤组织的诱导率和离体快繁的效率。     

小叶龙竹（Dendrocalamus barbatus）愈伤组织诱导及植株再生

以小叶龙竹种子为外植体,通过研究MS培养基中不同植物生长调节剂浓度组合对外植体愈伤组织诱导和不定芽分化的影响以及不同配比对生根的作用,建立了稳定的繁殖再生体系。试验结果表明愈伤组织诱导的最适培养基为MS＋2,4-D5．0mg·L-1;不定芽分化的最适培养基为MS＋2,4-D0．5mg·L-1＋6．BA1．0mg·L-1＋KT0．25mg·L-1;小苗的最适生根培养基为1／2MS＋6-BA0．5mg·L-1＋NAA1．0mg·L-1＋IBA0．4mg·L-1,建立的繁殖再生体系将为进一步利用分子生物学技术对竹类植物进行遗传改良奠定基础。     

崖白菜的愈伤组织诱导及植株再生

通过愈伤组织诱导不定芽发生途径,建立了崖白菜的组培再生体系,研究了崖白菜幼嫩子房和不同植物生长调节剂对其愈伤组织诱导和不定芽发生的影响。结果表明,以崖白菜的幼嫩子房作为外植体,诱导子房分化形成愈伤组织的最适培养基为MS＋6．BA1．0mg·L-1＋2,4-D0．2mg·L-1,诱导率可达82．83％;最适的不定芽分化培养基为Ms＋6-BA0．5mg·L-1＋NAA0．1mg·L-1;诱导不定芽生根的最适培养基为1／2MS＋NAA0．1mg·L-1。     

牛蒡组织培养和高频植株再生的研究

通过对牛蒡(A rctium lapp a L.)不同外植体、不同激素配比的比较研究,建立了牛蒡离体培养高效植株再生体系.牛蒡子叶与下胚轴切段在含2.0 m g/L 2,4-D和0.5~2.0 m g/L BA的M S培养基中愈伤组织诱导率可以达到87%~100%;在1.0~3.0 m g/L NAA和0.5~2.0 m g/L BA的M S培养基上通过愈伤组织间接分化或外植体直接分化形成不定芽,其中愈伤组织分化率可达100%;下胚轴的分化率明显高于子叶,在1.0 m g/L NAA和1.0 m g/L BA的M S培养基上下胚轴直接分化率达77.3%.组织学观察发现牛蒡再生有器官发生和体细胞胚发生两种途径.将生长状态良好的不定芽转至含1.0 m g/L IBA和1.0 m g/L NAA的1/2 M S培养基上生根,移栽,成活率达到93.3%.从诱导愈伤组织到组培苗在珍珠岩中过渡成活,大约需要13周.组培苗次年开花并结实,生长形态特征正常.     

山茱英的组织培养与植株再生

目的：建立山茱萸的组织培养及植株再生体系。方法：分别以山茱萸的叶片、花柄和花托为材料,进行山茱萸不同外植体的离体培养研究,筛选最佳培养基组成。结果：适宜山茱萸叶片愈伤组织诱导的培养基组合为1／2MS,附加BA2．0mg/L、IBA0,5—1．0mg／L;适宜山茱萸花柄、花托愈伤组织诱导的培养基组合为1／2MS,附加BA1．0mg／L、2,4-D0．5mg／L;在1／2MS附加BA2．0mg／L、IBA0．05mg／L的培养基上,可诱导不定芽的产生;1／2MS附加IBA2．0mg／L的培养基有利于山茱萸试管苗生根。讨论：山茱萸的花托是进行组织培养的最适外植体,白色或翠绿色、结构致密的愈伤组织较易分化产生不定芽。     

白花蛇舌草叶片离体培养及试管无性系的建立

以白花蛇舌草叶片为材料,建立了白花蛇舌草叶片高效不定芽发生、植株再生体系。研究了不同激素及其组合对外植体不定芽发生的效应。结果显示,在MS基本培养基中单纯添加6BA,当6BA浓度为0.1mg/L和0.5mg/L时,不能诱导离体叶片发生不定芽,6BA浓度在1.0～5.0mg/L范围内,诱导率随BA浓度升高而增加,适宜浓度为3.0mg/L;当6BA与NAA配合使用时,其诱导率随着培养基中6BA与NAA的相对比值的提高而提高;以MS+BA3mg/L+NAA0.01mg/L作为继代培养基,建立起白花蛇舌草高效、稳定的试管无性系,为白花蛇舌草遗传转化研究奠定了基础。     

