巴戟天花药发育过程中多糖和脂滴分布特征

巴戟天花药发育中多糖和脂滴类物质的分布呈现一定的规律：减数分裂之前,花药壁的绒毡层细胞中有少量脂滴,其他细胞中脂滴和淀粉粒都很少。四分体时期,四分体小孢子中开始出现脂滴,绒毡层细胞中的脂滴较以前增加,其他细胞中的脂滴和淀粉粒仍然很少。小孢子早期,游离小孢子在其表面形成了花粉外壁,靠外壁下方有一层周缘分布的多糖物质。绒毡层细胞中的脂滴明显减少。发育晚期的小孢子中形成一个大液泡,细胞质中出现淀粉粒;同时在药壁和药隔组织中也出现了淀粉粒。此时绒毡层退化。在二胞花粉早期,花粉中积累了大量淀粉粒和一些脂滴。但在成熟的花粉中（二胞花粉晚期）,淀粉粒消失,只有一定数量的脂滴保留。巴戟天成熟花粉中积累的营养物质主要为脂滴。     

莴苣花药发育过程中钙的分布特征

减数分裂前,莴苣花药中的钙颗粒很少。减数分裂后,花药绒毡层细胞中的钙颗粒明显增加。同时在花药药室基质中也出现许多细小的钙颗粒。刚从四分体中释放出的小孢子内钙颗粒很少。伴随着花粉外壁物质在小孢子表面的沉积,钙颗粒开始积累在花粉壁部位。随后。小孢子中开始出现钙颗粒。当小孢子开始形成液泡后,钙颗粒向其中聚集,伴随着小液泡融合成大液泡。体积较大的钙颗粒主要集中在液泡中,而细胞质基质中的钙颗粒很少。随着二胞花粉中的大液泡消失,花粉细胞质中的钙颗粒变得很少。在以后的发育中,只有花粉壁中积累较多的钙颗粒。在莴苣花药发育过程中,钙与绒毡层细胞的退化和小孢子液泡形成以及二胞花粉中大液泡的消失有关。而花粉外壁表面积累丰富的钙与以后花粉的萌发有关。     

莴苣花药发育过程中钙的分布特征

减数分裂前,莴苣花药中的钙颗粒很少。减数分裂后,花药绒毡层细胞中的钙颗粒明显增加, 同时在花药药室基质中也出现许多细小的钙颗粒。刚从四分体中释放出的小孢子内钙颗粒很少,伴随着花粉外壁物质在小孢子表面的沉积,钙颗粒开始积累在花粉壁部位。随后,小孢子中开始出现钙颗粒。当小孢子开始形成液泡后,钙颗粒向其中聚集,伴随着小液泡融合成大液泡,体积较大的钙颗粒主要集中在液泡中,而细胞质基质中的钙颗粒很少。随着二胞花粉中的大液泡消失,花粉细胞质中的钙颗粒变得很少。在以后的发育中,只有花粉壁中积累较多的钙颗粒。在莴苣花药发育过程中,钙与绒毡层细胞的退化和小孢子液泡形成以及二胞花粉中大波泡的消失有关。而花粉外壁表面积累丰富的钙与以后花粉的萌发有关。     

蓝猪耳花药发育中多糖和脂滴的组织化学研究

对蓝猪耳花药发育中营养物质的分布和转化过程进行组织化学研究,结果表明:在造孢细胞时期,药壁细胞没有营养物质的积累,但在造孢细胞中有少量的脂滴;在小孢子母细胞时期,表皮细胞中出现淀粉粒,而在绒毡层细胞中出现脂滴,小孢子母细胞中也有脂滴的分布;在四分体时期,四分体小孢子中出现淀粉粒,绒毡层细胞脂滴增加;在小孢子早期,药室内壁细胞中出现淀粉粒,绒毡层继续积累脂滴,而小孢子中开始出现脂滴;到小孢子晚期,绒毡层细胞降解,细胞残留物中出现较多脂滴;在二胞花粉早期,花粉中的大液泡消失,花粉开始积累淀粉粒;在即将开花的成熟花粉中则积累了大量的脂滴和少量的淀粉粒.蓝猪耳花药发育中多糖和脂滴两种营养物质的积累和分布具有一定的时、空特点,反映出花药发育中营养物质积累的规律.     

