荧光原位杂交技术及其在微生物生态学中的应用

综述了荧光原位杂交技术 (fluorescence in situ hybridization FISH)在微生物生态学领域的各种应用 ,同时就其发展过程、原理及种类做了介绍     

FISH技术在微生物生态学中的研究及进展

分子生物学技术在微生物生态学研究中具有灵敏、精确和快速的优势,但不能提供微生物的形态学、数量性状、空间分布等信息。荧光原位杂交技术结合了分子生物学的精确性和显微镜的可视性信息,可以在自然生境中监测和鉴定不同的微生物个体,尤其是对难培养和未被培养的微生物进行检测。荧光原位杂交技术被广泛用于微生物群落结构诊断和评价,现已成为微生物分子生态学研究中的热点技术。对荧光原位杂交技术的发展和在微生物分子生态学中的应用进行了综述,探讨了该技术应用中存在的问题和发展前景。     

荧光原位杂交技术及其在环境微生物生态学中的应用研究

荧光原位杂交技术是一种能够同时对微生物进行定性、定量和研究微生物群落空间分布情况的有力工具。简要介绍了荧光原位杂交技术的方法,并对其在人为创制环境和自然环境中特征性微生物种群及群落生态学中的应用研究进行了讨论,指出了该种技术在应用中存在的问题与缺陷,最后对荧光原位杂交技术在堆肥微生物生态中的应用及与其他方法的组合应用进行了展望。     

单分子荧光原位杂交（smFISH）技术及应用

单分子荧光原位杂交（single-molecule fluorescence in situ hybridization,smFISH）技术是一种通过用偶联荧光基团的寡核苷酸探针,对固定细胞或组织中单个mRNA分子进行成像的方法。smFISH可对RNA进行定位、定量,以此对目标转录本进行实时研究。smFISH适用于细胞、组织切片等多种类型生物样本。近年来,多种基于基础smFISH的改进技术被发明,进一步促进了该技术的实际应用。smFISH良好的RNA单分子可视化能力,使得其在发育生物学、神经生物学及肿瘤生物学等基础生物学科中得到了广泛的应用。本文综述了smFISH技术基本原理、smFISH技术的局限性、smFISH衍生技术方法、smFISH在不同生物学科中的应用进展,并对smFISH技术的发展前景做出展望。     

FISH技术在微生物生态学中的研究及进展*

分子生物学技术在微生物生态学研究中具有灵敏、精确和快速的优势,但不能提供微生物的形态学、数量性状、空间分布等信息。荧光原位杂交技术结合了分子生物学的精确性和显微镜的可视性信息,可以在自然生境中监测和鉴定不同的微生物个体,尤其是对难培养和未被培养的微生物进行检测。荧光原位杂交技术被广泛用于微生物群落结构诊断和评价,现已成为微生物分子生态学研究中的热点技术。对荧光原位杂交技术的发展和在微生物分子生态学中的应用进行了综述,探讨了该技术应用中存在的问题和发展前景。     

荧光原位杂交在膀胱癌检测中的应用进展

膀胱癌是我国泌尿系统最常见的恶性肿瘤.目前膀胱癌的治疗效果不容乐观,因此肿瘤的早期诊断、早期治疗显得尤为重要.本文介绍了荧光原位杂交技术在膀胱癌早期诊断及预后监测应用中的研究进展.     

荧光原位杂交技术在植物学中的应用

荧光原位杂交技术（fluorescence 〖WTBX〗in situ 〖WTBZ〗hybridization, FISH）是80年代末才发展起来的一种非放射性原位杂交技术。作为一种新型的细胞分子遗传学技术,目前已广泛应用于细胞遗传学、分子生物学等领域。本文简要综述了该技术的基本原理与特点及其在植物学中的应用,包括在异源染色质的鉴定、染色体物理图谱的构建和染色体RNA及植物基因组进化中的应用。     

荧光原位杂交技术及其在植物研究中的应用

荧光原位杂交(FISH)是20世纪生物学领域的一项新技术。FISH应用细胞遗传学和分子生物学的基本原理,作为架设细胞遗传学与分子生物学之间的桥梁,现已被广泛应用于植物学各方面的研究。本文就FISH的基本原理、技术发展及其在植物遗传育种、起源进化、染色体物理图谱构建方面的应用及发展趋势进行了综述。     

荧光原位杂交技术及其在医学诊断上的应用

荧光原位杂交技术是近年来生物学领域发展起来的将经典的细胞遗传学与分子遗传学结合起来一项新技术。该技术具有广泛的应用潜力,在细胞生物学、分子生物学、医学等众多领域快速发展。本文介绍了荧光原位杂交技术的基本原理和操作方法,并对该技术目前的发展状况以其在医学诊断上的应用进行了阐述。     

Fluorescence in Situ Hybridization (FISH): DNA Probe Production and Hybridization Criteria

We describe methods for the production of fluorescence in situ hybridization (FISH) probes and the utilization of these probes for the detection of complementary DNA sequences with accuracy and sensitivity for application in both basic research and clinical diagnosis. Due to the frequent use of FISH in many laboratories, it is important to apply the most convenient and reproducible approach. This review describes some of the most recent techniques, and includes versatile, effective and simple methods of probe production and fluorescence in situ hybridization. We also describe methods for the production of region-specific and chromosome-specific DNA probes and hybridization techniques for the visualization of these probes.     

A Review of Fluorescence in Situ Hybridization (FISH): Current Status and Future Prospects

Fluorescence in situ hybridization (FISH) is a powerful technique for detecting DNA or RNA sequences in cells, tissues and tumors. This molecular cytogenetic technique enables the localization of specific DNA sequences within interphase chromatin and metaphase chromosomes and the identification of both structural and numerical chromosome changes. FISH is quickly becoming one of the most extensively used cytochemical staining techniques owing to its sensitivity and versatility, and with the improvement of current technology and cost effectiveness, its use will surely continue to expand. Here we review the wide variety of current applications and future prospects of FISH technology.     