鱼腥草体细胞胚胎发生和植株再生

目的:利用鱼腥草的叶片和叶柄为材料,进行体细胞胚胎诱导及植株再生研究。方法:运用正交设计试验,考察在改良的MS固体培养基上添加不同种类、不同浓度的植物生长物质组合及其配比对鱼腥草愈伤组织诱导、体细胞胚胎发生及植株再生的影响。结果:鱼腥草无菌苗叶片在含有2,4-D 1.0 mg/L 6-BA 0.5 mg/L的改良MS培养基上能诱导出胚性愈伤组织;胚性愈伤组织在含有6-BA 1.0 mg/L的改良的MS培养基上诱导体细胞胚的发生;叶柄在含有6-BA 1.0 mg/L改良MS培养基上直接产生体细胞胚。体细胞胚在改良的MS NAA0.1 mg/L 6-BA 1.0 mg/L的培养基上能够快速繁殖,形成大量不定芽,在不加任何激素的MS培养基上就可以萌发出不定根,发育为成完整植株,在MS IBA 1.0 mg/L的固体培养基上能够形成大量的根。结论:建立了鱼腥草体细胞胚胎发生及植株再生的体系。     

大岩桐叶片培养再生植株的研究

以大岩桐（Ｓｉｎｎｉｎｇｉａ ｓｐｅｃｉｏｓａ Ｂｅｎｔｈ．ｅｔ Ｈｏｏｋ）叶片为试材,接种于ＭＳ附加不同激素组合的培养基上,成功地经愈伤组织至球状体至不定芽途径形成大量再生植株并移栽成活。在各种细胞分裂素中,６－苄基嘌呤（ＢＡ）的效果优于激动素（ＫＴ）。生长素萘乙酸（ＮＡＡ）与ＢＡ及ＫＴ配合使用时愈伤组织诱导、球状体分化及不定芽增殖均有明显的增效作用。其最适宜的培养基组成为：ＭＳ＋ＢＡ２．０ｍｇ     

大果良种沙棘愈伤组织诱导及植株再生的研究

大果良种沙棘的幼嫩茎尖,茎段外植体接种在MS,1／2MS附加不同浓度配比的IAA,IBA,BA,NAA培养基上可诱导茎尖及腋芽生长,将诱导产生的无性系芽接种在MS或1／2MS附加BA0．3－0．5mg/L,NAA0．05mg/L的培养基上可形成丛生芽,同时在小叶片和嫩茎上诱导产生愈伤组织,继续培养愈伤组织表面形成大量的绿色突起,进一步分化成不定芽,在相同培养基上,不定芽上可直接产生不定芽,从而形成多达数百个的不定芽族,不定芽长至3cm时切下转至1／2MS附加IAA或IBA 0．2mg/L的培养基上可生根而形成完整 的再生植株。     

红籽鸢尾高频离体再生条件的初步筛选

红籽鸢尾(Iris foetidissima Linn.)为鸢尾科(Iridaceae)鸢尾属(Iris Linn.)多年生草本植物,原产于西欧和非洲北部。该种的叶鞘呈深绿色剑形,蒴果饱满且蒴果成熟开裂后露出红、橙黄和白等不同色泽的种子并一直垂挂到翌年春天,集观花、观叶和观果为一体,观赏价值较高。另外,该种还具有耐寒性好、在长江中下游地区四季常绿、适应性强及耐粗放管理等优     

活血丹组织培养与快速繁殖技术研究

以活血丹为材料,应用组织培养和快速繁殖技术,对适于活血丹增殖分化的培养基、培养方式进行了系统的研究。用活血丹叶片作为外植体,在MS添加生长素2,4-D和细胞分裂素BA的培养基上成功诱导出愈伤组织,并对其继代培养条件进行研究,分析了继代培养中褐化的原因。在MS添加NAA和BA的培养基中,活血丹的茎尖和带腋芽茎段能直接诱导出大量丛生芽,随后将不定芽转入MS添加IBA和KT的培养基中,可生成不定根,完成快速繁殖技术体系。结果表明:活血丹愈伤组织诱导的最佳培养基为MS+2,4-D(1.5mg/L)+BA(1.0mg/L),诱导率高达91.38%。丛生芽诱导的适宜培养基为MS+NAA(0.1mg/L)+BA(1·0mg/L),在此培养基上,出芽率达100%,芽增殖系数接近于10,有利于生物量的积累。而根的诱导则在MS+IBA(1.0mg/L)+KT(1.0mg/L)培养基上进行最好,此基础上能诱导出健康、粗壮的根。试管苗炼苗后移栽,成活率达100%。     

