新型生物——人工复合血管研制的初步报告

本文设计一种由胶原和高分子聚合物组成的新型生物一人工复合血管。其研制过程是将包绕有聚酯网的硅胶棒埋入羊的皮下组织,再将形成的经聚酯网为支架的胶原管经醛化处理。作者通过肉眼和SEM观察提出了研制生物——人工复合血管的要点:聚酯网网孔要合适,其与硅胶棒的间隙要恰当,理化处理方法更要选择好。     

水分胁迫对小麦光系统Ⅱ的影响

水分胁迫可降低小麦叶绿体的室温荧光产量和Ｍｇ２＋ 在两个光系统间的调节能力、叶片的可变荧光产量、可变荧光猝灭速率以及荧光上升互补面积,表明光系统Ⅱ受到了伤害。光系统Ⅱ氧化侧的人工电子供体ＤＰＣ能部分恢复受到抑制的叶绿体可变荧光,说明水分胁迫对光系统Ⅱ的损伤部位不仅位于氧化侧,也可能在反应中心上     

质体醌重组的D1／D2／Cytb559复合物的荧光衰减动力学和光破坏作用

光系统Ⅱ反应中心Ｄ１／Ｄ２／Ｃｙｔｂ５５９ 在分离纯化过程中失去了电子受体ＱＡ 和ＱＢ,人工合成的质体醌可以与Ｄ１／Ｄ２／Ｃｙｔｂ５５９ 复合物发生重组。癸基质体醌（ＤＰＱ）与Ｄ１／Ｄ２／Ｃｙｔｂ５９９ 复合物的重组导致该复合物的荧光强度下降及发射光谱蓝移,同时两个与光化学活性相关的长寿命（２４ ｎｓ和７３ ｎｓ）荧光衰减组分占整个荧光的百分数下降,这些结果表明ＤＰＱ作为Ｐｈｅｏ－ 的电子受体,限制了Ｐ６８０＋ ·Ｐｈｅｏ－ 的电荷重组。ＤＰＱ 的加入对Ｄ１／Ｄ２／Ｃｙｔｂ５５９复合物中Ｃｈｌａ 分子的光破坏敏感性影响不大,但β－胡萝卜素在加入ＤＰＱ 之后可以被光照破坏,这个过程可能与β－胡萝卜素的生理功能相关。     

藻－菌生态系统代谢功能的生态学研究

在室内模拟条件下,研究了一些生态因子对藻－菌（Ａ＋Ｂ）生态系统代谢有机碳（Ｃ６Ｈ１２Ｏ６）、ＮＨ３－Ｎ和无机磷（ＩＰ）的影响．研究结果表明,当藻－菌生态系统中藻（Ａ）或菌（Ｂ）的起始数量一定时,其代谢Ｃ６Ｈ１２Ｏ６的速率,随与之组合的Ｂ或Ａ的起始数量增加（数量比则相应降低）而增加．在光照和黑暗条件下,Ａ＋Ｂ系统代谢上述３种营养物质的速率均有一定的差异．黑暗下Ｃ６Ｈ１２Ｏ６的平均代谢速率较光照下高１２．３％（Ｐ＜０．０５）,ＩＰ和ＮＨ３－Ｎ的平均代谢速率则分别较光照下低１４．４％（Ｐ＜０．０５）和１６．２％（Ｐ＜０．００１）．在Ａ＋Ｂ系统和Ａ、Ｂ单培养物中,３种营养物质的代谢速率均随有机负荷量增加而增加,而且Ａ＋Ｂ系统的代谢速率分别高于单培养的Ａ和Ｂ,其中ＮＨ３－Ｎ代谢尤为显著．文章还就生态系统结构与功能的关系问题进行了讨论．     

