山药水浸提物对alpha- 葡萄糖苷酶抑制作用的初步研究

目的:通过研究山药水浸提物对α-葡萄糖苷酶的抑制作用,初步探索山药对2型糖尿病的预防和治疗作用。方法:对山药进行热水浸提,采用1:5的料液比,浸提温度90℃,时间2小时,超滤获得山药水浸提物,利用α-葡萄糖苷酶对淀粉降解反应建立酶活检测体系,通过检测酶反应产物分析山药水浸提物对α-葡萄糖苷酶的抑制作用,并计算IC50。结果:山药水浸提物对α-葡萄糖苷酶的抑制率大于46%,IC50值为1.9 g/ml。结论:山药水浸提物对α-葡萄糖苷酶的抑制作用提示山药可以作为肥胖或者2型糖尿病患者有效的一种药食同源食材,本实验结果为2型糖尿病高危人群及患者合理选择膳食结构提供新的科学依据。     

山药多糖对大鼠糖尿病肾病的治疗作用

目的：探讨山药多糖治疗大鼠糖尿病肾病的作用。方法：将sD大鼠40只随机分为4组（n=10）：对照组、模型组、苯那普利组和山药多糖组。复制糖尿病肾病大鼠模型,实验第10周统一处死大鼠,测定大鼠肾重／体重、血糖（Bs）、血脂及肾功能。结果：山药多糖能显著降低肾重／体重、血糖（BS）和血脂,改善肾功能。结论：山药多糖具有治疗糖尿病肾病的作用。     

应用SRAP标记构建山药种质资源DNA指纹图谱

利用30对多态性良好的SRAP引物对90份山药种质资源进行PCR扩增,构建扩增图谱,共扩增到722个位点,多态性位点581个,多态性比例为80.47%,每对引物组合检测多态性位点3~30个,每对引物能鉴别6~51份山药种质资源;采用DNA数据分析软件对扩增出的多态性位点进行分析,构建山药种质资源方框指纹图谱,该图谱清晰地反映出每对引物能扩增的多态位点数、鉴别资源份数及资源具体编号,资源在该引物组合下所能检测得到的多态位点数及所处的具体位置等信息;从10对SRAP引物组合中挑选出的21个多态性位点,根据谱带的有无转化成的1/0字符串编码,形成山药种质资源DNA数字指纹图谱,该图谱可鉴别区分90份山药种质资源中的82份资源。同时这些指纹图谱可为下一步的山药品种鉴定,种质资源评价、利用,分子标记辅助育种及品种权保护提供技术支撑。     

纳米山药多糖结肠靶向微生态调节剂对菌群失调大鼠胃肠激素的影响

目的研究纳米山药多糖结肠靶向微生态调节剂对肠道菌群失调模型大鼠胃肠激素的影响。方法以i.g盐酸林可霉素造成肠道菌群失调模型,将大鼠随机分成正常组,阳性对照组,纳米山药多糖高、中、低剂量组,自然恢复组和模型组。以水合氯醛对大鼠进行麻醉,应用放射性免疫法对各组大鼠的血清及结肠组织的血管活性肠肽、胃动素、生长抑素和P物质四种胃肠激素进行测定。结果与模型组相比较,纳米山药多糖高、中剂量组能够降低血管活性肠肽、胃动素、生长抑素和P物质的含量,差异具有统计学意义(P0.05),且恢复到正常水平。结论纳米山药多糖结肠靶向微生态调节剂能够恢复血管活性肠肽、胃动素、生长抑素和P物质四种胃肠激素的正常水平,具有调节胃肠道动力,促使胃肠道的正常收缩和改善胃肠道对水和电解质运输的能力。     

纳米山药多糖合生元结肠靶微生态调节剂对菌群失调大鼠免疫因子及SOD、MDA、NO、MPO表达的影响

摘要：目的 探讨纳米山药多糖双歧杆菌合生元结肠靶微生态调节剂对菌群失调模型大鼠的免疫因子及超氧化物歧化酶（SOD）、丙二醛（MDA）、一氧化氮（NO）、髓过氧化物酶（MPO）表达的影响。方法 大鼠i.g盐酸林可霉素造成菌群失调伴有免疫缺陷肠炎模型,将大鼠随机分成靶向制剂组、阳性对照组和自然恢复组,紫外分光光度法检测结肠匀浆样本SOD、MDA、NO和MPO含量,微量溶血酶标仪分光光度法测定血清溶血素水平,ELISA法测定IL-1β、IL-6、TNF-α、sIgA及GM-CSF含量。结果 与自然恢复组相比,纳米山药多糖组显著提高大鼠溶血素水平（0.406±0.0122 vs 00.267±0.0138）、sIgA（51.64±4.21 vs 35.26±3.05）和SOD（13.400±0.255 vs 6.250±0.144）含量（t=14.14,t=8.351,t=31.68,P<0.05）,明显降低大鼠结肠样本中MDA（1.255±0.082 vs 22.070±0.080）、NO（1.520±0.112 vs 3.260±0.134）和MPO（0.520±0.065 vs 1.110±0.218）的含量（t=59.61,t=26.02,t=6.351,P<0.05）,L-1β（65.23±3.09 vs 119.67±9.97）、IL-6（156.67±3.91 vs 225.46±3.60）、TNF-α（30.56±5.60 vs 1.110±0.218）和GM-CSF（125.615±4.164 vs 205.99±3.45）在大鼠血清中的表达均有不同程度的明显的的下降（t=12.77,t=31.68,t=8.29,t=28.88,P<0.05）,且恢复到正常水平。结论 纳米山药多糖双歧杆菌合生元结肠靶微生态调节剂能减轻肠道炎症,提高溶血素水平、sIgA和GM-CSF含量,降低IL-1β、IL-6、TNF-α含量,提高机体免疫能力,是理想的中药微生态调节剂。     