毛白杨优良无性系‘LM50’花药培养植株再生体系建立*

毛白杨‘LM50’具有速生、抗逆、不飞絮等优良特性,是木本植物进行遗传转化的理想材料。长期无性繁殖会导致优良性状衰退,在进行组织培养时,往往出现外植体不定芽分化和生根困难等问题。通过花药培养可以在较短时间内使毛白杨复幼,从而消除因外植体老化带来的负面影响,为转化研究提供理想的材料。与此同时,期望通过花药诱导创制单倍体植株,为基因组学研究和倍性育种提供材料。以山东冠县毛白杨基因库的‘LM50’为试验材料,对其花药发育时期与花芽形态的关系进行鉴定,选择单核靠边期的花药进行试验,探究了生长素和细胞分裂素在花药愈伤组织形成、不定芽分化及不定芽生根中的作用,建立了毛白杨花药离体再生体系,采用流式细胞仪和染色体压片计数法对诱导获得的再生植株进行了倍性鉴定。进一步利用花药培养再生植株的叶片建立了分化率高、生根率高的植物再生体系。小孢子发育时期与花芽外部形态特征对比表明,花芽长度为(1.98 ± 0.06) cm,1/4花序露出芽鳞的花芽,此时小孢子大部分处于单核靠边期;选择处于此时期的花药诱导形成愈伤组织,愈伤组织诱导率最高的培养基为H + 1.00 mg/L NAA + 1.00 mg/L BA,诱导率约为28.89%;愈伤组织进一步分化为不定芽,最佳分化培养基为MS + 0.05 mg/L NAA + 0.50 mg/L BA,分化率约为22.23%;不定芽接种至生根培养基,最佳生根培养基为1/2 MS + 0.30 mg/L IBA,生根率约为93.30%;利用流式细胞仪和染色体压片法对花药培养的27株再生植株进行倍性鉴定,鉴定植物均为二倍体;再生植株叶片分化成芽的最佳培养基为MS + 0.10 mg/L TDZ + 0.10 mg/L NAA + 0.50 mg/L BA,分化率高达92.23%。该叶片分化产生的不定芽的生根培养基与愈伤组织诱导不定芽生根的培养基相同,生根率一致。研究获得了毛白杨‘LM50’花药诱导再生植株,并建立了再生植株的叶片培养体系,可用于该优良无性系的快速繁育和毛白杨的遗传转化研究,为毛白杨的分子设计育种奠定了基础。     

不同浓度活性炭对墨兰离体培养的影响

以墨兰(Cymbidium sinense)地下根状茎段为外植体,探讨不同浓度活性炭对其离体培养的影响。结果表明,在MS+NAA 2.0 mg/L+10%椰汁的培养基中加入1.0 g/L活性炭对原球茎诱导效果最好;MS+BA 3.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+4.0 g/L活性炭适合于不定芽分化;在1/2 MS+NAA 1.0 mg/L+BA 0.5 mg/L+10%椰汁的培养基中加入0.5~3.0 g/L活性炭有利于提高成苗率。     

红叶石楠离体植株再生频率的影响因素研究

以红叶石楠带芽茎段及叶片为外植体,分析激素和培养条件等因子对愈伤组织诱导及植株再生的影响。结果表明,MS+0.10mg/L 2,4-D+0.50mg/L NAA+0.50mg/L 6-BA+0.50mg/L KT为最佳愈伤组织诱导培养基,暗培养的愈伤组织诱导率高于光培养,其愈伤组织诱导率可达100%(带芽茎段)和98%(叶片)。MS+0.50mg/L IBA+2.00mg/L 6-BA+2.00mg/L KT为最佳分化增殖培养基,分化率91%以上,增殖倍数6.8以上,均达到最高。1/2MS+0.50mg/L IBA+0.01mg/L NAA为最佳生根培养基,生根率92%,生根量4.4根/株,均达到最高。     