A Review of Fluorescence in Situ Hybridization (FISH): Current Status and Future Prospects

Fluorescence in situ hybridization (FISH) is a powerful technique for detecting DNA or RNA sequences in cells, tissues and tumors. This molecular cytogenetic technique enables the localization of specific DNA sequences within interphase chromatin and metaphase chromosomes and the identification of both structural and numerical chromosome changes. FISH is quickly becoming one of the most extensively used cytochemical staining techniques owing to its sensitivity and versatility, and with the improvement of current technology and cost effectiveness, its use will surely continue to expand. Here we review the wide variety of current applications and future prospects of FISH technology.     

Evaluation of the Phylogenetic Diversity of Prokaryotic Microorganisms in Sphagnum Peat Bogs by Means of Fluorescence In Situ Hybridization (FISH)

The microbial population of sphagnum peat bogs of northern Russia was analyzed with respect to the presence and cell numbers of representatives of particular phylogenetic groups of prokaryotes by means of in situ hybridization with fluorescently labeled group-specific rRNA-targeted oligonucleotide probes with broad detection spectra. The total number of cells that hybridized with universal Archaea- and Bacteria-specific probes varied, in peat samples of different bogs, from 45 to 83% of the number of cells revealed by DAPI staining. Down the bog profiles, the total number of prokaryotes and the fraction of archaea among them increased. Application of a set of oligonucleotide probes showed that the number of microorganisms belonging to such phylogenetic lineages of the domain Bacteria as the phyla Proteobacteria, Bacteroidetes, Actinobacteria, Firmicutes, Acidobacteria, and Planctomycetes constituted, in total, 14.0–26.5% of the number of eubacteria detected in the samples. Among the bacteria identified in the peat samples, the most abundant were representatives of the classes Alphaproteobacteria and Betaproteobacteria and the phyla Acidobacteria, Bacteroidetes, and Actinobacteria.     

应用G显带染色体荧光原位杂交（FISH）技术研究复杂的染色体易位

建立常规Ｇ显带染色体标本的荧光原位杂交（ＦＩＳＨ）技术,用于分析患者复杂的染色体易位。原位杂交前,用甲醛固定Ｇ显带标本,是获得良好显带和荧光杂交效果的关键步骤。仅用常规细胞遗传学方法分析,显示一例习惯性流产患者的核型为４６,ＸＸ,ｔ（１;５;１２）（１ｐｔｅｒ→１ｑ２５：：１２ｑ２４→１２ｑｔｅｒ;５ｑｔｅｒ→５ｐ１１：：１ｑ２５→１ｑｔｅｒ,１２ｐｔｅｒ→１２ｑ２４：．５ｐ１１→５ｐｔｅｒ）,而采用本方法确定患者的核型实际为４６,ＸＸ,ｔ（１;５,１２）（１ｐｔｅｒ→１ｑ２３：：１２ｑ２２→１２ｑｔｅｒ,５ｑｔｅｒ→５ｐ１１：：１ｑ２５→１ｑｔｅｒ;１２ｐｔｅｒ→１２ｑ２２：：１ｑ２３→１ｑ２５：５ｐ１１→５ｐｔｅｒ）。结果表明,新建立的Ｇ显带染色体荧光原位杂交（ＦＩＳＨ）技术能更有效地检测患者复杂的染色体易位。     

25S rDNA在杨属植物染色体上的定位

利用荧光原位杂交技术对杨属(Populus)植物五个组中二倍体(2n=2x=38)代表种:毛白杨(P.tomentosa)、箭杆杨(P.nigravar.thevestina)、大叶杨(P.lasiocarpa)、小青杨(P.pseudo-simonii)、胡杨(P.euphratica);以及所发现的白杨组和黑杨组天然三倍体(2n=3x=57):毛白杨(P.tomentosa)、武黑1号(P.euramericana cv.Wuhei-1)进行了25S rDNA的染色体定位。二倍体毛白杨、箭杆杨、小青杨和大叶杨都具有4个25S rDNA位点,而胡杨只有2个较大的25S rDNA定位于1对小的染色体上,白杨和黑杨天然三倍体的两个种各有6个25S rDNA位点。同时作者还将杨属植物25S rDNA的分布变化与常规核型分析结果进行了比较。     

荧光原位杂交技术在慢性淋巴细胞白血病遗传学异常检测中的应用

目的:分析在荧光原位杂交技术慢性淋巴细胞白血病遗传学异常检测中的应用,并分析相关指标在评价患者预后中的应用。方法:对我院收治的45例初诊CLL患者采用荧光原位杂交技术进行特异性探针D13S25(13q14.3)、RB1(13q14)、p53(17p13)、ATM(11q22.3)、以及CSP12(12号染色体3体)染色体标本检测,分析CLL患者遗传学异常的发生率。采用实时定量PCR检测miR-15a和miR-16-1与CLL患者遗传学异常的相关性。结果:45例CLL初诊患者中,荧光原位检测发现CLL遗传学异常37例,CLL遗传学异常率82.22%。其中d(13q14.3)遗传异常13例,d(13q14)遗传异常7例,d(11q22-23)遗传异常6例,d(17p13)遗传异常5例,12号染色体三体异常6例,遗传学异常多呈异质性。实时定量PCR检测发现miR-15a和miR-16-1与d(13q14)遗传异常显著相关。结论:荧光原位杂交技术是一种检测CLL遗传学异常的快速、灵敏方法,可以提高CLL遗传异常检出率。miR-15a和miR-16-1可以预测d(13q14)遗传异常CLL患者预后。