凤仙花花药发育中多糖和脂滴组织化学研究

以不同发育时期的凤仙花花药为实验材料,采用组织化学方法,对花药发育中的结构变化及多糖和脂滴物质分布进行观察。结果表明:(1)凤仙花的花药壁由6层细胞组成,包括1层表皮细胞,2层药室内壁细胞,2层中层细胞和1层绒毡层细胞。其中绒毡层细胞的形态不明显,很难与造孢细胞区分,且在小孢子母细胞时期退化。(2)在小孢子母细胞中出现了一些淀粉粒,但减数分裂后,早期小孢子中的淀粉粒消失,又出现了一些小的脂滴;随着花粉的发育,小孢子形成大液泡,晚期小孢子中的脂滴也消失;小孢子分裂形成二胞花粉后,营养细胞中的大液泡降解、消失,二胞花粉中又开始积累淀粉;接近开花时,成熟花粉中充满细胞质,其中包含了较多的淀粉粒和脂滴。(3)在凤仙花的花药发育中,绒毡层细胞很早退化,为小孢子母细胞和四分体小孢子提供了营养物质;其后的中层细胞退化则为后期花粉发育提供了营养物质。     

含笑花药发育中多糖和脂滴组织化学研究

采用细胞组织化学染色技术,以含笑发育各个时期的花药为材料,观察其发育中多糖和脂滴类物质的分布情况,探索其营养物质运输特征和规律。结果显示:（1） 在花药中央的造孢细胞中有零星脂滴。在形成胼胝质壁的小孢子母细胞中脂滴数量增加,此时,在花药壁绒毡层细胞中出现少量脂滴,而在其他药壁细胞中则出现多糖颗粒,在四分体小孢子中依然有少量脂滴。（2）在游离小孢子早期,小孢子中的脂滴减少而出现多糖颗粒,此时,药室内壁细胞中积累的多糖颗粒消失,细胞径向伸长;在晚期小孢子内仍有较多的多糖颗粒和脂滴,此时,绒毡层细胞呈现出退化,其中出现一些脂滴。（3）在早期二胞花粉中,液泡逐渐消失,多糖颗粒明显增加;在成熟花粉中,脂滴的数量有所减少,仍保持较多的多糖颗粒作为花粉储存物。研究认为,含笑小孢子在母细胞时期的绒毡层细胞内有少量的脂滴,没有淀粉多糖,说明绒毡层细胞活跃地将营养物质转运到药室中,故呈现较少脂滴的现象,或是含笑绒毡层细胞并没有转化糖类为脂类的功能,仅仅起了将中层细胞中的脂滴转运到药室中的作用。     

水芹花药发育中Ca~(2+)分布特征研究

应用焦锑酸钾沉淀技术对水芹发育花药中的Ca~(2+)分布特征和生理功能进行分析。在小孢子母细胞的胼胝质壁中聚集了较多的钙沉淀颗粒,其他部位较少。小孢子母细胞减数分裂后,花药药壁和药隔组织中的钙沉淀颗粒明显增加。早期小孢子先在花粉外壁基柱层中聚集了较多的钙沉淀颗粒,在小孢子质膜与花粉外壁之间也特异性聚集了许多钙沉淀颗粒。在小孢子形成大液泡过程中,小孢子质膜内陷形成小液泡,钙沉淀颗粒被包裹到小液泡中,并被转移到大液泡中,显示Ca~(2+)参与了液泡的构建。小孢子不等分裂后,二胞花粉中的大液泡分解,细胞质内含物增加,积累营养储存物——淀粉和脂滴。花粉中的钙沉淀颗粒明显减少,而药壁的表皮和药室内壁细胞中的则增加。成熟花粉中钙沉淀颗粒很少,但在花粉外壁的基柱层空隙中仍有许多钙沉淀颗粒分布。水芹花粉中的Ca~(2+)分布的特点显示其在小孢子发育的液泡代谢过程具有重要的生理功能。     