药用植物红芽大戟的组织培养

针对药用植物红芽大戟结实率和种子萌发率较低的情况,探讨了利用组织培养方法解决生产中繁殖的问题。结果表明,在茎、叶和芽３种外植体中,芽的出愈率最高,愈伤组织褐化率低,生长最好,且易被诱导出不定芽,是较理想的快速繁殖材料;而茎和叶的愈伤组织褐化率高,难以诱导出不定芽。较适宜的诱导愈伤组织的激素组合是６－ＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．４ｍｇ／Ｌ,诱导不定芽的适宜激素组合是６－ＢＡ５．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０５ｍｇ／Ｌ,根的诱导则在１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．２＋庶糖１．５％＋琼脂０．８％培养基上进行     

绿巨人叶柄离体培养及植株再生

在MS基本培养基中添加不同植物生长调节剂(mg/L)对绿巨人无菌苗的叶柄进行离体培养,结果表明,MS+6-BA 1.0+NAA 2.0+2,4-D 1.0诱导效果最好,产生愈伤组织并分化出丛芽;MS+6-BA 2.0~3.0+NAA 0.2+0.2% PVP对芽的增殖效果好;附加0.2%PVP对防止褐变有一定效果;生根培养基选用1/2MS+NAA 0.1~0.5+IBA 1.0的组合。     

Organogenesis and Plantlet Regeneration in Vitro of Populus euphratica

The research of organogenesis and in vitro plantlet regeneration of Populus euphratica Oliver was carried out using the tender shoots from mature tree as initial explants and MS medium as the basic medium. The effects of plant growth regulators (PGR) on the regeneration were compared. The results showed that the concentration of PGR was not strictly required for the organogenesis of the excised organs and callus, but the ratio of BA to NAA was important. Calli could be induced from the excised leaves and stems cultured on the medium with 0.5 mg/L BA and 0.5 mg/L NAA. The embryonic callus could be multiplied in dark on the medium supplemented with 0.25 mg/L BA and 0.5 mg/L NAA. For the adventitious bud regeneration of the leaf and callus, supplement with 0.5 mg/L BA and 0.1 mg/L NAA was appropriate, giving a regeneration frequency of 82.9% and 100%, respectively. The suitable level of BA and NAA for the excised stem's was 0.1 mg/L and 0.01 mg/L respectively, yielding a regeneration frequency of 83 %. Rooting occurred on the MS medium with half strength of macronutrient and addition of 0.015 mg/L NAA, and the rooting rate could reach up to 86.2%. The techniques of somatic cell cloning of P. euphratica was established in vitro. The problems of deterioration of the subcultured shoots were also discussed.     

Morphogenetic pathway in petiole derived callus of Amorphophallus albus in vitro

Two different morphogenetic pathways, adventitious bud and corm-like structure (CLS), were observed on organogenic calli derived from the petioles of Amorphophallus albus in vitro. The organogenic calli was established via culture of petiole segments on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 1.0 mg l⁻¹ α-naphthaleneacetic acid (NAA) and 1.0 mg l⁻¹ 6-benzyladenine (BA) and subculture of the petiole-derived calli on MS medium with 0.5 mg l⁻¹ NAA and 0.5 mg l⁻¹ BA. These organogenic calli were used to induce morphogenesis via culture on MS medium with various concentrations of NAA and BA. BA alone favoured adventitious bud differentiation (57.0 ± 8.3% at maximum) from the organogenic calli but inhibited CLS formation. In the presence of NAA and BA, both adventitious bud and CLS were observed in a same culture system. The maximum CLS formation (71.2 ± 9.3%) were found on MS medium with 0.5 mg l⁻¹ NAA and 2.0 mg l⁻¹ BA, associated with 26.7 ± 8.6% adventitious bud differentiation. A small part of the adventitious buds developed into normal shoots which needed rooting culture phase to form complete plants. About 80% survival rate was obtained with these plants after transplantation to soil. More than 90% of the CLSs produced complete plants with shoots and root systems, regardless of the rooting media tested. Transplantation of the CLS-derived plants to soil gave 100% survival rate. Histological observations revealed both the two morphogenetic events originated from the meristematic cells located in superficial layers of callus tissue.