叶片阶段性白化小麦的叶绿体激发能分配和荧光动力学特征

叶片阶段性白化小麦是一种非常特殊的色素突变体。本文对其白色、白绿相嵌及转绿叶片的叶绿体光化活性分别进行了测定。试验表明：（１）白化和白绿相嵌叶片的叶绿体色素合成处于停滞阶段,转绿叶片则处于色素迅速合成阶段;（２）白化、白绿相嵌和转绿叶片叶绿体的激发能传递呈递增趋势;（３）三者对绿体的ＰＳⅡ活性和原初光能转化效率也呈递增趋势;（４）白化叶片叶绿体缺乏ＰＳⅠ和ＰＳⅡ外周天线色素蛋白,白绿相嵌和转绿叶片的类囊体膜多肽组分与正常叶片相近似。     

高温胁迫对光系统Ⅱ异质性的影响

高温胁迫可诱导光系统Ⅱ（ＰＳⅡ）活性中心转化为无活性中心。本文讨论了在高温胁迫导致荧光猝灭的情况下如何用叶绿素荧光动力学计算ＰＳⅡ无活性中心相对含量的问题。正常的小麦叶片其ＰＳⅡ无活性中心相对含量（Ｆｖｉ／ＦＶ）约为０．１５５±０．０１１。小麦叶片经５０℃１分钟高温胁迫后,其Ｆｖｉ（相对于正常Ｆｖ）降至对照的７０％,在随后室温下６０分钟内又降至５０％。而５５℃５分钟和５５℃１０分钟高温胁迫后,在恢复期内其ＰＳⅡ无活性中心的含量从常温的１．４倍左右的基础上分别上升至２．４和２．９倍,说明高温胁迫对ＰＳⅡ中心除了起瞬时钝化作用外,还存在一个间接的较为缓慢的持续钝化作用。     

甘蔗抗逆细胞系选择及其生化特性的研究

利用脯氨酸类似物羟脯氨酸(Hyp)的生长抑制作用,筛选出抗Hyp的甘蔗(Saccha-rum sinensis Roxb)细胞变异系R932。抗性系体内游离脯氨酸含量超常积累(×3．2)。而且其体内脯氨酸合成途径中的关键酶γ－谷氨酸激酶对脯氨酸的反馈抑制较不敏感。R932抗PEG和低温能力较供体加强。实验结果表明γ－谷氨酸激酶特性的变化可能导致细胞内脯氨酸的过量积累,脯氨酸的过量积累有利于植物细胞对抗恶劣环境。     

The modulation of the induction of ornithine decarboxylase by spermine,spermidine and diamines

Extremely low concentrations of putrescine, spermidine and spermine added to the extracellular medium of cultures of mammalian cells inhibit the induction of ornithine decarboxylase activity despite 100- to 1,000-fold greater intracellular polyamine concentrations. The diamines, 1,2-diaminoethane, 1,3-diaminopropane, 1,5-diaminopentane, 1,7-diaminoheptane, 1,10-diaminodecane, 1,12-diaminododecane also inhibit ornithine decarboxylase at all concentrations tested (greater than 10^?6 M). In contrast, 10^?6 M to 10 ^?3 M 1,8-diaminooctane, the alkyl analog of spermidine, enhances ornithine decarboxylase activity. The concentraton of putrescine required to inhibit the activity of ornithine decarboxylase by 50% is a characteristic of each cell line; however, it varies by as much as 1,000-fold among the five cell lines we have tested (L1210 leukemic, H35 hepatoma, N18 neuroblastoma, W256 carcinosarcoma and 3T3 fibroblasts). The antizyme to ornithine decarboxylase can be induced in all these cells by high (di)(poly)amine concentrations. Based on these and other experiments we suggest a working hypothesis: that the polyamines regulate ornithine decarboxylase activity through two different sites that may be interrelated; a sensitive membrane-mediated site that responds to minute fluctuations of extracellular polyamine levels and a coarse site which may be intracellular or membrane associated that responds to larger fluctuations of intracellular polyamine levels. The consequences of such a control mechanism operating within the whole organism are discussed.