丝状真菌组织DNA的提取

用CTAB法直接从丝状真菌的新鲜菌丝中提取DNA,并将所提取DNA进行随机引物多态性扩增(RAPD),得到了较清晰的扩增图谱,证明该法为提取真菌DNA以用于分子生物学研究的一种有效方法。     

一种用于PCR的番茄DNA快速粗提方法

在对植物进行分子生物学研究时需要提取植物基因组DNA并对其进行PCR克隆,目前实验室常用CTAB法提取植物DNA,但其步骤相对繁琐,需要用有机溶剂反复抽提,在样本较多时,耗时较长。NaOH可以提取多种物种DNA,本研究优化了实验室条件下更加快速、经济、安全、高效的提取植物DNA的方式,主要包括以下步骤：利用液氮快速粉碎植物样品;采用碱裂解(0.5 mol/L NaOH)的方式一步提取DNA;提取的DNA利用TE缓冲液进行中和;以中和的粗提DNA作为模板进行PCR反应。本研究利用简单的DNA提取流程并结合PCR检测方式,完成了番茄转化子的快速初步鉴定。同时还证明了该NaOH法可用于番茄不同组织的DNA提取。本研究中整个操作过程步骤简单,耗时短,可在短时间内完成大量植物样品的DNA提取,无需使用氯仿、异丙醇等有毒物质,完成提取时间约为CTAB提取法的1/5,而且提取的不同组织DNA完整性较好,质量可观,满足常规的PCR检测,可用于基因克隆及转化子筛选鉴定,具有一定的利用价值和应用前景。     

一种经济快速提取丝状真菌基因组DNA的方法

以螺旋木霉(Trichoderma SpiraleXX)、小克银汉霉(Cunninghamella phaeospora MK)和卵形孢球托霉(Gongronella butleri XT)3种丝状真菌为材料,采用改进的CTAB法提取基因组DNA.方法改进后无需液氮、聚乙烯砒咯烷酮(PVP)和NaAc等试剂,过程简洁,且所需菌体量少,提取的DNA纯度较好,适用于一次微量提取多个样品的基因组DNA.此方法得到的基因组DNA可用于PCR扩增.     

一种快速制备丝状真菌PCR反应模板的方法

为建立一种快速、简便制备丝状真菌PCR反应模板的方法,提高丝状真菌菌株鉴定与转化子筛选效率,本试验以10种不同种丝状真菌为材料,比较了3种不同试剂微波法制备丝状真菌PCR反应模板的效果,并优化了微波处理的时间。试验结果表明,取少量菌丝,加入50mmol/L NaOH,无菌吸头将菌丝打散,微波炉高火处理30s,离心取上清,即可获得用作PCR反应的模板。该方法制备的10种不同种丝状真菌PCR反应模板用ITS引物进行扩增,都可得到与传统CTAB法提取的DNA模板同样清晰明亮的扩增条带。该法制备的PCR模板可用于不同引物和不同公司的PCR反应产品扩增。将该方法制备的PCR模板用于囊状匍柄霉Stemphyliumvesicarium转化子的筛选,其结果与传统CTAB法提取的DNA结果一致。此法为丝状真菌提供了更加快速简便的PCR模板制备方法,极大减少了DNA提取的人力和物力成本。     

一种快速提取丝状真菌染色体DNA的方法

介绍了一种适用于丝状真菌染色体DNA大片段的快速提取方法,该方法以(100mM Tris,100mM NaGl,50mM EDTA-Na2 2%SDS,pH值9.0)为提取液,经石英砂研磨破壁.应用该方法成功地提取了粗糙脉胞菌(Neurospora crassa)、米曲霉(Aspergillus oryzae)、产黄青霉(Penicillium chrysogenum)和头孢霉菌(Cep- halosporium sp.)等4种不同丝状真菌的染色体DNA大片段,且所提DNA片段均大于20kb,可直接用于限制性酶切、PCR等分子生物学研究.     