青葙花药发育的结构和组织化学观察

对苋科植物青葙Celosia argentea花药发育的结构和组织化学（多糖和脂滴）特征进行观察。青葙小孢子发生为同时型,四分体为四面体型。药壁为典型四层,绒毡层属于同型绒毡层。成熟花粉为二胞型。早期花药中的淀粉粒和脂滴均较少,绒毡层细胞至小孢子晚期退化为体积较大的脂块。二胞花粉时期的中层细胞退化为脂滴。早期二胞花粉中先出现多糖颗粒,晚期的成熟花粉中积累大量淀粉粒和较少的脂滴为营养储存物。     

含笑花药发育的超微结构研究

对含笑花药发育中的超微结构变化进行观察,结果显示:(1)花粉发育中有三次液泡变化过程——第一次是小孢子母细胞在形成时内部出现了液泡,这可能与胼胝质壁的形成有关;第二次是在小孢子母细胞减数分裂之前,细胞内壁纤维素降解区域形成液泡,它的功能可能是消化原有的纤维素细胞壁;第三次是在小孢子液泡化时期,形成的大液泡将细胞核挤到边缘,产生极性。(2)含笑花粉在小孢子早期形成花粉外壁外层,花粉外壁内层在小孢子晚期形成,而花粉内壁是在二胞花粉早期形成;花粉成熟时,表面上沉积了绒毡层细胞的降解物而形成了花粉覆盖物。研究认为,含笑花粉原外壁的形成可能与母细胞胼胝质壁有关,而由绒毡层细胞提供的孢粉素物质按一定结构建成了花粉覆盖物。     

枸杞花药发育过程中钙的分布

在枸杞花药发育过程中,用焦锑酸钾沉淀的钙颗粒显示出了一个与花药发育事件有关的分布特征：在孢原细胞时期的花药中钙颗粒很少。在造孢细胞到小孢子母细胞时期,花药中钙颗粒增加。当花粉母细胞进行减数分裂时,花药中的钙颗粒进一步增加,尤其是在小孢子母细胞的胼胝质壁中。在小孢子发育早期,花药药隔部位的绒毡层细胞质中钙颗粒也明显增加并特异性地分布在其内切向壁上。当小孢子被释放出后,钙颗粒开始特异性积累在正在形成的花粉外壁中,尤其在萌发孔的部位聚集了大量的钙颗粒。当小孢子形成大液泡时,其细胞质中的钙颗粒明显减少。在小孢子分裂形成二胞花粉后,在二胞花粉的大液泡中又特异性地出现许多细小钙颗粒。随着二胞花粉的大液泡完全消失,其细胞质中又出现了许多钙颗粒。接近开花时的成熟花粉粒细胞质中,细小的钙颗粒主要分布在营养细胞和生殖细胞中。枸杞花药发育过程中钙的分布特征反映了其参与调控花粉发育过程。     

芒果花药发育的细胞化学研究

芒果花药发育中,花药药壁体细胞中淀粉粒多糖和脂滴类物质一直很少,仅药室内壁细胞中有零星淀粉粒分布.到二胞花粉早期,花粉营养细胞中的大液泡消失,开始积累淀粉粒.芒果成熟花粉中储存营养物质主要是淀粉粒,而脂类物质一直很少.     

Cytochemical study of developing anthers of Amomum villosum Lour.

We analyzed anther development in Amomum villosum Lour. (Zingiberaceae) using the periodic acid-Schiff's technique and Sudan black staining to test for the presence of starch and lipids, respectively. Our analyses showed that microspore mother cells of A. villosum lack typical callose walls, and numerous lipid granules appear in the cells early in development. Some starch granules are present in anther wall cells, but not in tapetal cells. After meiosis, numerous lipid granules remain unchanged in the microspores. During microspore development, some small starch granules first appear in the central cell region, and then the starch granules increase in size. After microspore division, the bicellular pollen grains become filled with starch and lipids, and remain in this state until the pollen grains reach maturity. At anthesis, the anther wall of A. villosum consists of several layers of endothecium cells with an evidently thickened radial wall, and some layers of parenchyma cells containing numerous starch granules.     