不同因子对山药愈伤组织诱导的影响

研究了基因型、外植体、植物激素和光暗等因子对山药愈伤组织诱导的影响。结果表明 :(1)不同基因型山药均能诱导形成愈伤组织 ,但出愈率不同 ,其排列顺序是 :“4 7号”山药 >铁棍山药 >太谷山药。 (2 )不同外植体在同一种培养基上的诱导率存在差异。同一外植体在不同植物激素浓度配比中 ,诱导率也不同。叶片、茎段、零余子的最佳激素配比均为 6 - BA2 (mg/ L,以下单位同 ) +NAA2 ,诱导率分别为 53.3%、 6 5.6 %、 10 0 % ,茎尖的最佳激素配比为 6 - BA2 +NAA0 .2 ,诱导率为 93.3%。 (3)植物激素在愈伤组织诱导过程中起关键的作用。细胞分裂素与生长素组合使用优于单一激素。二者的浓度配比不同 ,出愈率也不同。 (4 )光暗条件对不同外植体愈伤组织诱导的影响不同。暗培养有利于零余子的诱导 ,而光培养则有利于叶片的诱导。     

低糖山楂山药复合果酱制备工艺

以山楂和山药为主要原料,添加白砂糖、增稠剂、凝固剂等进行低糖复合果酱的研制,通过单因素试验、正交试验及感官评价等方法,得到复合果酱最佳的制备工艺：山楂泥与山药泥质量比为50∶50、白砂糖添加量为30%、凝固剂CaCl2添加量为14 g/kg、黄原胶添加量为04%,得到色泽、香气、口感、质地良好的复合果酱产品。     

基于SRAP标记的山药种质资源遗传多样性分析

目的:研究我国山药种质资源遗传多样性,为合理利用资源和开展选育种工作提供理论依据。方法:以国内94份山药种质资源为材料,采用SRAP标记并通过NTSYS2.10软件进行SHAN聚类分析、PROJECTION主成分分析;利用POPGENE软件估算遗传多样性参数。结果:从49对SRAP引物中筛选出30对能产生稳定清晰可辨的扩增产物的引物,共扩增出754条DNA带,其中多态性条带616条,占总条带的81.7%。聚类结果表明:当遗传相似系数(GS)为0.822时,可将94份资源分为5类:第Ⅰ类20份、第Ⅱ类43份、第Ⅲ类7份、第Ⅳ类3份、第Ⅴ类21份。第Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅴ类分别为薯蓣、褐苞薯蓣、山薯和参薯。主成分分析结果显示:第一与第二主成分可解释88.34%(82.10%和6.24%)的遗传总变异。遗传多样性参数分析表明:比较5个遗传多样性参数值,5个群体的遗传多样性水平表现为Ⅰ>Ⅴ>Ⅲ>Ⅱ>Ⅳ,第Ⅰ类(薯蓣)遗传多样性水平高;山药遗传群体间遗传分化系数为51.88%,大部分差异存在于群体之间,群体间遗传分化高。结论:山药种质资源丰富且群体遗传分化高,有利于山药新品种的选育。SRAP标记可有效应用于山药种质资源的鉴别和遗传多样性分析。通过DNA指纹鉴定技术鉴别山药品种具有重要性与紧迫性。     

4种山药多糖的体外发酵特性比较研究

采用体外发酵技术评价分段醇沉得到的4个山药多糖对宁乡猪盲肠食糜体外发酵特性和发酵产物的影响,探讨其用作动物功能性营养调控剂的可行性.乙醇终浓度(%)分别为30、45、60和75时沉淀得到4个山药多糖,用硫酸蒽酮法测得其总多糖含量(%)分别为45.85、56.24、90.91和13.87.选用正常饲喂的肥育宁乡猪,处死后无菌取盲肠食糜作为接种物,分别以4个山药多糖和葡萄糖为底物进行体外发酵.于不同发酵时间点记录产气量,48 h后检测发酵液pH值、NH3和SCFA含量.结果表明,75%醇沉多糖发酵动力学参数最优,并极显著优于葡萄糖组(P<0.01);45%、60%醇沉多糖和葡萄糖组pH值最低,60%、75%醇沉多糖和葡萄糖组的NH3含量最低;葡萄糖组的乙酸、丁酸和异丁酸含量均显著高于其它处理组(P<0.05),60%醇沉多糖组的丙酸含量稍高于、丁酸和异丁酸含量略低于其它3个多糖组.丁酸和异丁酸含量与pH值和NH3含量呈显著相关.提示60%和75%醇沉山药多糖是2种理想的可被宁乡猪盲肠微生物利用的碳源,并可改变微生物产生的SCFA含量与组成.     

佛手山药组织培养的研究

以佛手山药块茎、叶片、茎段为外植体, 探讨了其组织培养技术。结果表明：块茎培养以暗培养MS+6-BA1.0 mg·L^-1+NAA0 1 mg·L^-1效果较好;叶片诱导的适宜培养基为MS+ 6-BA0.5～1.0 mg·L^-1+NAA2.0 mg·L^-1, 暗培养;茎段培养都是光培养,无节茎段以MS+6-BA1.0 mg·L^-1+NAA0.5 mg·L^-1较好;带节茎段的初代培养则以MS+6-BA0.5～1.0 mg·L^-1+NAA0.1 mg·L^-1效果较好,继代增殖培养基为MS+6-BA0.5 mg·L^-1+NAA0.1 mg·L^-1,生根培养基为1/2MS +NAA0.5 mg·L^-1。