一种快速高效获取丝状真菌PCR反应模板的方法

建立一种快速高效获取丝状真菌PCR反应模板的方法,提高丝状真菌PCR鉴定效率。通过单因素法对机械破壁联合微波法进行条件优化,利用优化后的方法获取13株不同种属丝状真菌的PCR反应模板,同时与Chelex-100法、机械破壁法作对比,以试剂盒抽提法作为阳性对照,进行ITS序列扩增,琼脂糖凝胶电泳检测扩增结果。机械破壁联合微波法获取丝状真菌PCR反应模板的最佳条件为40 Hz机械破壁1 min、微波700 W高温裂解3 min,采取该法与试剂盒抽提法获得的模板均成功扩增13株不同种属丝状真菌ITS序列,且PCR鉴定结果一致;Chelex-100法获得的模板成功扩增6株丝状真菌ITS序列;机械破壁法获得的模板虽成功扩增9株丝状真菌ITS序列,但扩增效果欠佳。机械破壁联合微波法能够有效获取丝状真菌PCR反应模板,与试剂盒抽提法相比具有操作简便、快速高效的优点,提高丝状真菌PCR鉴定效率。     

从土壤中提取DNA用于PCR扩增

设计、比较了5种直接从土壤中提取DNA的方法。实验结果表明这5种方法都可以从土壤中提取到长度大于15kb的DNA片段,但在不同方法间DNA的产量存在很大差异;初提的土壤DNA经进一步提纯后均可用于PCR反应,利用细菌16S rRNA基因和抗菌肽Shiva-1基因的引物都得到了相应的目的产物。其中方法5提取DNA产量最高,无明显降解,且重复性好,是一种从小量土壤样品中直接提取DNA的理想方法。     

一种适于PCR扩增的小麦基因组DNA快速提取法

许多小麦分子生物学研究需要对大量的小麦样品进行PCR检测,因此,建立一种快速提取小麦基因组DNA的方法十分必要。根据国外报道的一种快速提取水稻和玉米基因组DNA的方法,我们对部分提取步骤进行变动后,在小麦上进行了尝试,长度为1．5kb的片段能得到稳定的扩增。该方法样品研磨在1.5ml的离心管内进行,后续操作不用酚、氯仿、CTAB、SDS和巯基乙醇,整个提取过程不需要使用通风橱,操作步骤简单,花费时间少,而且提取的小麦基因组DNA完整性好,量也较可观。一个DNA样品可供50～100次PCR反应使用,适用于小麦遗传多样性、分子标记辅助选择、转基因后代检测以及引物筛选、分子标记定位等多种研究。     

一种改良的可直接用于PCR扩增的土壤DNA提取方法

本研究对Zhou氏土壤DNA抽提方法进行了改良,减少了土壤用量、孵育和裂解时间,增加了土壤淋洗和硫酸铝处理步骤。接着比较了改良法和Zhou氏法抽提四种类型土壤DNA的效果。结果表明,将土壤用量减少至0.4 g、孵育和裂解时间分别降至20 min和30 min,极大地简易了操作过程,大幅节省了实验所需时间(约为Zhou氏法所需时间的一半)。裂解前增加淋洗步骤和裂解过程中加入硫酸铝都提高了DNA的纯度。前者同时提高了DNA得率,但后者稍微降低了DNA得率。与Zhou氏法相比较,改良法提取4种类型土壤(黑土,黄土,潮土,红土)的DNA在得率和纯度方面均得到提高,并且可以直接用于16S rRNA基因的PCR扩增等分子操作。总之,本改良法简便了DNA提取过程、大大节省了实验时间,可用于从不同类型土壤中抽提适合于PCR扩增等分子操作的DNA。     

Single Fish Egg DNA Extraction for PCR Amplification

Modern stock researches on marine biomass are basically genetic and rely increasingly on PCR-based manipulations of informative DNA markers for detecting the genetic diversity. This study developed a simple and rapid single tube method for DNA extraction from a single fish egg. The 15 min protocol was based on the use of Chelex 100 resin and urea to breakdown membrane and connective tissue of eggs. From various sizes of a single egg of walleye pollack (Theragra chalcogramma), the amounts of total nucleic acids were reproducibly obtained to be 18.25 ± 1.92 μg per egg. Using DNA templates diluted ranging 1/10⁰–1/10⁵, PCR amplification for the mitochondrial cytochrome b (Cytb) gene was successfully performed, and the 1/10² diluted template yielded the best result in PCR amplification for three different DNA marker genes. This method is quite simple and economical, and enables to provide the high throughput often demanded by the stock identification of marine biomass, in which large numbers of specimens of single fish eggs must be analyzed.     