白菜核雄性不育两用系可育和不育花药ATPase的分布

对白菜核雄性不育两用系可育花药和不育花药的ATPase做了定位分析。可育花药的花粉母细胞核中积累了大量的ATPase反应颗粒,而细胞质中ATPase反应颗粒较少,但在线粒体中特异地聚集了一些大的ATPase反应颗粒。减数分裂后,小孢子细胞质中ATPase反应颗粒明显增加。随着小孢子发育,其细胞质中ATPase反应颗粒逐渐减少,但在线粒体中又特异性地聚集了较多的AT-Pase反应颗粒。当花药发育到二胞花粉时期,花粉和绒毡层细胞中的ATPase反应颗粒已很少了。不育花药的花粉母细胞中呈现较多的ATPase,然而在线粒体中很少。异常四分体小孢子细胞质中虽然有较多的ATPase反应颗粒,但还是通过细胞质收缩和质壁分离方式退化。对可育花药的花粉母细胞线粒体中特异出现的簇状ATPase分布现象进行了分析,讨论了不育花药中花粉母细胞线粒体ATPase的异常与花粉败育的可能关系。     

Distribution of insoluble polysaccharides, neutral lipids, and proteins in the developing anthers of Campsis radicans (L.) Seem. (Bignoniaceae)

In this study, distribution of polysaccharides, lipids, and proteins in the developing anthers of Campsis radicans (L.) Seem. was examined from sporogenous cell stage to mature pollen, using cytochemical methods. To detect the distribution and dynamic changes of insoluble polysaccharides, lipid bodies, and proteins in the anthers through progressive developmental stages, semi-thin sections of anthers at different developmental stages were stained with periodic-acid-Schiff (PAS) reagent, Sudan black B, and Coomassie brilliant blue, respectively, and examined under light microscope. Ultrastructural observations with TEM were also carried out to determine the storage form of starch in the connective tissue, and storage form of lipids in the tapetal cells. In sporogenous cell stage, anther wall contains numerous insoluble polysaccharides. However, from the sporogenous cell stage to the vacuolated microspore stage, the amount of insoluble polysaccharides in the anther wall decreases gradually. At bicellular pollen stage, tapetum degenerates completely and polysaccharides are not seen in the anther wall. Lipid bodies are observed in the cytoplasm of both middle layer and tapetal cells at tetrad stage, whereas they disappear in the vacuolated microspore stage. Compared with polysaccharides, proteins are limited in the anther wall at early stages of development. During pollen development, polysaccharides, proteins, and lipid bodies are scarce in the cytoplasm of sporogenous cells, but their amount increases at premeiotic stage. From tetrad stage to bicellular pollen stage, microspore cytoplasm contains variable amount of insoluble polysaccharide grains, lipid and protein bodies. At bicellular pollen stage, plentiful amount of starch granules are stored in the cytoplasm of the pollen grains. Proteins and lipid bodies are also present in the cytoplasm.     

Secretory tapetum of Brassica oleracea L.: polarity and ultrastructural features

Summary The ultrastructure of the secretory, binucleate tapetum of Brassica oleracea in the micro spore mother cell (MMC) stage through to the mature pollen stage is reported. The tapetal cells differentiate as highly specialized cells whose development is involved in lipid accumulation in their final stage. They start breaking down just before anther dehiscence. Nuclei with dispersed chromatin, large nucleoli and many ribosomes in the cytoplasm characterize the tapetal cells. The wall-bearing tapetum phase ends at the tetrade stage. The dissolution of tapetal walls begins from the inner tangential wall oriented towards the loculus and proceeds gradually along the radial walls to the outer tangential one. The plasmodesmata transversing the radial walls between tapetal cells persist until the mature microspore, long after loss of the inner tangential wall. After wall dissolution, the tapetal protoplasts retain their integrity and position within the anther locule. The tapetal cell membrane is in direct contact with the exine of the microspores/pollen grains and forms tubular evaginations that increase its surface area and appear to be involved in the translocation of solutes from the tapetal cells to the microspores/ pollen grains. The tapetal cells exhibit a polarity expressed by spatial differentiation in the radial direction.