Rapid and Economic DNA Extraction from a Single Salmon Egg for Real-Time PCR Amplification

Salmon eggs are common in Japanese sushi and other seafood products; however, certain fish eggs are used as counterfeit salmon eggs which are found in foods and processed products. This study develops a simple, rapid, and cost-effective method for DNA extraction, filtration (FT) and dilution (DL) protocols from a single salmon egg with good DNA quality for real-time PCR amplification. The DNA amount, DNA quality, and real-time PCR performance for different dilutions and different lengths of PCR amplicons were evaluated and compared with the common Qiagen tissue kit (QTK) and Chelex-100-based (CX) protocols. The extracted DNA from a single salmon egg using the FT or DL protocol can be applied in phylogenic research, food authentication and post-marketing monitoring of genetically modified (GM) food products.     

一种高效的植物DNA提取和PCR扩增体系建立

报道一种高效简易的植物DNA提取和PCR扩增体系。该体系仅需一步即可提取DNA,扩增时延长PCR预变性时间便能获得较好的目的基因扩增结果。本体系具有较高的实验稳定性和较好的物种适用性,将大大提高植物分子生物学实验和基于分子标记辅助的植物育种实验效率,节省科研成本。     

Fast preparation of fungal DNA for PCR screening

Rapid DNA preparation for the quick screening is highly demanded in diverse research fields. Here, we combined an extraction buffer and heat treatment to generate DNA templates from yeast and filamentous fungal materials for PCR. This method may be widely applicable to diverse fungal species in clinical and basic studies.     

丝状真菌PCR模板DNA的快速制备方法

以尖孢镰刀菌(Fusarium oxysporum)为材料,旨为建立沸水浴获得PCR模板DNA的新方法。】取少量真菌菌丝置于一定体积50 mmol/L Na OH溶液中沸水浴10 min,再加入1/10体积1 mol/L Tris-HCl(p H8.0)缓冲液,12 000 r/min离心后,上清用作PCR的DNA模板。结果显示,该方法扩增效率高,扩增条带清晰,且Taq酶适应性强,适合快速制备丝状真菌的模板DNA。该方法经济、简单、快速、安全高效,可用于丝状真菌转化子的高通量筛选和菌株的快速鉴定。     

Improved methods for the preparation of high molecular weight DNA from large and small scale cultures of filamentous fungi

Improved methods are described for the isolation of pure, high molecular weight DNA from small and large scale cultures of filamentous fungi. The methods depend on the extraction of DNA under conditions which prevent nuclease activity and contamination by carbohydrate. The small scale method depends on enzymatic digestion of the wall whereas the large scale method uses partial damage followed by autolysis. High yields of DNA are obtained by both methods and the DNA is suitable for restriction analysis. Southern Blotting, RFLP analysis, dot blotting and the production of gene libraries. The small scale method can be used for the simultaneous analysis of multiple cultures.     

一种适用于PCR反应的酵母菌、无绿藻及丝状真菌DNA提取方法

目的 介绍一种从酵母、无绿藻及丝状真菌中提取DNA以用于PCR反应的方法。方法 所用菌种包括临床分离的未知菌株和保藏菌株共23株：未知酵母菌（5株）、真皮毛孢子菌（1株）、糠秕马拉色菌（1株）、季也蒙念珠菌（5株）、未知丝状真菌（6株）、无绿藻（1株）、烟曲霉（2株）、拟青霉菌（1株）、茎点霉（1株）。用溶细胞酶（lyticase）结合Biospin真菌基因组DNA提取试剂盒提取基因组DNA,A260／A280检测纯度并计算质量浓度,用真菌通用引物ITS1／ITS4扩增真菌核糖体基因（rDNA）内转录间区ITS基因,经PCR扩增检验所提取的DNA质量。结果 成功提取所有23株真菌基因组DNA,其纯度及质量浓度能满足PCR反应的要求。结论 用溶细胞酶结合Biospin真菌基因组DNA提取试剂盒从酵母菌、无绿藻及丝状真菌提取的DNA可用于PCR反应。     

一种适于转基因水稻PCR检测的微量DNA快速提取法

对已报道的小麦基因组DNA快速提取方法的部分步骤进行了简化,在水稻上进行了尝试。结果表明,简化法提取的水稻基因组DNA完整性好,PCR扩增效果与试剂盒提取法无明显的差异,结果稳定可靠;而且整个提取过程操作简单、花费时间少,样品用量少,仅需5-10mg,适用于大规模转基因水稻的PCR检测。